Beïnvloeding van beta-alanine retentie na...
Transcript of Beïnvloeding van beta-alanine retentie na...
Faculteit Geneeskunde en Gezondheidswetenschappen
Opleiding Lichamelijke Opvoeding en Bewegingswetenschappen
Academiejaar 2011-2012
Beïnvloeding van beta-alanine
retentie na chronische beta-alanine
suppletie
Masterproef voorgelegd tot het behalen van de graad van Master in de
Lichamelijke Opvoeding en de Bewegingswetenschappen
Door: Coussens Brendan en D’Hondt Anthony
Promotor: Prof. Dr. Derave Wim
Begeleider: Master Everaert Inge
-1-
-2-
VOORWOORD
Beste lezer
In de opleiding Master Lichamelijke Opvoeding komen heel wat interessante
onderzoeksdomeinen aan bod. We gaven beide onze voorkeur aan het onderzoeksdomein
“fysiologie van het menselijk lichaam”. Doordat carnosine in enkele lessen werd aangehaald,
steeg onze interesse voor dit metaboliet. De mogelijke prestatiebevorderende effecten en
andere positieve invloeden op het menselijk lichaam zijn zeer fascinerend. Door middel van
dit onderzoek hopen we ons steentje bij te dragen aan het werk van het onderzoeksteam van
het Hoger Instituut voor Lichamelijke Opvoeding onder leiding van prof. Derave.
Hierbij willen wij graag enkele personen danken voor de kans die we kregen om deze
masterproef te schrijven. In de eerste plaats danken wij onze promotor prof. Dr. Wim Derave
voor het selecteren en het begeleiden. Daarnaast danken wij ook onze begeleidster Inge
Everaert die ons perfect heeft bijgestaan met haar deskundige en motiverende feedback. Ook
willen we het onderzoeksteam en de proefpersonen bedanken voor hun bijdrage aan de
testafname. Tenslotte willen we onze ouders danken voor de kans die zij ons gaven om te
studeren aan de UGent.
In de eerste plaats hopen we dat deze masterproef een nuttige bron van informatie kan zijn bij
verder onderzoek. Daarnaast wensen we met deze masterproef de neutrale lezer op een
wetenschappelijke, maar begrijpelijke manier te boeien.
Wij nodigen u uit dit werkstuk met een kritische blik te lezen, zodat u ook geprikkeld wordt
om onderzoek te verrichten.
-3-
Inhoud
VOORWOORD
INHOUDSTAFEL
ABSTRACT
SITUERING ............................................................................................................................... 1
LITERATUURSTUDIE ............................................................................................................. 2
A) Supplementatie van β-alanine en andere metabolieten .................................................. 2
1. Carnosine ..................................................................................................................... 2
1.1 Werking en functie ................................................................................................... 2
1.2 β-alanine ................................................................................................................... 4
1.3 Conclusie .................................................................................................................. 7
2. Creatine ........................................................................................................................ 8
2.1 Situering ................................................................................................................... 8
2.2 Supplementatie van creatine en de prestatiebevorderende effecten ........................ 8
2.3 Methode van supplementatie .................................................................................... 9
2.4 Invloed van koolhydraten ....................................................................................... 10
2.5 Insuline als determinant voor transport .................................................................. 11
2.6 Koolhydraten en eiwitten ....................................................................................... 11
2.7 Retentie van creatine .............................................................................................. 12
2.8 Optimaliseren van de creatineretentie .................................................................... 13
3. Carnitine .................................................................................................................... 14
3.1 Functiebeschrijving van carnitine .......................................................................... 14
3.2 Supplementatie van carnitine ................................................................................. 15
3.3 Carnitinetransporter OCTN2 .................................................................................. 15
3.4 Hyperinsulinemie via infuus .................................................................................. 16
3.5 Hyperinsulinemie door koolhydraatinname ........................................................... 16
3.6 Retentie van carnitine ............................................................................................. 17
4. Conclusie ................................................................................................................... 18
B) β-alanine metabolisme: de verscheidene pathways ...................................................... 19
1. β-alanine - carnosine reactieweg ............................................................................... 21
1.1 Carnosine synthase ................................................................................................. 21
-4-
1.2 -alaninetransport: van bloed naar spier ................................................................ 22
2. β-alanine - uracil reactieweg ...................................................................................... 24
3. β-alanine - malonaat semialdehyde - acetylCoA reactieweg ..................................... 26
3.1 β-alanine katabolisme ............................................................................................. 26
3.2 4-aminobutyraat aminotransferase (ABAT) & β-alanine-pyruvaat aminotransferase
...................................................................................................................................... 26
3.3 Metabolisme van malonaat semialdehyde .............................................................. 27
C) Onderzoeksvraag .......................................................................................................... 28
METHODE .............................................................................................................................. 29
A) Populatie ....................................................................................................................... 29
1. Rekrutering ................................................................................................................ 29
2. Aantal proefpersonen ................................................................................................. 29
B) Procedure ...................................................................................................................... 29
1. Dataverzameling ........................................................................................................ 29
2. Meetmomenten .......................................................................................................... 31
C) Meetinstrumenten ......................................................................................................... 32
1. Meting met de HPLC-methode .................................................................................. 32
2. Voorbereiding van de meting .................................................................................... 33
D) Data-analyse ................................................................................................................. 34
1. Berekenen van de β-alanineretentie ........................................................................... 34
2. Analyse van de β-alanineretentie ............................................................................... 34
RESULTATEN ........................................................................................................................ 35
1. Retentie van β-alanine na chronische supplementatie van β-alanine ........................ 35
2. Optimaliseren van β-alanineretentie door toevoeging van koolhydraten en eiwitten 36
3. Analyse van individuele waarden .............................................................................. 37
DISCUSSIE .............................................................................................................................. 39
1. Analyse van de resultaten .......................................................................................... 39
1.1 Retentie van β-alanine daalt niet na chronische supplementatie ............................ 39
-5-
1.2 Koolhydraten tonen geen effect op β-alanineretentie na chronische supplementatie
...................................................................................................................................... 39
2. Mogelijke verklaringen voor de hoge retentie van β-alanine ................................... 39
2.1 Reabsorptie van β-alanine in de nieren .................................................................. 39
2.2 Reactieweg naar energielevering ........................................................................... 40
2.3 Opname van β-alanine in de spier ter vorming van carnosine ............................... 41
2.4 Supplementatie van β-alanine kan concentratie carnosine in de hersenen doen
stijgen ........................................................................................................................... 41
2.5 Opname van β-alanine in organen .......................................................................... 41
2.6 Conclusie ............................................................................................................... 42
3. Vergelijking van de β-alanineretentie met de carnitine- en creatineretentie ............. 42
3.1 Een plafondeffect treedt op na supplementatie van creatine en carnitine .............. 42
3.2 Er treedt geen plafondeffect op na chronische supplementatie van β-alanine ....... 42
3.3 Vergelijking tussen de retentie van creatine, carnitine en β-alanine ...................... 43
4. Invloed van koolhydraten op de opname van β-alanine ............................................ 44
4.1 Activatie van β-alaninetransporter (TauT) door koolhydraatinname ..................... 44
4.2 Invloed van lage energievoorraad op de concentratie van aminozuren ................. 44
4.3 Link met de resultaten van het onderzoek .............................................................. 45
5. Verhogen van de (homo)carnosineconcentratie in het lichaam ................................. 45
5.1 Blokkeren van 4-aminobuyraat aminotransferase (ABAT) ................................... 45
6. Toekomstig onderzoek .............................................................................................. 45
6.1 Langer supplementeren .......................................................................................... 46
6.2 Voedingstoestand vergelijken ................................................................................ 46
6.3 Opname van β-alanine in de spieren ...................................................................... 46
6.4 Inhibitoren .............................................................................................................. 46
6.5 Invloed van fysieke activiteit op de opname van β-alanine in de spieren .............. 47
7. Eindconclusie ............................................................................................................. 47
REFERENTIES ........................................................................................................................ 48
-6-
ABSTRACT
De interesse in het metaboliet carnosine is tegenwoordig zeer groot. Vanuit de
sportwereld is men vooral geïnteresseerd in de prestatiebevorderende effecten van carnosine,
omdat het zou optreden als protonenbuffer. Onderzoek heeft aangetoond dat de
carnosineconcentratie in menselijke skeletspieren kan toenemen door supplementatie van β-
alanine. Bij acute supplementatie van β-alanine merkt men dat de retentie in de urine zeer
hoog is (96% bij gewone β-alanine; 98,9% bij slow-release β-alanine). Omdat bij andere
metabolieten zoals creatine en carnitine een daling van de retentie werd vastgesteld na
chronische supplementatie, werd in dit onderzoek gekeken of dit voor β-alanine ook het geval
is. Mannelijke proefpersonen (n = 7) werden gedurende zes weken (week 0 – week 5)
gesupplementeerd met PowerBar slow-release β-alanine (4.8 g/dag). Een repeated measures
test, afgenomen met het statistisch programma SPSS, toonde geen significante daling in β-
alanineretentie na zes weken β-alanine supplementatie (F = 1,148 ; p = 0,379). Daarnaast
werd in de literatuur beschreven dat de retentie van zowel creatine als carnitine steeg door de
supplementatie van beide metabolieten te combineren met koolhydraatinname. Ook deze
stelling werd nagegaan voor β-alanineretentie. De proefpersonen namen vanaf week twee
1x/week slow-release β-alanine in gecombineerd met twee energierijke snacks (PowerBar
Energize C2 Max (55g) & Powerbar Protein plus (55g)). Elke week werd gezocht naar een
significant verschil (p ≤ 0.05) tussen koolhydraten en placebo. Door middel van vier paired
sample T-testen werden beide condities aan elkaar getoetst. Zowel voor week 2 (F = 0.656 ; p
= 0.541), week 3 (F = -1.741 ; p = 0.142), week 4 (F = 0.096 ; p = 0.928) als week 5 (F =
1.320 ; p = 0.244) werden geen significante verschillen gevonden tussen de
koolhydraatconditie en de placeboconditie.
Uit dit onderzoek blijkt dat de retentie van β-alanine niet daalt na chronische
supplementatie van β-alanine. Ook heeft het aangetoond dat koolhydraten geen invloed
uitoefenen op de retentie van β-alanine. Toch leverden de resultaten interessante bevindingen
en theorieën op. Zo bleek dat het lichaam β-alanine niet graag wil afstaan aan de urine,
wellicht omdat β-alanine tal van nuttige reactiewegen kan doorlopen. Sommige van die
reactiewegen zijn reeds gekend maar verder onderzoek is nodig. Daarnaast werd gesteld dat
supplementatie van β-alanine gecombineerd met een toestand van insulinemia, kan zorgen
voor een grotere stijging van de carnosineconcentratie in de spier.
-1-
SITUERING
De olympische slogan "citius, altius, fortius" toont aan dat de competitie in topsport
steeds hogere pieken haalt. Atleten streven naar optimale prestaties, die hen legendarisch
maken. Om optimaal te presteren zoeken atleten vaak hulp in het gebruik van
voedingssupplementen. In topsport is voeding een onmiskenbare schakel geworden.
Welke voedingssupplementen precies een effect teweeg brengen en hoe groot deze
effecten kunnen zijn wordt al meer dan 50 jaar door fysiologen bestudeerd. Het metaboliet
carnosine krijgt tegenwoordig veel aandacht omdat men vermoedt dat het een positieve
invloed kan hebben op het prestatievermogen. Om een beter zicht te krijgen op de werking
van dit metaboliet wordt de fysiologische rol van carnosine grondig bestudeerd.
-2-
LITERATUURSTUDIE
A) Supplementatie van β-alanine en andere metabolieten
1. Carnosine
1.1 Werking en functie
Een aantal voedingssupplementen, waaronder carnosine, worden ingenomen om een
positief effect te bekomen op het energiemetabolisme. Het is belangrijk om eerst te kijken
naar de algemene kenmerken van carnosine vooraleer de prestatiebevorderende effecten
besproken worden.
Bij mensen kan men carnosine vooral aantreffen in de skeletspieren (99%). Carnosine
is een dipeptide dat bestaat uit L-histidine en β-alanine. Het enzym carnosine synthetase (of
synthase) (figuur 1) katalyseert de vorming van deze dipeptide in spier- en zenuwweefsel bij
ratten (Ng RH et al., 1978) en kippen (Winnick & Winnick, 1959) maar ook in skeletspieren
en zenuwcellen van het centrale zenuwstelsel bij mensen (Bakardjiev en Bauer, 1994).
Daarnaast kunnen mensen ook carnosine opnemen uit natuurlijke voedingsbronnen zoals
vlees en vis (Abe H et al., 2000).
Een aantal onderzoeken toonden aan dat carnosine een effect heeft op een aantal
aspecten van het uithoudings- en prestatievermogen van de spier. Allereerst zou het een
protonbuffer zijn (Bate-Smith EC, 1938) die ervoor zorgt dat de zuurtegraad minder snel
toeneemt bij intensieve inspanning (Baguet A et al., 2010). Daarnaast werd er gevonden dat
carnosine kan fungeren als regulator bij spiercontracties (Batrukova MA et al., 1997), als een
Figuur 1: De vorming van carnosine uit L-
histidine en β-alanine onder invloed van
carnosine synthetase in de skeletspier. β-alanine
-3-
antioxidant (Boldyrev AA., 1993), en als een bron van histidine voor synthese van histamine
(Flancbaum L et al., 1990).
Doordat carnosine heel wat positieve effecten heeft, zowel op vlak van gezondheid als
op sportief vlak, tracht men de concentratie ervan in het lichaam te verhogen (Stellingwerff T
et al., 2012). Het onderzoek van Dunnett en Harris (1999) waarbij men een significante
stijging van de carnosineconcentratie vond na supplementatie van β-alanine bij paarden, was
de aanleiding voor het onderzoek van Harris et al. (2006).
Harris et al. (2006) onderzochten bij menselijke subjecten het verschil tussen
supplementatie van vrije β-alanine en supplementatie van gebonden β-alanine met histidine,
gekend onder de naam carnosine.
De proefpersonen werden in vier groepen verdeeld en werden dagelijks gedurende vier
weken gesupplementeerd (figuur 2). Groep 1 (A-E) kreeg dagelijks 3.2g β-alanine, wat neer
komt op een totale toediening van 89.6g β-alanine in vier weken tijd. Groep 2 (F-J) kreeg
iedere week een hogere dosis β-alanine gesupplementeerd, goed voor 4g/dag in de eerste
week, oplopend tot 6.4g/dag in de vierde week. Groep 2 kreeg gedurende de vier weken in
totaal 145.6g β-alanine toegediend. De derde groep (K-O) kreeg L-carnosine toegediend
volgens hetzelfde stramien als groep 2. De absolute hoeveelheid werd aangepast zodat de
relatieve hoeveelheid carnosine isomolair gelijk zou zijn aan de dosis β-alanine. Groep 4 (P-
U) was de controlegroep en kreeg dagelijks een placebo (maltodextrine) toegediend.
Alle drie de
supplementatiemethoden zorgden voor
een even grote stijging van de
carnosineconcentratie in de skeletspieren
ten opzichte van het placebo (figuur 2).
Door het lage aantal proefpersonen vond
men geen significant verschil tussen
groep 1, groep 2 en groep 3. β-alanine is
dus een belangrijke precursor voor de
carnosine-synthese in de spieren.
Omdat de supplementatie van β-alanine even efficiënt is als supplementatie van
carnosine verkiest men het gebruik van β-alanine, wat goedkoper is. Tevens wordt carnosine
Figuur 2: Invloed van β-alanine en carnosine supplementatie
op de carnosineconcentratie in de spier (Harris RC et al.,
2006). (Zwart= pretest, wit = posttest; A -> J kreeg β-alanine,
K -> O kreeg carnosine, P -> U kreeg een placebo).
-4-
wanneer het in de bloedbaan terechtkomt, afgebroken door het enzym carnosinase (figuur 3)
(Asatoor AM et al., 1970; Sadikali F et al., 1975; Teufel M et al., 2003).
Figuur 3: Gesupplementeerde
carnosine wordt in de bloedbaan
afgebroken door het enzym
serumcarnosinase (groen)
1.2 β-alanine
β-alanine is dus de bepalende factor voor de carnosineconcentratie in het menselijk
lichaam. Dit metaboliet wordt in het menselijk lichaam gevormd in de lever als eindproduct
van de afbraak van uracil en thymine (Matthews en Traut, 1987). Maar, de concentratie β-
alanine in het lichaam is vrij laag ten opzichte van de concentratie L-histidine (Horinishi H et
al., 1978). De meeste carnivoren nemen β-alanine op via hun dieet, door de hydrolyse van
dipeptides.
Omdat het opnemen van β-alanine via natuurlijke bronnen beperkt is, opteert men om
β-alanine te supplementeren wanneer men de carnosineconcentratie in de spieren wil doen
stijgen. Zoals eerder beschreven toonde de studie van Harris et al. (2006) aan dat de
supplementatie van zowel β-alanine als
carnosine leidt tot een toename van de
carnosineconcentratie in de vastus
lateralis bij mensen.
Ook de studie van Stellingwerff
(2011), waarin men poogde om het
supplementatieprotocol verder te
optimaliseren toonde aan dat het
supplementeren van β-alanine leidt tot
een stijging van de
Figuur 4: Twee verschillende supplementatiemethoden voor β-
alanine. De controlegroep kreeg een placebo toegediend
(Stellingwerff T et al., 2011).
-5-
carnosineconcentratie in menselijke spieren (Baguet A et al., 2009; Harris RC et al., 2006;
Hill CA et al., 2007; Kendrick IP et al., 2008). Stellingwerff et al. (2011) kozen voor een
placebogecontroleerd, dubbel blind onderzoek waarin men twee supplementatiemethoden
ging vergelijken gedurende acht weken, gevolgd door een wash-out periode van nog eens acht
weken. Groep 1 (high-low groep) kreeg de eerste vier weken dagelijks 3.2g β-alanine
toegediend, gevolgd door 1.6g/dag in de laatste vier weken. De tweede groep (low-low groep)
kreeg gedurende acht weken dagelijks 1.6g β-alanine gesupplementeerd. Groep 3 was een
controlegroep, zij kregen dagelijks een placebo toegediend (figuur 4). Via een H-MRS werd
de carnosineconcentratie gemeten in de m. tibialis anterior en de m. gastrocnemius. De
metingen vonden plaats in week 0, 2, 4, 8, 12 en 16.
De resultaten van die metingen tonen aan dat beide supplementatiemethoden leiden tot
een toename in spiercarnosine. Er is wel duidelijk een verschil in grootte van toename van de
carnosineconcentratie. Hierdoor kon men concluderen dat de hoeveelheid β-alanine dat wordt
gesupplementeerd bepalend is voor de toename in carnosineconcentratie. Hoe groter de dosis
β-alanine, hoe meer carnosine er wordt gevormd in de spier. Men vond geen invloed van de
carnosineconcentratie in het begin van het onderzoek. Ook de invloed van het spiervezeltype
werd vergeleken tussen m. gastrocnemius (trage vezels) en m. tibialis anterior (snelle vezels)
(figuur 5), maar men vond geen invloed op de toename van carnosineconcentratie. Daarnaast
kon men aantonen dat de washout (afbraak van gevormde carnosine) vrij traag verliep (slechts
2%/week).
Figuur 5: Toename van de carnosineconcentratie in de m.gastrocnemius (A) en de m. tibialis anterior
(B). Men vond geen verschil in toename van carnosineconcentratie tussen beide spieren ondanks het
verschil in spiervezeltype. De m. gastrocnemius bestaat uit meer snelle spiervezels dan de m. tibialis
anterior. De beginconcentratie aan carnosine van de m. gastrocnemius was 3 mmol/kg ww groter dan
bij de m. tibialis anterior (p < 0.001) (Stellingwerff T et al., 2011)
-6-
Het is belangrijk om te weten welke supplementatiemethode wordt gehanteerd om de
opname van β-alanine te optimaliseren. De manier van supplementatie kan variëren in
dagelijkse dosis, frequentie, duur van supplementatie, verschil tussen high-responders en low-
responders,… Deze factoren moeten bijgevolg zodanig gemanipuleerd worden dat β-alanine
optimaal wordt opgenomen in het lichaam. De studie van Stellingwerff et al. (2011) toonde
aan dat er een verband is tussen de grootte van de dosis die men inneemt en de grootte van de
stijging in carnosineconcentratie. Helaas is het onmogelijk om grote dosissen te
supplementeren daar Harris et al. (2006) aantoonden dat één enkele dosis van meer dan 800
mg kan leiden tot klachten bij de subjecten. De klachten varieerden tussen vasodilatatie ter
hoogte van de huid, prikkelend gevoel en blozen.
Tegenwoordig maakt men ook gebruik van β-alaninetabletten die traag worden
vrijgegeven ter hoogte van de darmen (slow-release
tablets). Doordat de piek in het bloed veel lager is kan men
tot 1,6g in één enkele dosis supplementeren zonder dat er
symptomen van paresthesie optreden (Harris RC et al.,
2008; Décombaz J et al., 2011).
Men heeft kunnen aantonen dat de excretie van β-
alanine na supplementatie van slow-release β-alanine tot
70% lager was in vergelijking met gewone β-alanine
(figuur 6) gedurende de eerste twee uur (Décombaz J et al.,
2011). Men vond dat de retentie van slow-release β-alanine groter was dan de retentie van
gewone β-alanine (98.9 ± 0.9% vs 96.3 ± 2.1% met p < 0.0001). De retentie is zeer hoog,
maar blijft dit zo na een lange supplementatieperiode?
Via urine-analyses, toonde men in studies van relevante metabolieten aan dat
koolhydraten een verhoogde retentie teweeg kunnen brengen (Steenge GR et al., 2000;
Stephens et al., 2007). Dit kan een belangrijke bevinding zijn om toe te passen in het
onderzoek rond β-alanine, aangezien ook β-alanine via urine wordt uitgescheiden, weliswaar
in mindere mate dan de bestudeerde metabolieten (figuur 7) (Harris RC et al., 2006).
Figuur 6: Verschil in β-alanine verlies
via urine tussen gewone tabletten (REF)
en slow-release tabletten (TAB)
(Décombaz et al., 2011).
-7-
Na supplementatie van 10, 20 en
40 mg.kg-1
β-alanine vond men
respectievelijk retentiewaarden van 99.4
± 0.09%, 98.5 ± 0.40% en 96.4 ± 0.47%.
De retentie in de urine daalt dus bij
hogere supplementatie van β-alanine. De
verklaring voor deze bevinding ligt
waarschijnlijk bij de nieren, waar de
transporters in de proximale tubulus die
verantwoordelijk zijn voor de reabsorptie
van β-alanine, mogelijks overladen
worden wanneer meer dan 20 mg.kg-1
β-
alanine wordt toegediend bij eenmalige
supplementatie (Jessen et al., 1989). Bijgevolg komt er meer β-alanine in de urine terecht
waardoor men een daling van de retentie krijgt.
1.3 Conclusie
Carnosine- en β-alaninesupplementatie zorgen beiden voor een stijging van carnosine
in de spieren. Bij éénmalige supplementatie van slow-release β-alanine vindt men een
verhoogde retentie ten opzichte van de gewone β-alanine. De vraag rijst of de retentie gelijk
blijft bij langdurige supplementatie. Een grondige studie van creatine- en carnitineretentie is
vereist vooraleer onderzoek te doen naar de retentie van β-alanine.
Verschillende studies onderzochten de biologische precursoren van creatine en
carnitine. Tevens onderzocht men de rol en de functie van creatine en carnitine in de
skeletspieren (Bloch K et al., 1941; Walker JB, 1979; Alkonyi I et al., 1975; Fritz IB en
McEwen B, 1959). Men ontdekte dat deze metabolieten een rol spelen bij de energielevering
in de skeletspieren. Zoals later beschreven zal worden, heeft insuline een bevorderend effect
op de opname van deze metabolieten in de skeletspier (Hultman E et al., 1996; Stephens FB et
al., 2007). Om deze redenen worden beide metabolieten in de volgende hoofdstukken
nauwkeuriger bestudeerd.
Figuur 7: β-alanineconcentratie gevonden in urine na
supplementatie van 0, 10, 20 & 40 mg β-alanine per kg LG en
40 mg per kg kippenborst (carnosine). Bij 0 mg vond men
geen sporen van β-alanine terug in de urine. Bij 10 mg.kg-1
was de retentie 99.4 ± 0.09%, bij 20 mg.kg-1 was de retentie
98.5 ± 0.40% en bij 40 mg.kg-1 96.4 ± 0.47% (Harris RC et
al., 2006)
-8-
2. Creatine
2.1 Situering
Creatine is een metaboliet dat een functie heeft in het anaeroob
energieleveringssysteem. Creatine gebonden aan een fosfaatgroep (fosfocreatine) zorgt voor
een omzetting van het laag energetische ADP naar het hoog energetische ATP, waardoor
energie opnieuw voorradig is in de spier (figuur 8). Dit metaboliet zorgt dus enerzijds voor
een lage concentratie ADP en anderzijds voor een continue aanwezigheid van ATP in
anaerobe omstandigheden (Walker JB, 1979; Walliman T et al., 1992).
Figuur 8: Omzetting van fosfocreatine naar creatine onder invloed van het enzym creatine kinase. Bij deze reactie
wordt 1 ATP gevormd.
2.2 Supplementatie van creatine en de prestatiebevorderende effecten
Creatinesupplementatie zorgt voor een snellere resynthese van ATP in type II
spiervezels, waardoor de energievoorraad sneller aangevuld wordt. Op die manier zou
uitputting uitgesteld worden, wat leidt tot een verbeterde prestatie op inspanningen van
maximale intensiteit (Casey A et al., 1996; Birch R et al., 1994).
Casey en Greenhaff (2000) onderzochten verder de invloed van chronische
creatinesupplementatie op het metabolisme van de skeletspieren en het gevolg op de prestatie.
Zij vonden dat bij inspanningen van maximale intensiteit de ATP resynthese sneller verliep
door een verhoging van de beschikbaarheid aan fosfocreatine. Dit effect vonden ze ook terug
wanneer meerdere opeenvolgende inspanningen aan maximale intensiteit werden gedaan.
Creatine heeft geen bevorderende effecten bij inspanningen van lange duur en submaximale
intensiteit (Casey A en Greenhaff PL, 2000).
De fysiologische invloed van creatine beperkt zich dus duidelijk tot de eerste seconden
van een maximale inspanning (Casey A en Greenhaff PL., 2000). Zowel Casey en Greenhaff
(2000) als Birch et al. (1994) vonden dat de tijd vanaf de supplementatie tot het moment
waarop het effect van het metaboliet is uitgewerkt een belangrijke factor was voor het effect
van creatine-supplementatie op de prestatie van maximale intensiteit.
Omdat creatine positieve effecten teweeg brengt op het anaeroob prestatievermogen
heeft men dit metaboliet als supplementatiemiddel onderzocht. Er is gemiddeld 124 mmol/kg
-9-
creatine voorradig, wat overeenkomt met ongeveer 120g creatine voor een persoon van
ongeveer 70kg (Harris RC et al., 1974; Casey A en Greenhaff PL, 2000). Aangezien creatine
een belangrijke rol speelt in de stabiliteit van de energiehomeostase vindt men de grootste
concentratie terug in de skeletspieren (Hunter A, 1922; Walker JB, 1979). Creatine kan onder
twee vormen voorkomen, namelijk vrije creatine en fosfocreatine (65%) (Casey A et al.,
1996). De mens kan creatine opnemen uit natuurlijke voedingsbronnen zoals vlees en vis
(Walker JB, 1979).
Een belangrijke bevinding naar de supplementatie van creatine is de inter-individuele
verschillen vóór supplementatie. Blijkbaar varieert de totale hoeveelheid spiercreatine tussen
de 100 en de 150 mmol/kg droge massa (Harris RC et al., 1992). De belangrijkste determinant
voor de variabiliteit in creatineconcentratie in de spier is de spiervezeltypesamenstelling.
Type II spiervezels bezitten een grotere concentratie (fosfo-)creatine dan type I spiervezels,
met als gevolg dat type II spiervezels een hogere ATP-resynthese kunnen verwezenlijken
(Casey A et al., 1996).
2.3 Methode van supplementatie
Algemeen worden drie verschillende manieren van supplementatie gehanteerd om de
creatineconcentratie in de spier te verhogen. De snelle methode hanteert 20g/dag gedurende
vijf dagen (Harris RC et al., 1992). De trage methode hanteert 2g/dag gedurende 28 dagen
(Hultman E et al., 1996). Beide methoden zorgen voor een gemiddelde stijging van 20%,
alleen de tijdsperiode waarin deze stijging in creatineconcentratie gebeurt varieert dus.
Volgens de studie van Hultman et al.
(1996) zou de combinatie van beide
methoden ook vaak gebruikt worden. Na vijf
dagen supplementatie aan 20g/dag daalde
gedurende de daaropvolgende dagen de
totale creatineconcentratie bij de groep
waarbij de supplementatie werd stopgezet (=
controle groep). Wanneer de volgende dagen
slechts 2g/dag creatine wordt ingenomen (=
experimentele groep) merkt men een
stabilisatie van de totale creatineconcentratie
(Hultman E et al., 1996). Opnieuw dient er te
Figuur 9: De invloed van initiële creatineconcentratie in de
spier op de stijging van creatine in de spier na supplementatie
van creatine (Greenhaff PL et al., 1994).
-10-
worden vermeld dat er een inter-individuele variabiliteit in creatine-oplading bestaat. De
grootte van deze inter-individuele variabiliteit varieert tussen 2 en 40 mmol/kg droge massa.
Figuur 9 toont duidelijk de sterke en zwakke responders aan (Green AL et al., 1996;
Greenhaff PL et al., 1994; Harris RC et al., 1992), waarbij men vaststelt dat een lage initiële
creatineconcentratie vaak leidt tot een hoge respons (op de figuur de nummers 1, 2, 3 en 4).
Proefpersonen met een initieel hoge creatineconcentratie (op de figuur de nummers 5, 6, 7 en
8) vertonen dus een minder grote stijging in creatineconcentratie in de spieren (Greenhaff PL
et al., 1994).
2.4 Invloed van koolhydraten
Na deze bevindingen zijn onderzoekers gaan kijken hoe deze stijging nog verhoogd
kan worden bij responders of hoe er bij non-responders toch een significante stijging kan
bekomen worden. Zowel contracties (submaximale inspanningen) (Harris RC et al., 1992) als
aanwezigheid van insuline (Haughland RB en Chang DT, 1975) zouden de opname van
creatine stimuleren. Insuline wordt vrijgegeven in de bloedbaan wanneer de
bloedsuikerspiegel stijgt, bijvoorbeeld door inname van koolhydraatrijke snacks.
De eerste studie die onderzoek verrichtte naar het gebruik van koolhydraten was de
studie van Green et al. (1996). Men vond dat supplementatie van creatine in combinatie met
93g opgeloste koolhydraten een hogere toename van creatine in de spier veroorzaakte dan
wanneer deze koolhydraten afwezig
bleven (in de spier steeg de concentratie
creatine met 60% meer bij de
koolhydratengroep) (figuur 10). Verder
stelde men in deze studie een daling vast
in inter-variabiliteit bij de
koolhydratengroep. Men vond een
stijging van meer dan 20mmol/kg droge
massa van de totale spiercreatine. Er
wordt algemeen aanvaard dat een stijging
van 20 mmol/kg nodig is om te kunnen
spreken van een significant verschil in creatineconcentratie in de spier (Casey A et al., 1996;
Greenhaff PL et al., 1994). In deze studie vond men trouwens ook dat de combinatiemethode
Figuur 10: Invloed van creatinesupplementatie met (zwarte
balk) en zonder (witte balk) koolhydraatinname op de totale
stijging van creatine in de spier (Green AL, 1996).
-11-
voor een daling van de creatineconcentratie in het plasma zorgde, in vergelijking met de
methode waarin creatine alleen werd gesupplementeerd (Green AL et al., 1996).
2.5 Insuline als determinant voor transport
Dierenstudies wezen uit dat het stimulerend effect van koolhydraten te wijten is aan
insuline-gerelateerde opname van spiercreatine. Wanneer men koolhydraten inneemt stijgt de
concentratie van glucose in het bloed. Bij gezonde mensen leidt dit onmiddellijk tot het
vrijzetten van insuline in de bloedbaan ter hoogte van de alvleesklier.
Creatine kan via twee mechanismen in de spier terecht komen. Enerzijds zal de
depletie van fosfocreatine in de spier of een overaanbod van creatine in het bloed voor een
concentratiegradiënt zorgen waardoor creatine het membraan zal passeren (Fitch CD en
Shields RP, 1966; Fitch CD et al., 1968). Wanneer door biosynthese of door supplementatie
de creatineconcentratie in het bloedplasma stijgt, zal meer creatine in de spiercellen trekken
waarbij een specifieke creatinetransporter is betrokken (Wyss M en Kaddurah-Daouk R,
2000). Deze creatinetransporter (CreaT) is zeer specifiek voor creatine en laat geen andere
substanties via deze weg in de spiervezels (Williams MH et al., 1999). Anderzijds zal creatine
carrier-gemedieerd de natriumgevoelige spiercel binnenkomen (Daly MM en Seifter F, 1980).
Daar de natrium-kaliumpomp sterk wordt geactiveerd door insuline, zal meer natrium uit de
cel komen waardoor de opname van creatine vanuit het bloed naar de spiercellen zal stijgen.
Een insulinedrempel van 100mU/l is noodzakelijk om een waarneembaar effect te bekomen
op de toename van spiercreatine. (Hultman E et al., 1996; Odoom JE et al., 1996).
2.6 Koolhydraten en eiwitten
Glucose is de belangrijkste
regulator wat betreft het vrijmaken van
insuline via de alvleesklier, maar ook
eiwitten zouden grote effecten hebben op
het vrijmaken van insuline in de bloedbaan.
De vertering van koolhydraten gebeurt
moeilijker dan die van eiwitten. Om die
reden onderzochten Steenge et al. (2000) het
effect van creatinesupplementatie op
spiercreatine via vier verschillende condities.
Figuur 11: De insulineconcentraties in het serum
voor en na supplementatie van creatine met (witte
cirkel en zwart vierkant) en zonder (zwarte cirkel
en wit vierkant) koolhydraten(Steenge GR et al.,
2000).
-12-
Zowel de combinatie van eiwitten en koolhydraten (47g koolhydraten en 50g eiwitten)
en de hoge koolhydraatmethode (94g koolhydraten) zorgden voor een grotere stijging (25%)
van creatine in de spieren in vergelijking met de controlegroep. Beide methoden geven een
even hoge insulinevrijzetting weer door een gelijke oppervlakte onder de insuline-tijdcurve
(zie figuur 11), wat erop wijst dat het niet nodig is om grote hoeveelheden koolhydraten in te
nemen om hetzelfde effect te bekomen (Steenge GR et al., 2000). Dit houdt in dat de
insulineconcentraties zowel bij de hoge koolhydraatmethode als de eiwit-koolhydraatmethode
even hoog zijn en op hetzelfde tijdstip na de supplementatie vallen.
In hetzelfde onderzoek van Steenge et al. (2000) onderzocht men ook de hypothese dat
koolhydraten een verhoogde retentie teweeg brengen. Op figuur 12 is te zien dat zowel de
eiwit-koolhydraatmethode en de hoge koolhydraatmethode een significant hogere retentie
opleveren.
Ten eerste kan men op basis van deze
resultaten besluiten dat de creatine-excretie een
belangrijke indicator is voor de concentratie
creatine in de spier. Daarnaast heeft men ook
kunnen aantonen dat de totale creatine-excretie
in de urine verlaagd wordt wanneer de
supplementatie van creatine gecombineerd
wordt met 94g koolhydraten of door 47g
koolhydraten en 50g eiwitten (Steenge GR et al.,
2000).
2.7 Retentie van creatine
Harris et al. (1992), Preen et al. (2001) en Greenwood et al. (2003) toonden aan dat de
retentie van creatine in de urine daalde na chronische supplementatie van creatine. In de
studie van Harris et al. (1992) daalde de retentie overheen de drie dagen van 60% naar 32%
bij supplementatie van creatine. Preen et al. (2001) supplementeerden hun doelgroep dagelijks
20g/dag gedurende vijf dagen. Men toonde aan dat de creatineretentie daalde van 63% op dag
1 tot 46% op dag 5. Ook Greenwood et al. (2003) supplementeerden dagelijks 20g creatine
monohydraat gedurende drie dagen. Eveneens vond men een daling van de creatineretentie in
de urine. Op dag 1 was de retentie 72.3%, op dag 2 57.1% en op dag 3 53.6%. Elk van deze
onderzoeken tonen aan dat de retentie van creatine in de urine daalt bij chronische
Figuur 12: De totale creatineretentie bij de hoge
koolhydraatgroep en de combinatiegroep liggen
significant hoger dan de placebo en de lage
koolhydraatgroep (Steenge GR et al., 2000).
-13-
supplementatie van creatine. Hierdoor ging men op zoek naar manieren om de retentie, en dus
de opname in de spieren, van creatine te verhogen.
2.8 Optimaliseren van de creatineretentie
Een mengsel bestaande uit koolhydraten, eiwitten en aminozuren zorgde voor een
identieke verhoging in creatineretentie (figuur 13) en een even hoge insuline-excretie (figuur
14) als de eiwit-koolhydraatmethode en de hoge koolhydraatmethode (Pittas et al., 2010). Dit
mengsel is tevens calorie-armer en zorgt voor minder gastro-intestinale problemen (Van Loon
et al., 2000).
Figuur 14: De totale hoeveelheid creatine-excretie via de urine
bij enkel creatine-inname (zwart), bij creatine gevolgd door
95g koolhydraten (wit) en bij creatine gevolgd door 57g
koolhydraten, 14g eiwitten en 14g aminozuren (gestreept)
(Pittas G et al., 2010)
Figuur 13: Serum insuline concentraties na supplementatie
van creatine (ruiten), creatine met 95g koolhydraten
(vierkanten), creatine met 57g koolhydraten, 14g eiwitten,
14g aminozuren (driehoeken) (Pittas G et al., 2010)
-14-
3. Carnitine
3.1 Functiebeschrijving van carnitine
In de jaren 50 zijn verschillende onderzoeken verricht naar de fysiologische functie
van carnitine in de skeletspieren. Friedman en Fraenkel (1955) hadden in hun onderzoek
ontdekt dat carnitine kon worden geacetyleerd door acetyl-CoA en omgekeerd (Friedman S en
Fraenkel G, 1955). Daar acetyl-CoA een belangrijke intermediair is in de Krebscyclus, kan
men veronderstellen dat carnitine een rol kan spelen in het energiemetabolisme van de spier.
Overvloedig acetyl-CoA zorgt voor verbranding van glucose terwijl acetyl-carnitine
(ALCAR) zorgt voor vrijzetting van vrije vetzuren (Fritz IB, 1955). Latere studies hebben een
meer concrete functie beschreven: carnitine speelt een rol als substraat in de translocatie
(figuur 15) van vrije vetzuren in de mitochondriën (Fritz IB en McEwen B, 1959; Fritz IB en
Yue KTN, 1963).
Figuur 15: Schema van de metabole functies van carnitine. De rode pijlen tonen de functie van carnitine in de
translocatie van lange ketens vrije vetzuren: carnitine levert de acyl-groep. De blauwe pijlen tonen de tweede functie
van carnitine: carnitine treedt op als buffer voor het behoud van vrij CoA (Stephens FB et al., 2007).
Een tweede belangrijke rol is het vormen van acetylcarnitine om steeds vrije CoA
beschikbaar te hebben (Childress et al., 1966; Harris RC et al., 1987). In de studie van
Cederblad et al. (1974) werden concentraties carnitine gevonden, afhankelijk van de
-15-
spiergroep, variërend tussen 13.7 mmol/kg droge massa en 17.9 mmol/kg droge massa
(Cederblad G et al., 1974).
3.2 Supplementatie van carnitine
Het supplementeren van carnitine leidt bij mensen vaak tot een stijging van de
carnitineconcentratie in het bloedplasma, maar men vond weinig tot geen stijging van
carnitine in de spieren (Barnett C et al., 1994; Vukovich MD et al., 1994; Wächter S et al.,
2002). Vukovich et al. (1994) toonden aan dat de carnitineconcentratie in de spieren niet steeg
na supplementatie van 6g carnitine per dag gedurende 7 of 14 dagen. Later dat jaar toonde
ook de studie van Barnett et al. (1994) aan dat de carnitineconcentratie in de spieren niet steeg
na supplementatie van carnitine. De proefpersonen namen gedurende 14 dagen 4g/dag
carnitine in. Men vond duidelijk een stijging van de concentratie carnitine in het bloedplasma,
maar in de spieren vond men geen significante stijging. Een studie op lange termijn (2x2g
carnitine/dag gedurende 3 maanden) toonde ook geen significante stijging van de
carnitineconcentratie in de skeletspieren (Wächter S et al., 2002). Meer inzicht over het
transport van carnitine naar de skeletspieren is dus nodig om de carnitineconcentratie in de
spieren te verhogen.
3.3 Carnitinetransporter OCTN2
Carnitine in het bloedplasma is zodanig laag in vergelijking met de omliggende
weefsels dat actief transport noodzakelijk is om carnitine in andere weefsels te doen stijgen
(Cederblad G et al., 1974; Yue KTN en Fritz IB, 1962;
Brooks DE en McIntosh JE, 1975; Rebouche CJ, 1977).
Actief transport van carnitine werd ontdekt via de
activatie van het eiwit OCTN2 (Tamai I et al., 1998). Dit
is een carnitinetransporter die insulinegevoelig is (figuur
16). Stephens et al. (2007) vonden een stijging van 2.3
keer de OCTN2-expressie wanneer het lichaam in een
staat van hyperinsulinemie verkeert (Stephens FB et al.,
2007). Op basis van deze bevinding kan men concluderen
dat hyperinsulinemie voordelig is voor de opname van
carnitine in de spieren. Net zoals in de studies rond
creatine is een minimale hoeveelheid van 50 mU/l noodzakelijk om een zichtbare toename te
creëren van de carnitineconcentratie in de spieren. (Stephens FB et al., 2007). In de volgende
Figuur 16: De rol van insuline en de
natrium/kalium-pomp) op de
carnitinetransporter OCTN2 (Stephens
FB et al., 2007).
-16-
paragrafen worden studies besproken die de rol van hyperinsulinemie hebben onderzocht op
de totale carnitineconcentratie.
3.4 Hyperinsulinemie via infuus
Na de bevindingen over carnitinetransport
werden onderzoeken opgesteld om de
carnitineconcentratie in de spieren toch te doen
stijgen. In de studie van Stephens et al. (2007)
vond men reeds een significante stijging van
13% in de totale concentratie van
spiercarnitine wanneer hyperinsulinemie
veroorzaakt werd via een infuus, gevolgd door
een intraveneuze toediening van carnitine
(figuur 17).
3.5 Hyperinsulinemie door koolhydraatinname
Zoals eerder werd aangetoond, kan men ook hyperinsulinemie bekomen via het innemen
van koolhydraten. Een tweede onderzoek van Stephens et al. (2007) onderzocht de invloed
van koolhydraatinname op de carnitineopname en –retentie bij mensen. Het onderzoek
leverde twee belangrijke bevindingen op. Koolhydraten zorgen voor een lagere totale
carnitineconcentratie in de bloedbaan, wat duidt op een verhoogde opname in de spier in
vergelijking met controles (= zonder koolhydraten). In de urine vond men een lagere excretie
van totale carnitine, wat duidt op een verhoogde retentie van totale carnitine in vergelijking
met controles (= zonder koolhydraten).
Men kan concluderen dat een stijging in insuline, veroorzaakt door koolhydraatinname,
zorgt voor een hogere retentie van carnitine, wat resulteert in een hogere totale
carnitineconcentratie in het lichaam (Stephens FB et al., 2007).
Figuur 17: Totale spiercarnitineconcentratie bij
verschillende toestanden van hyperinsulinemie
(Stephens FB et al., 2007).
-17-
Uit het recente onderzoek van
Wall et al. (2011) is gebleken dat de
totale carnitineconcentratie in de
skeletspier met 21% kan stijgen door
middel van supplementatie na een
periode van 24 weken (figuur 18).
Als gevolg nam het vetmetabolisme
toe en werd glycogeendepletie in de
spier tegen gegaan tijdens inspanning
(30 minuten aan 50% VO2max, 30
minuten aan 80% VO2max en 30
minuten inspanningstest) (Wall BT et al., 2011). Wanneer proefpersonen 2x per dag 80g
koolhydraten innamen samen met 2g carnitine, steeg de totale carnitineconcentratie in de spier
significant in vergelijking met de groep die enkel 80g koolhydraten innam. Men vond ook een
halvering in spierglycogeenverbruik tijdens inspanningen van lage intensiteit. Het aandeel in
energielevering van vrije vetzuren verhoogde dankzij de verhoogde spiercarnitine (Wall BT et
al., 2011).
3.6 Retentie van carnitine
In de studie van Stephens et al. (2007) onderzocht men de carnitineretentie na chronische
carnitinesupplementatie (3g/dag) (figuur 19). Na drie dagen steeg de excretie van carnitine
wat natuurlijk neerkomt op een daling
van de retentie, bij zowel de
controlegroep 97.8% (dag 1) naar
90.6% (dag 3) als bij de
koolhydratengroep 98.2% (dag 1) naar
94.4% (dag 3). Hierdoor konden
Stephens et al. aantonen dat
koolhydraten een kleinere daling van
de carnitineretentie veroorzaken bij
chronische supplementatie (p < 0.01).
Figuur 18: 80g koolhydraten en 2g carnitine verhogen de totale
concentratie van carnitine in de spier in vergelijking met wanneer
gesupplementeerd wordt zonder koolhydraten (Wall BT et al.,
2011).
Figuur 19: Dagelijkse hoeveelheid carnitine die wordt
afgescheiden in de urine met (zwarte cirkels) en zonder (witte
cirkels) koolhydraten. Met koolhydraten werd significant (p <
0.01) minder carnitine uitgescheiden in de urine (Stephens FB
et al., 2007).
-18-
4. Conclusie
De studie rond de supplementatie en retentie van creatine en carnitine leverde enkele
interessante bevindingen op die men in acht moet nemen in het onderzoek naar de retentie van
β-alanine. De creatineconcentratie in de spieren kan stijgen door supplementatie van creatine,
daarentegen merkt men bij carnitine enkel een stijging van de carnitineconcentratie in het
bloedplasma en niet in de spieren. Er werd bij beide metabolieten aangetoond dat de retentie
daalde na chronische supplementatie.
Beide metabolieten worden bij het supplementeren beïnvloed door de insulineconcentratie
in het bloed. Insuline activeert de Na+/K
+-pomp en tevens ook de transporters die zorgen dat
het metaboliet wordt opgenomen in de spier. Om de insulineconcentratie te doen stijgen kiest
men in vele studies voor het toedienen van koolhydraten.
Omdat een grote hoeveelheid koolhydraten een negatieve invloed hebben op het gastro-
intestinaal stelsel heeft men gezocht naar alternatieven. Zo vond men dat een combinatie van
koolhydraten en eiwitten even efficiënt werkte als een hoge concentratie koolhydraten. Zelfs
de toevoeging van enkele aminozuren optimaliseerde de aanmaak van insuline en het
transport van creatine. Creatine en carnitine worden beter opgenomen in het lichaam wanneer
men deze samen met koolhydraten en eiwitten inneemt. Hierdoor kan men de hypothese
stellen dat dit ook het geval zou kunnen zijn voor β-alanine, omdat transporters van β-alanine
ook Na+-gevoelig zijn.
-19-
B) β-alanine metabolisme: de verscheidene pathways
De studie van Stellingwerff et al. (2011) toonde aan dat na éénmalige supplementatie
van -alanine slechts een paar procent in de urine terechtkomt. Dit wil zeggen dat een groot
deel van de gesupplementeerde -alanine wordt opgenomen in het lichaam. Men weet dat -
alanine onder andere wordt omgezet naar (spier)carnosine. Hoeveel -alanine er wordt
omgezet naar carnosine kan berekend worden doordat 100g -alanine zorgt voor een stijging
van 2 mmol/kg (Stellingwerff T et al., 2011). Bij een mens die 30 kg spieren bezit komt dit
neer op 5.34% dat wordt omgezet naar spiercarnosine. Op basis van dit getal kan men de
vraag stellen waar de andere 95% naar toe gaat.
Zoals afgebeeld op figuur 20 kan -alanine heel wat reactiewegen doorlopen waardoor er
meerdere metabolieten kunnen gevormd worden. In deze studie worden vier metabolieten en
hun bijhorende reactiewegen bestudeerd. De metabolieten die worden besproken zijn:
Carnosine (dit is het doelmetaboliet van dit onderzoek)
Uracil (mogelijke link naar eiwitsynthese)
Malonaat semialdehyde – acetylCoA (mogelijk link naar energievoorziening)
-20-
Figuur 20: Schema van het β-alaninemetabolisme: Het metaboliet β-alanine (rood) kan in het lichaam
ondermeer worden omgezet naar carnosine, uracil en malonaat semi-aldehyde (groen) (bron:
http://www.genome.jp/kegg/pathway/map/map00410.html); geraadpleegd op 23 april 2012)
-21-
1. -alanine - carnosine reactieweg
1.1 Carnosine synthase
Het onderzoek van Kalyankar & Meister (1959) was één van de eerste onderzoeken
naar de vorming van carnosine uit -alanine. De onderzoekers vonden een enzym in de
borstspier van kippen. Wanneer dit enzym werd ingebed in een systeem dat L-histidine, -
alanine, magnesiumchloride en ATP bevatte, verkreeg men carnosine. Bijgevolg
concludeerde men dat dit enzym de reactie katalyseerde.
In het onderzoek van Stenesh & Winnick (1960) dacht men een reactievergelijking
voor de omzetting van -alanine naar carnosine te hebben gevonden. Zij veronderstelden dat
de reactie in twee stappen verliep:
1e stap:
-alanine + ATP + Enzym Enzym--alanine-AMP + PPi
(Mg2+ is vereist voor deze reactie)
2e stap:
Enzym--alanine-AMP + L-histidine L-carnosine + Enzym + AMP
Een recent onderzoek van Drozak et al. (2010) toonde echter aan dat het
veronderstelde reactiemechanisme niet juist is. In hun onderzoek vonden ze dat er geen AMP
maar ADP wordt gevormd bij de vorming van carnosine uit -alanine en L-histidine.
Drozak et al. (2010) verkregen bijgevolg deze reactie:
Correcte reactie:
-alanine + L-histidine + ATP carnosine + ADP + Pi
Omdat de reactieweg leidt tot ADP-vorming in plaats van AMP, stelde men de hypothese
dat het enzym carnosine synthase behoort tot de ATP-grasp familie. Hierdoor kon men
carnosine synthase moleculair identificeren als ATPGD1. De vorming van ADP in plaats van
AMP is energetisch gunstiger want 2 ADP ATP + AMP, terwijl AMP verder degradeert
naar IMP.
-22-
De reactie van L-histidine met -alanine tot carnosine gebeurt niet in de bloedbaan. Om
de concentratie carnosine in de spier te verhogen moet -alanine getransporteerd worden
vanuit de bloedbaan naar de spier. Dit transport kan gebeuren via verschillende transporters.
1.2 -alaninetransport: van bloed naar spier
Figuur 21: Transport van β-alanine uit de bloedbaan naar de spier via TauT of PEPT2 (Stellingwerff T et al., 2012).
Een studie bij embryonale spiercelculturen van kippen door Bakardjiev and Bauer (1994)
toonde aan dat het transport van -alanine naar de spiercellen verloopt via een β-
aminozuurtransporter die sterk afhankelijk is van Na+ en Cl
-. Deze transporter heeft een Km-
waarde van ~40 µM. Men heeft aangetoond dat zowel peptide transporter 2 (dit is een
transporter van dipeptides waaronder carnosine) (Lu H en Klaassen C, 2006) alsook de
taurine transporter (TauT) (Tomi M et al., 2008) zorgen voor het transport van -alanine in
verschillende celcultuur preparaties. In hun review hebben Stellingwerff et al. (2012) een
duidelijke figuur gemaakt van beide transporters (figuur 21). Harris et al. vonden in hun
onderzoek (Harris RC et al., 2006; Harris RC et al., 2010) dat taurine en -alanine elkaar
inhiberen voor deze gemeenschappelijke transporter. Hun eerste bevindingen (Harris RC et
al., 2006) toonden een stijging van de taurineconcentratie in het plasma na stijgende -
alanineconcentratie in het plasma. In verder onderzoek (Harris RC et al., 2010) vond men dat
de stijging in spiercarnosine als gevolg van -alanine supplementatie leidde tot een
-23-
omgekeerd effect van de taurineconcentratie in de spier. Dit toont aan dat -alanine het
taurinetransport kan inhiberen na supplementatie. Men vermoedt dus dat het transport van -
alanine uit het bloed naar de spier voornamelijk afhankelijk is van TauT.
Harris et al. (2006) toonde aan dat de supplementatie van 10 mg . kg-1
LG -alanine leidde
tot een toename in het bloedplasma van 50 à 100 µM binnen 30 minuten. Een minimum van
40 µM -alanine is nodig om het enzym/transporter-complex te laten werken aan 50% van de
maximale snelheid (Bakardjiev A en Bauer K, 1994).
In de studie van Xiang et al. (2006) bij muizen, heeft men aangetoond dat PEPT2 de
belangrijkste transporter is voor de opname van carnosine in astrocyten. Hierbij gaat het dus
om gebonden -alanine die wordt opgenomen in het centrale zenuwstelsel, vooral in de
hersenen. De onderzoekers stelden dat PEPT2 de dominantste, en misschien wel enige,
transporter is van carnosine in culturen van astrocyten.
Naast PEPT2 en TauT zijn er nog twee -alaninetransporters bekend, namelijk PAT1
dat niet Na+ en Cl
- afhankelijk is maar wel pH-afhankelijk daar het bindt met H
+ en ATB
0,+
dat net zoals TauT Na+ en Cl
- afhankelijk is (Anderson CM et al., 2009).
PAT1 en ATB0,+
bevinden zich in het darmepitheel van de mens. Ze zouden
verantwoordelijk kunnen zijn voor het transport van -alanine vanuit de darmwand naar het
bloed. Omtrent deze transporters is nog maar weinig onderzoek gedaan in de spier.
-24-
2. β-alanine - uracil reactieweg
Zoals eerder al aangehaald wordt β-alanine in het lichaam gevormd als afbraakproduct
van het uracil katabolisme. Uracil is een belangrijk metaboliet in het pyrimidine-metabolisme
en wordt gevormd in de lever (Fink RM et al., 1956; Canellakis ES, 1956; Grisolia S en
Cardoso SS, 1957; Fritzson P en Pihl A, 1957; Matthews MM en Traut TW, 1987). Men heeft
kunnen aantonen dat vegetariërs, die geen β-alanine opnemen uit natuurlijke
voedingsbronnen, toch nog carnosine in de spier aanwezig hebben (20-30%), hoewel dit lager
is in vergelijking met omnivoren (Everaert I et al., 2010). Mogelijks kan dit verklaard worden
door de endogene productie van β-alanine uit het uracil katabolisme. Deze reactieweg is
reversibel en verloopt in 3 stappen. Studies bij ratten hebben aangetoond dat de eerste stap
(Stap 1 op figuur 22) de snelheidsbepalende reactie is (Canellakis ES, 1956; Fritzson P en
Pihl A, 1957). Op het moment dat uracil omgezet is tot 5.6-dihydrouracil gebeurt de vorming
van β-alanine zeer snel (Stap 2 en 3 op figuur 22). Vegetariërs kunnen dus carnosine
aanmaken door β-alanine te halen uit uracilafbraak. Omgekeerd is het ook mogelijk dat
gesupplementeerde β-alanine wordt omgezet naar uracil.
Figuur 22: Reactieweg van uracil naar β-alanine (bron: http://www.genome.jp/kegg/pathway/map/map00410.png;
geraadpleegd op 23 april 2012)
De reactie van uracil tot 5,6-Dihydroxyuracil is dus de belangrijkste reactie wat betreft
de omzettingsratio van uracil tot β-alanine (figuur 23) (Campbell LL, 1957; Canellakis ES,
1956; Fritzson P en Pihl A, 1957). De omzetting van uracil tot 5,6-Dihydroxyuracil gebeurt
door het enzym dihydrouracil dehydrogenase (DHU dehydrogenase). Deze reactie is verder
afhankelijk van de cofactor TPNH (TPNH = Reduced Triphosphopyridine Nucleotide)
(Canellakis ES, 1956).
Figuur 23: Stap 1: omzetting van uracil
naar dihydrouracil (bron: Campbell LL,
1957)
-25-
Canellakis’ onderzoek bij ratten bewees later dat er een link bestond tussen de
aanwezigheid van het enzym DHU dehydrogenase en het gebruik van uracil in de RNA-
synthese. Een blokkering van het enzym zou een verhoogd gebruik van uracil in de RNA-
synthese veroorzaken (Canellakis ES, 1957) en omgekeerd. Ook een beperkte hoeveelheid
TPNH in de lever kan ervoor zorgen dat uracil niet wordt gekataboliseerd.
-26-
3. -alanine - malonaat semialdehyde - acetylCoA reactieweg
3.1 β-alanine katabolisme
Pihl & Fritzson (1955) toonden met hun onderzoek bij ratten aan dat -alanine snel en
uitgebreid wordt geoxideerd. Hierbij wordt de koolstofketen omgezet naar azijnzuur, dat op
zijn beurt nodig is voor de vorming van acetylCoA. De overblijvende koolstofgroep wordt
omgezet naar CO2 dat wordt uitgeademd. De snelle oxidatie van -alanine is mogelijks één
van de redenen waarom er slechts een kleine concentratie -alanine wordt gevonden in urine.
Pihl & Fritzson suggereerden dat het losmaken van een aminogroep de eerste stap in de
oxidatie van -alanine inhield. Men verwees hierbij naar het onderzoek van Roberts &
Bregoff (1953), die aantoonden dat een enzym verantwoordelijk is voor de
transaminasereactie van -alanine met -ketoglutaraat in lever- en hersenweefsel.
3.2 4-aminobutyraat aminotransferase (ABAT) & β-alanine-pyruvaat aminotransferase
Twee enzymen zijn verantwoordelijk voor de omzetting van -alanine naar malonaat
semialdehyde. De eerste enzymatische onderzoeken werden gedaan bij bacteriën van de soort
Pseudomonas Fluorescens. Hierbij vond men het enzym -alanine--alanine transaminase,
beter bekend onder het synoniem -alanine-pyruvaat aminotransferase (Hayaishi O et
al.,1961). Zij vonden dat dit enzyme de reactie van -alanine naar malonaat semialdehyde
katalyseert. Het is een transaminase reactie wat wijst op het overdragen van een aminogroep,
zoals Pihl & Fritzson (1955) al suggereerden. Voor de vorming van malonaat semialdehyde
uit -alanine is pyruvaat vereist.
Hayaishi et al. (1961) vonden deze reactievergelijking:
-alanine + pyruvaat malonaat semialdehyde + L--alanine
Bij de mens zorgt vooral het enzym 4-aminobutyraat aminotransferase (-
alanine/GABA transaminase) voor de omzetting naar malonaat semialdehyde. Dit enzym
katalyseert de afbraak van zowel -alanine als GABA (Schor DS et al., 2001). Bij enkele
patiënten heeft men ontdekt dat een defect van het -alanine/GABA transaminase enzym
mogelijks de oorzaak is van hyper--alaninemia (Scriver CR et al., 1966). Als gevolg van
deze bevinding zou men kunnen proberen de concentratie carnosine in de hersenen te doen
stijgen door het gebruik van inhibitoren. Over inhibitie van het -alanine/GABA transaminase
is nog weinig onderzoek uitgevoerd. Het 4-amino-hex-5-enoic zuur is een anti-epilepticum
-27-
dat het enzym -alanine/GABA transaminase zou inhiberen (Lippert B et al., 1977). Naast
supplementatie van -alanine zou dit misschien een andere manier zijn om de
homocarnosineconcentratie te laten toenemen in de hersenen, maar verder onderzoek is
vereist.
3.3 Metabolisme van malonaat semialdehyde
Volgens Phil & Fritzson (1955) reageert malonaat semialdehyde in weefsels van
zoogdieren tot acetylCoA.
Deze reactieweg werd beschreven door Yamada & Jakoby (1960). Zij bestudeerden de
volgende reactievergelijking:
HOOCCH2CHO + DPN+ + CoASH CH2OSCoA + CO2 + DPNH + H
+
Bij bovenstaande decarboxylasereactie wordt acetylCoA rechtsreeks gevormd uit
malonaat semialdehyde. Yamada & Jakoby (1960) suggereerden dat de omzetting van
malonaatsemialdehyde naar acetylCoA wordt gekatalyseerd door slechts één enzym. Een
gelijktijdig onderzoek van Hayaishi et al. (1961) leverde een resultaat dat overeenstemde met
wat Yamada & Jakoby (1960) dachten. Hayaishi et al. (1961) gaven het verkregen enzym de
naam “malonaat semialdehyde oxidatieve decarboxylase”.
Men vindt dus de volgende reactieweg van -alanine naar acetylCoA:
-alanine malonaat semialdehyde acetylCoA
De vorming van acetylCoA is heel interessant omdat dit co-enzym onontbeerlijk is bij de
omzetting van oxaalacetaat naar citraat in de Krebscyclus. Men zou dus de hypothese kunnen
stellen dat -alanine onrechtstreeks bijdraagt aan energielevering via de Krebscyclus. Daar de
mens geen malonylCoA vormt uit malonaatsemialdehyde is de kans klein dat -alanine
bijdraagt aan de vrije vetzuursynthese, te weten dat malonylCoA nodig is voor de opstart van
deze reactieweg. Het is wel mogelijk dat acetylCoA wordt omgezet naar malonylCoA door
het enzym acetylCoA carboxylase (biotine-afhankelijk), maar dit zal waarschijnlijk enkel
mogelijk zijn wanneer er veel energie voorradig is (Luo DX et al., 2012).
-28-
C) Onderzoeksvraag
De retentie van creatine en carnitine bij acute supplementatie van humane subjecten is
respectievelijk ± 65% en ± 98%. In de literatuur beschreef men voor -alanine
retentiewaarden hoger dan 95% wanneer men acuut supplementeerde. Bij chronische
supplementatie van creatine en carnitine merkt men een significante daling in de retentie van
deze stoffen (van ± 65% naar ± 53% voor creatine en van ± 98% naar 91% voor carnitine).
Daarom kan men de vraag stellen wat het effect is van chronische supplementatie van -
alanine op de retentiewaarden van -alanine. Over een supplementatieperiode van zes weken
verwacht men een significante daling in de -alanineretentie bij humane subjecten, zoals die
ook werd gevonden bij creatine en carnitine.
Een tweede belangrijke bevinding is de invloed van de koolhydraatgerelateerde
insulinerespons in het bloed op de totale retentie van creatine en carnitine. Creatine- en
carnitinetransport zijn Na+/Cl
- afhankelijk, waardoor een verhoogde insulineconcentratie in
het bloed zorgt voor een verhoogde activiteit van deze transportsystemen in het membraan
van de spiercel omdat insuline zorgt voor Na+ vrijzetting door de Na
+/K
+-pomp. In
verschillende studies probeerde men de significante daling van de retentie na chronische
supplementatie, tegen te gaan door koolhydraten (en eiwitten) samen in te nemen met creatine
of carnitine. Men veronderstelde dat de verhoogde insulineconcentratie in het bloed ervoor
zou zorgen dat meer creatine of carnitine in de spier terecht zou komen en aldus de retentie
van deze metabolieten zou verhogen in humane subjecten. Wanneer men dus chronisch -
alanine supplementeert zou men met koolhydraten de retentie kunnen verhogen, indien er
effectief een daling in retentiewaarden van -alanine wordt gevonden.
In dit onderzoek wordt nagegaan of de retentie van -alanine bij humane subjecten daalt
na chronische supplementatie van β-alanine over een periode van zes weken. Indien er een
daling wordt gevonden bij deze humane subjecten wordt er gekeken of koolhydraten en
eiwitten de retentie van -alanine kunnen verhogen.
-29-
METHODE
A) Populatie
1. Rekrutering
De proefpersonen werden gecontacteerd door een bericht ad valvas en via Minerva
(elektronisch leerplatform van de Universiteit van Gent). Er werd gevraagd om vrijwillig
contact op te nemen met het onderzoeksteam. De respons was vrij laag, daarom werden leden
van het onderzoeksteam ingeschakeld om aan voldoende proefpersonen te komen.
Inclusiecriteria waren de volgende:
Mannelijk
Leeftijd tussen 18 en 28 jaar
Nemen geen medicatie in
Gedurende 6 weken beschikbaar op de faculteit
Gezond
2. Aantal proefpersonen
Er namen zeven proefpersonen deel aan het onderzoek. Hun gemiddelde leeftijd bedroeg
22,1 ± 1,3 jaar. De gemiddelde lengte bedroeg 179,9 ± 7,9 cm en het gemiddelde gewicht was
80,7 ± 11,8 kg.
B) Procedure
1. Dataverzameling
Zeven proefpersonen werden onderzocht gedurende zes weken. Tijdens die zes weken
werd er dagelijks 4,8g β-alanine gesupplementeerd aan de hand van zes pillen. Elke pil
bevatte 0,8g β-alanine, men nam er telkens twee op drie verschillende momenten. Er was
minstens een periode van twee uur tussen elk moment van supplementatie.
De eerste twee weken van het onderzoek werd één keer per week een retentietest
afgenomen. Deze proefpersonen dienden nuchter (noch eten noch drinken) te zijn vanaf 12u
-30-
’s nachts. Eerst werd de ochtendurine verzameld, daarna werd op een nuchtere maag 1,6g β-
alanine ingenomen. Gedurende de volgende zes uren mocht men niets innemen (behalve
water) terwijl men de urine collecteerde. Belangrijk om weten is dat de urine in één bidon
werd verzameld.
Na deze zes uren werd een laatste maal de urine verzameld. Vanaf week drie van het
onderzoek werd deze retentietest twee keer per week (opeenvolgende dagen) afgelegd. Hier
werd echter de rol van koolhydraatinname bestudeerd. Op één van de twee testdagen moest de
proefpersoon na de inname van twee pillen β-alanine, koolhydraten en eiwitten innemen
onder de vorm van energierijke snacks, terwijl de andere testdag op dezelfde wijze verliep
zoals de eerste twee weken. Er werden twee energierijke snacks van PowerBar gebruikt in het
onderzoek. De eerste snack, Energize C2 Max (55g), is een koolhydraatrijke snack. De
tweede energiereep, de Protein plus (55g), is vooral een eiwitrijke snack (figuur 24). Om een
constant verhoogde insulinespiegel te bekomen dienden de proefpersonen de eerste reep (C2
max) te eten tussen minuut 10 en minuut 15, na inname van de β-alanine pillen. De tweede
reep (protein plus) diende tussen minuut 55 en 60 gegeten te worden. De energetische
waarden van beide energierepen worden beschreven in tabel 1.
Tabel 1: Energetische waarden van de energierepen die werden gebruikt in het onderzoek (PowerBar Europe
GmbH). Daarnaast werd de som gemaakt voor iedere energiebron, zodat de totale inname bekend is.
Energize C2Max (per
55g) Protein plus (per 55g) Som (110g)
Energie kJ (kcal) 844 (199) 924 (220) 1768 (419)
Eiwitten 5,8g 16,6g 32,4g
Koolhydraten 39,1g 22,2g 61.3g
Waarvan suikers 23,7g 19,5g 43.2g
Vetten 2,0g 6,5g 8.5g
Waarvan verzadigd 0,4g 3,9g 4.3g
Voedingsvezels 0,8g < 1,0g < 1.8g
Natrium 0,19g 0,04g 0.23g
Figuur 24: PowerBar Energize C2 Max (55g) & Protein plus (55g) (PowerBar Europe GmbH).
-31-
2. Meetmomenten
Gedurende zes weken werd er twee maal per week urine gecollecteerd (de eerste twee
weken slechts één maal per week) voor een voorbeeld van een testperiode zie tabel 2.
Tabel 2: Schematische voorstelling van een testperiode.
WEEK 1 WEEK 2 WEEK 3 WEEK 4 WEEK 5 WEEK 6
Testdag 1 PLA PLA PLA CHO PLA CHO
Testdag 2 Geen test Geen test CHO PLA CHO PLA
PLA = urinetesten zonder koolhydraten
CHO = urinetesten met koolhydraten
Ieder testmoment werd volgens hetzelfde protocol afgenomen. Een voorbeeld van een testmoment
wordt weergegeven in tabel 3.
Tabel 3: Schematische voorstelling van een testdag waarbij het individu start om 07u00.
TIJDSTIP Beschrijving PLA Beschrijving CHO
00:00 Nuchter blijven vanaf dit moment Nuchter blijven vanaf dit moment
07:00 Ochtendurine verzamelen + 1,6g β-
alanine innemen
Ochtendurine verzamelen + 1,6g β-
alanine innemen
07:10 – 07:15 Nuchter blijven (enkel water) Inname 1e koolhydraatrijke snack
(C2max Berry Blast)
Enkel water drinken
07:55 – 08:00 Nuchter blijven (enkel water) Inname 2e koolhydraatrijke snack
(Protein Plus)
Enkel water drinken
07:00 – 13:00 Nuchter blijven (enkel water)
Urine verzamelen in bidon
Enkel water drinken
Urine verzamelen in bidon
13:00 Laatste maal urine verzamelen Laatste maal urine verzamelen
13:00 – 20:00 Nog twee maal 1,6g β-alanine innemen Nog twee maal 1,6g β-alanine innemen
-32-
C) Meetinstrumenten
1. Meting met de HPLC-methode
In dit onderzoek werden de urinestalen gemeten met de HPLC-methode. HPLC staat voor
High-Performance Liquid Chromatography en is in staat de deeltjes die aanwezig zijn in een
vloeibare oplossing te scheiden, te identificeren en te kwantificeren. Een pomp stuwt een
vloeistof vanuit het reservoir naar de kolom. Deze fase wordt de mobiele fase genoemd en is
gekenmerkt door hoofdzakelijk een polaire buffer. De verschillende deeltjes bewegen met
verschillende snelheden door de kolom. Afhankelijk van de polariteit van de opgeloste
deeltjes zullen ze sneller (meer polaire deeltjes) of trager (meer apolaire deeltjes) door de
kolom bewegen. Bijgevolg verlaten de deeltjes de kolom op een verschillend tijdstip.
Een UV-detector vertaalt deze intervallen naar een chromatogram op de computer. Het
chromatogram toont een tijd-as waarop verschillende pieken te zien zijn die overeenkomen
met een respons van de UV-detector. Iedere piek kan gelinkt worden aan een specifieke
metaboliet. De opstelling van alle apparatuur wordt weergegeven in figuur 25.
Figuur 25: Voorstelling van de HPLC-methode zoals deze werd toegepast in het onderzoek: Hoge druk gradiënt
systeem (bron: http://www.waters.com/waters/nav.htm?cid=10048919 geraadpleegd op 30 april 2012).
Om te weten welke piek moet gelinkt worden met β-alanine heeft men de resultaten
gespiked. Hierbij worden twee urinestalen door de HPLC gestuwd. De ene urinestaal heeft
normale concentraties van alle metabolieten en aan de andere urinestaal werd een hoeveelheid
β-alanine toegevoegd. Op het chromatogram worden beide grafieken op elkaar gelegd en
-33-
merkt men één moment waarop de pieken duidelijk verschillen. Deze piek komt dan overeen
met β-alanine. De resultaten van deze methode tonen ons dat deze piek steeds rond minuut
11,3 valt (bron: http://www.waters.com/waters/nav.htm?cid=10048919 geraadpleegd op 30
april 2012)
2. Voorbereiding van de meting
Vooraf werd 11.1 µL SSA toegevoegd aan 100 µL urine. Na centrifugatie (5 min) werd
100 µL vacuüm gedroogd gedurende 45 min bij een temperatuur van 40°C. Na het drogen
werd het residu opgelost in 40 µL van een gekoppelde reagens nl.
methanol/triethylamine/H2O/phenylisothiocyanate (verhouding 7/1/1/1). Deze reagens (PITC)
fungeert als een vlag die wordt aangebracht op de deeltjes en is een herkenningspunt in een
later stadium. De totale reactietijd van de deeltjes en het reagens bedroeg 20 minuten op
kamertemperatuur. Hierna werd het sample opnieuw gedroogd en opgelost in een buffer van
100 µL natrium acetaat (10mM, pH 6.4). Als laatste stap werd het gederivatiseerde sample
(20 µL) geïnjecteerd in een Waters HPLC systeem met volgende parameters:
Spherisorb kolom ODS-2 5 µM (4.6 mm x 150 mm, 5 µm), UV detector (golflengte 254
nm), 3 buffers (A = [10 mM natrium acetaat aangepast aan pH 6.4 met 6% azijnzuur], B =
[60% acetonitrile – 40% buffer A], C = [100% acetonitrile]), debiet = 0.8 mL/min, 25°C. Het
tijdsinterval van de buffers wordt weergegeven in tabel 4.
De limiet voor detectie en kwantificatie waren respectievelijk 3 µM en 10 µM.
Tabel 4: Toevoeging van de buffers in functie van de tijd. Bij de start wordt enkel buffer A (polair) toegevoegd. Na 10
minuten wordt buffer B (apolair) geleidelijk aan toegevoegd tot 100% op minuut 34. Vanaf minuut 35 wordt buffer C
(ACN) toegevoegd om de kolom te spoelen en klaar te maken voor een volgende meting.
Tijd (min) % buffer A
(H2O acet)
% buffer B
(40% buffer A – 60% ACN)
% buffer C
(100% ACN)
0 100 0 0
10 87 13 0
30 72 28 0
34 0 100 0
35 0 0 100
50 100 0 0
70 100 0 0
-34-
D) Data-analyse
1. Berekenen van de β-alanineretentie
Bij iedere meting kan men de β-alaninepiek vinden rond minuut 11,3. Hierdoor kan
worden afgeleid hoeveel deeltjes er aanwezig zijn in het sample door middel van de
oppervlakte onder de curve. Eens de oppervlakte onder de curve gekend is, kan er berekend
worden hoeveel milligram β-alanine er terechtkomt in de urine. De concentratie β-alanine (x)
kan berekend worden aan de hand van volgende formule: y = ax+b (= standaardcurve met y =
oppervlakte onder de curve, a = richtingscoëfficiënt, b = intercept). Door deze waarde
percentueel te vergelijken met de hoeveelheid β-alanine die gesupplementeerd werd bekomt
men de β-alanineretentie.
Zo verkrijgt men voor elke proefpersoon 20 retentiewaarden (10 testafnames: pre en post).
In dit onderzoek zijn vooral de postwaarden van belang. Er wordt gezocht naar een significant
tijdsverschil binnen de placeboconditie, maar ook tussen placebo en koolhydraten. Hiervoor
worden de berekende retentiewaarden ingegeven in het statistisch programma SPSS.
2. Analyse van de β-alanineretentie
Om de eerste stelling te toetsen werd er gebruik gemaakt van de repeated measures test.
Hierbij werden alle post-waarden van de placebogroep gecontroleerd op een significant
verschil. Zo kon er eventueel een daling in de retentie worden waargenomen na chronische
supplementatie van β-alanine. Er wordt pas een significant verschil aangenomen wanneer het
hoofdeffect van het meetmoment een p-waarde oplevert die kleiner is of gelijk aan 0,05 (p ≤
0.05).
De tweede stelling werd getoetst door middel van vier paired sample T-testen. Iedere
week werd de placebotest vergeleken met de koolhydraattest. Indien er een significant
resultaat (p ≤ 0.05) werd gevonden zou dit betekenen dat de retentiewaarde op de
koolhydraattest significant verschilt van de retentiewaarde op de placebotest. Door de
gemiddelden te vergelijken kan er besloten worden welke conditie de hoogste retentiewaarde
oplevert.
-35-
RESULTATEN
1. Retentie van β-alanine na chronische supplementatie van β-alanine
De gemiddelde retentiewaarden van ieder meetmoment (placebo) zijn weergegeven in
tabel 5. De repeated measures test leverde geen significant resultaat voor het hoofdeffect van
het meetmoment: F = 1,148 ; p = 0,379. Hieruit kan er besloten worden dat de
retentiewaarden van β-alanine noch stijgen, noch dalen na chronische supplementatie van β-
alanine.
Figuur 26 is een staafdiagram van alle uitgevoerde meetmomenten voor de
placeboconditie. De staven tonen aan dat de retentiewaarden van ieder meetmoment
nauwelijks verschillen van alle andere meetmomenten. Er wordt geen daling in de retentie van
β-alanine waargenomen na chronische supplementatie.
Tabel 5: Gemiddelde retentiewaarden van de placebotesten (week 0 t.e.m. 5)
Gemiddelde retentiewaarde (%) Standaard afwijking (%)
Week 0 98,40 ± 1,41
Week 1 97,98 ± 1,45
Week 2 98,45 ± 1,20
Week 3 98,05 ± 0,85
Week 4 98,40 ± 0,47
Week 5 98,71 ± 0,50
Figuur 26: Staafdiagram van de β-
alanineretentie overheen de weken 0
tot 5 van de
placeboconditie (= zonder
koolhydraten) toont aan dat de
retentie niet daalt na een
supplementatieperiode van 6 weken.
-36-
2. Optimaliseren van β-alanineretentie door toevoeging van koolhydraten en
eiwitten
Er werd geen daling in β-alanineretentie gevonden waardoor de retentiewaarde na zes
weken supplementeren nog steeds zeer hoog is. Toch werd er gekeken of de invloed van
koolhydraten de retentie alsnog deed stijgen. In tabel 6 worden de gemiddelde
retentiewaarden weergegeven voor ieder meetmoment met koolhydraten.
Tabel 6: Gemiddelde retentiewaarden voor de koolhydraatconditie overheen de 4 weken waarin koolhydraten werden
gebruikt.
Gemiddelde retentiewaarde (%) Standaard afwijking (%)
Week 2 98,37 ± 0,92
Week 3 98,71 ± 0,83
Week 4 98,54 ± 0,98
Week 5 97,81 ± 1,76
Bij ieder meetmoment worden beide condities met elkaar vergeleken door middel van de
paired sample T-test. De resultaten van deze vergelijkingen worden weergegeven in tabel 7.
Op geen enkel meetmoment werd er een significant verschil gevonden tussen de
placeboconditie en de koolhydraatconditie.
Tabel 7: Resultaten van de paired sample T-test: placeboconditie vergeleken met koolhydraatconditie. Een significant
verschil word aangenomen bij p ≤ 0.05.
T-waarde p-waarde
Week 2 (PLA - CHO) 0.656 0.541 (n.s.)
Week 3 (PLA - CHO) -1.741 0.142 (n.s.)
Week 4 (PLA - CHO) 0.096 0.928 (n.s.)
Week 5 (PLA - CHO) 1.320 0.244 (n.s.)
-37-
In onderstaande grafiek (figuur 27) worden de resultaten grafisch weergegeven. Er is
duidelijk geen zichtbaar verschil tussen beide condities waar te nemen. Hierdoor kan besloten
worden dat koolhydraten geen effect uitoefenen op de retentie van β-alanine na chronische
supplementatie waardoor ook de tweede hypothese verworpen kan worden.
3. Analyse van individuele waarden
Wanneer men figuur 28 bekijkt merkt men dat er geen merkbare tendensen zijn. Alle
waarden lopen door elkaar zonder enig verband aan te tonen. Dit wijst er op dat de personen
Figuur 27: De retentiewaarden van β-alanine voor beide condities (wit = koolhydraatconditie;
zwart is placeboconditie) tonen aan dat er geen significant verschil te vinden was tussen de
twee condities.
Figuur 28: Retentiewaarden voor elke proefpersoon afzonderlijk. Alle proefpersonen toonden na week 5 een even
hoge retentie.
-38-
onderling niet verschillen in de placeboconditie. Men kan ook niet spreken van high- en low-
responders, aangezien de ene proefpersoon initieel en na vijf weken hoog scoort maar
daartussen laag (proefpersoon 1) en de andere proefpersoon juist laag scoort initieel en na vijf
weken maar daartussen hoog (proefpersoon 4).
In figuur 29 zijn de individuele testscores tussen placebo en koolhydraatgroep
tegenover elkaar uitgezet. Opnieuw zien we zeven verschillende grafieken zonder enige
significantie. Alle waarden variëren immers tussen 95% en 99.5%.
Uit deze grafieken is dus duidelijk te concluderen dat de retentiewaarden voor zowel
de placebogroep als voor de koolhydraatgroep zeer hoog zijn en blijven gedurende zes weken
van supplementatie.
Figuur 29: Individuele testscores
tussen placebo (blauw) en
koolhydraten (rood). Bij geen
enkele proefpersoon werd een
significant verschil gevonden.
-39-
DISCUSSIE
1. Analyse van de resultaten
1.1 Retentie van β-alanine daalt niet na chronische supplementatie
De eerste hypothese die stelde dat de retentie van β-alanine na chronische
supplementatie zou dalen, kan op basis van de resultaten van dit onderzoek verworpen
worden. Wanneer de gemiddelde retentiewaarde van week 0 (98.4 ± 1.41 %) vergeleken
wordt met die van week 5 (98.71 ± 0.50 %), merkt men duidelijk geen daling. Optimaliseren
van de retentie van β-alanine is bijgevolg niet nuttig, aangezien na zes weken nog steeds hoge
concentraties β-alanine door het lichaam worden opgenomen. Mogelijke redenen voor de
hoge retentie van β-alanine en mogelijke verschillen tussen enerzijds β-alanine en anderzijds
creatine en carnitine, worden besproken in volgende hoofdstukken.
1.2 Koolhydraten tonen geen effect op β-alanineretentie na chronische supplementatie
Daarnaast werd er in de literatuur beschreven dat de retentie van creatine en carnitine
kan stijgen door inname van koolhydraten en eiwitten (Steenge GR et al. 2000; Greenwood M
et al., 2003; Stephens FB et al., 2007), maar in deze studie blijkt dat dit niet het geval is voor
β-alanine. Wel dient te worden vermeld dat de retentie van β-alanine reeds zeer hoog is
(gemiddelde van alle metingen samen: 98.40 ± 0.79 %). Op basis van deze resultaten blijkt
dus dat koolhydraten (en eiwitten) geen effect hebben op de retentie van β-alanine na een
supplementatieperiode van zes weken. Hierdoor kan men stellen dat ook de tweede hypothese
dient verworpen te worden.
2. Mogelijke verklaringen voor de hoge retentie van β-alanine
2.1 Reabsorptie van β-alanine in de nieren
Wanneer β-alanine wordt gesupplementeerd wordt het via de brush border in de
dunne darm opgenomen in het bloed. De transporters hiervoor verantwoordelijk zijn PAT1 en
TauT (Anderson CM et al., 2009). ATB0,+
werd in dit onderzoek ook onderzocht, maar men
vond dat deze transporter niet deelnam aan het transport van β-alanine vanuit de dunne darmn
naar het bloed. Vanuit het bloed kan β-alanine worden getransporteerd naar de skeletspieren
en naar het centrale zenuwstelsel. Indien β-alanine nergens in het lichaam wordt opgenomen,
zal het uiteindelijk naar de nieren worden gebracht. De nieren filteren het bloed en
reabsorberen bruikbare stoffen, waaronder β-alanine, uit de urine. De gereabsorbeerde stoffen
komen zo terug in de bloedcirculatie terecht. De transporters zouden volgens Jessen H (1994)
-40-
Na+
en Cl- afhankelijk zijn, waardoor de kans groot is dat de hiervoor vernoemde transporters
ook in de nieren actief zijn. Wanneer men β-alanine supplementeert stijgt de concentratie β-
alanine in het bloed waardoor de transporters in de nieren wellicht overladen worden. Dit zou
verklaren waarom er toch een klein deel van de gesupplementeerde β-alanine in de urine
terechtkomt. Niettegenstaande is het aminozuur β-alanine een aantrekkelijk metaboliet voor
het lichaam, waardoor het zo lang en zo veel mogelijk wordt opgehouden. De verschillende
mogelijke bestemmingen voor β-alanine worden hieronder opgesomd.
2.2 Reactieweg naar energielevering
Een mogelijke verklaring voor de hoge retentie van β-alanine is
misschien te vinden in de reactiewegen die β-alanine kan doorlopen.
Rekening houdend met het feit dat de proefpersonen op het moment
van de testen normaal functioneerden en dus een bepaalde behoefte
aan energie nodig hadden, kan het misschien zijn dat in het geval van
de placebotesten, waarbij men nuchter moest blijven, de ingenomen
β-alanine onmiddellijk werd ingeschakeld in de energielevering.
Wanneer de energievoorraad laag is, zal het lichaam onder andere
energie halen uit een aantal aminozuren. Zoals aangetoond kan β-
alanine worden omgezet naar acetylCoA, dat een intermediair is van
de Krebscyclus (Yamada & Jakoby, 1960; Hayaishi O et al., 1961).
In het onderzoek van Van Waarde et al. (1987) werd een
duidelijke link gevonden tussen uracil en acetyl Coenzyme A
waarbij β-alanine als intermediair fungeert (figuur 30) (Van Waarde
et al., 1987). Uit de literatuur blijkt dat β-alanine zowel in uracil als
in malonaat-semialdehyde kan worden omgezet (Canellakis ES,
1956; Hayaishi O et al., 1961)). Hierdoor kan men veronderstellen
dat het lichaam, afhankelijk van de behoeften van de cellen, één van de twee reactiewegen
doorloopt. Indien het lichaam energie nodig heeft, wordt β-alanine omgezet tot malonaat-
semialdehyde dat verder wordt omgezet naar acetyl coenzyme A. In een staat waarbij de
cellen meer eiwitten moeten aanmaken, zal β-alanine worden omgezet naar uracil dat
noodzakelijk is bij RNA-synthese.
Figuur 30: Reactieweg van
uracil tot acetyl coenzyme A
met β-alanine als
intermediair (Van Waarde,
1987).
-41-
2.3 Opname van β-alanine in de spier ter vorming van carnosine
In de literatuur werd aangetoond dat een deel van de gesupplementeerde β-alanine wordt
opgenomen in de skeletspieren, waar het kan worden gesynthetiseerd tot carnosine (Harris et
al., 2006) Stellingwerff et al. (2011) toonden aan dat ± 5% van de gesupplementeerde β-
alanine wordt omgezet naar spiercarnosine, wat niet wil zeggen dat er slechts 5% wordt
opgenomen in de spieren. Verder onderzoek hierover zal meer duidelijkheid moeten brengen.
Het is wel duidelijk dat de omzetting naar spiercarnosine een deel van de β-alanineretentie
kan verklaren.
2.4 Supplementatie van β-alanine kan concentratie carnosine in de hersenen doen stijgen
Het onderzoek van Murakami et al. (2010) toonde aan dat de concentratie van carnosine in
zowel de cerebrale cortex (stijging van 33%: 16.5 µmol/kg ± 0.8 naar 22.0 µmol/kg ± 1.2 (P <
0.05)) als in de hypothalamus (stijging van 49%: 45.3 µmol/kg ± 0.9 naar 67.6 µmol/kg ± 4.6
(P < 0.05)) steeg na supplementatie van -alanine (Murakami T, 2010). Een korte berekening
toont aan dat slechts 0.025% van de gesupplementeerde -alanine wordt opgenomen in de
cerebrale cortex en 0.1% wordt opgenomen in de hypothalamus. Deze waarden zijn heel laag
maar mogelijks wordt -alanine ook op andere manieren opgenomen in de hersenen. Zo zag
men in dit onderzoek ook een stijging van BDNF (brain-derived neurotrophic factor) na
supplementatie van -alanine. Tiedje et al. (2010) schreven een review over de verschillende
functies en werkingen van β-alanine. Hierin beschreef men dat β-alanine wordt opgenomen in
de hersenen via de blood-hersenbarrière, waarbij een transportsysteem met hoge affiniteit
voor β-alanine aanwezig is. In de hersenen zou β-alanine diverse functies uitoefenen (vb.:
neurotransmitter) (Tiedje KE, 2010). Deze bevindingen zijn belangrijk voor dit onderzoek
daar er de mogelijkheid bestaat dat een kleine hoeveelheid van de gesupplementeerde -
alanine wordt opgenomen in de hersenen.
2.5 Opname van β-alanine in organen
Men heeft sterke vermoedens dat β-alanine in de skeletspieren kan opgenomen worden via
specifieke transporters (TauT, Pept2). Daarnaast vermoedt men ook dat β-alanine kan worden
opgenomen in de nieren en de lever. Shuttleworth et al. (1984) vonden dat β-alanine in de
levercellen kan getransporteerd worden. Dit transport wordt volgens Shuttleworth gezien als
de snelheidsbepalende stap voor de oxidatie van aminozuren. Liu et al. (1999) vonden bij
ratten dat dit transport gemedieerd werd via een GABA-transporter GAT-2. Deze transporter
is net als TauT Na+/Cl
--afhankelijk. GAT-2 is volgens Liu et al. (1999) ook aanwezig in het
-42-
centraal zenuwstelsel, nieren en retina. Mogelijks fungeert deze transporter dan ook in andere
organen om β-alanine op te nemen.
2.6 Conclusie
Deze theorieën zouden verklaren waarom de retentie van β-alanine zo hoog is.
Waarschijnlijk zijn de vele metabole reactiewegen die β-alanine kan doorlopen
verantwoordelijk voor de hoge retentie van β-alanine na chronische supplementatie. Daarom
zorgt het lichaam ervoor dat de nieren β-alanine zeer sterk zullen reabsorberen. De meest
interessante metabole reactieweg voor deze studie is de omzetting van β-alanine naar
spiercarnosine, daarnaast kan β-alanine ook worden opgenomen in het centrale zenuwstelsel
of kan β-alanine worden omgezet naar andere metabolieten via verscheidene reactiewegen.
De opname van β-alanine ter omzetting naar spiercarnosine kan vergeleken worden met de
opname van creatine en carnitine in de skeletspieren.
3. Vergelijking van de β-alanineretentie met de carnitine- en creatineretentie
3.1 Een plafondeffect treedt op na supplementatie van creatine en carnitine
De gesupplementeerde creatine en carnitine hebben slechts één bestemming, namelijk de
skeletspieren. Bij chronische supplementatie merkt men een down-regulatie van de
creatinetransporter (Guerrero-Ontiveros and Wallimann, 1998). Deze down-regulatie is te
wijten aan het plafondeffect dat optreedt wanneer de concentraties in de spieren te hoog
worden. In het onderzoek van Greenhaff et al. (1995) spreekt men over een bovengrens van
de creatineconcentratie in de spier (150-160 mmol/kg droge spier). Hierdoor daalt de opname
van beide metabolieten bij chronische supplementatie. Omdat ook de retentie van carnitine
daalt, kan men vermoeden dat de skeletspieren ook een maximale capaciteit hebben voor
carnitine. Als gevolg van de daling in opname komt er meer creatine of carnitine in de urine
terecht, waardoor de retentie daalt.
3.2 Er treedt geen plafondeffect op na chronische supplementatie van β-alanine
De studie van Stellingwerff et al. (2011) toonde aan dat slechts ± 5% van de
gesupplementeerde β-alanine wordt gesynthetiseerd tot carnosine in de skeletspieren. Dit is
veel lager in vergelijking met creatine en carnitine. Hierdoor kan verondersteld worden dat
een plafondeffect pas veel later (mogelijks zelfs niet) optreedt omwille van het feit dat β-
alanine misschien eerder wordt geoxideerd ter vorming van azijnzuur in plaats van
uitgescheiden in de urine (Pihl A en Fritzson P, 1955). Het zou ook kunnen dat de periode van
supplementatie (in deze studie = 6 weken) te kort is. De studie van Baguet et al. (2009)
-43-
vergeleek de supplementatie van creatine met die van β-alanine en toonde aan dat
spiercarnosine veel meer kan toenemen door supplementatie van β-alanine dan dat
spiercreatine toeneemt na supplementatie van creatine, maar omdat de stijging van de
spiercarnosine veel trager gebeurt is de supplementatieperiode veel langer. Bij creatine zou na
enkele dagen het plafondeffect al worden bereikt, waardoor de retentie al na enkele dagen
begint te dalen (Steenge et al., 2000; Preen et al, 2001).
3.3 Vergelijking tussen de retentie van creatine, carnitine en β-alanine
Wanneer men alle retentiewaarden van verschillende studies uitzet in een grafiek (zie
figuur 31) dan merkt men zowel voor creatine als voor carnitine een dalend patroon.
Daarentegen blijft β-alanine gedurende een supplementatieperiode van zes weken (36 dagen)
op retentiewaarden hoger dan 95%. Hierdoor kan men duidelijk stellen dat β-alanine een
metaboliet is dat door het lichaam meer gebruikt kan worden dan creatine of carnitine.
Gemiddeld daalde de retentie van creatine van 65% naar 53% en van carnitine van 98 % naar
91%. De retentiewaarde voor creatine (placebo) verschillen bij de studie van Harris et al.
(1992) in vergelijking met de studies van Preen et al. (2001) en Greenwood et al. (2003)
omdat in de eerstgenoemde studie 30g creatine per dag werd gesupplementeerd, terwijl de
andere twee studies telkens 20g creatine supplementeerden. Hierdoor is de retentiewaarde in
de studie van Harris et al. (1992) lager in vergelijking met de twee andere studies.
Figuur 31: Vergelijking van de retentie tussen chronische supplementatie van β-alanine (donkerblauw (PLA) en
lichtblauw (CHO)) van het huidig onderzoek met carnitine (roze (CHO) en rood (PLA) volgens Stephens FB et al.
2007) en creatine (lichtgroen (CHO) en donkergroen (PLA) volgens Greenwood M et al. 2003; Preen D et al. 2001 en
Harris RC et al. 1992). De waarden van creatineretentie verschillen omdat in de studie van Harris et al. (1992)
dagelijks 30g creatine werd gesupplementeerd terwijl bij Preen et al. (2001) en Greenwood et al. (2003) 20g creatine
per dag werd gesupplementeerd. Hoe meer er werd gesupplementeerd, hoe lager de retentie.
-44-
4. Invloed van koolhydraten op de opname van β-alanine
In dit onderzoek werd onder meer onderzocht of koolhydraten en eiwitten de retentie van
β-alanine kunnen verhogen. Ondertussen is aangetoond dat dit niet het geval is. Toch kan het
zijn dat koolhydraten een belangrijke rol spelen in het optimaliseren van de
carnosineconcentratie in de skeletspieren.
4.1 Activatie van β-alaninetransporter (TauT) door koolhydraatinname
In de studie van Stellingwerff et al. (2012) bespreekt men de gekende β-
alaninetransporters. Hieruit bleek dat TauT waarschijnlijk de belangrijkste transporter is van
β-alanine voor de opname in de skeletspieren. Het is mogelijk dat, net zoals bij carnitine en
creatine, de transporter sterker geactiveerd wordt na inname van koolhydraten. De
koolhydraten worden in het spijsverteringsstelsel afgebroken en komen in het bloed terecht
onder de vorm van glucose. Wanneer de glucoseconcentratie stijgt tot boven het normale
homeostatische niveau, geven de bèta-cellen in de eilandjes van Langerhans (alvleesklier)
insuline af. Bijgevolg stijgt de insulineconcentratie in het bloed waardoor de Na+/K
+-pomp
actiever wordt en meer Na+ in het plasma wordt gepompt. De β-alaninetransporter (TauT) is
gevoelig voor Na+, waardoor de transporter actiever wordt. Door deze activatie zou het
mogelijk zijn dat er meer β-alanine worden opgenomen in de skeletspieren waar het wordt
omgezet naar carnosine. Als vervolg op de experimenten beschreven in deze masterproef, is
het onderzoeksteam onder leiding van prof. Derave gestart met het toetsen van deze stelling.
Op het moment dat deze masterproef wordt ingediend zullen de resultaten van dit onderzoek
bekend zijn.
4.2 Invloed van lage energievoorraad op de concentratie van aminozuren
In het beschreven onderzoek werden de proefpersonen gevraagd om gedurende zes uur na
inname van de pillen nuchter te blijven (enkel water mocht genuttigd worden). Dit kan men
zien als een vorm van vasten. De lage energievoorraad heeft zijn invloed op de concentratie
aminozuren in het lichaam. Wood et al. (2010) vonden in hun onderzoek bij haaien iets
merkwaardigs over de invloed van vasten op de concentratie aminozuren, meer bepaald over
β-alanine. In het plasma daalden de concentraties aminozuren bijna allemaal significant
naarmate langer een toestand van vasten werd voorzien. Enkel drie aminozuren, waaronder β-
alanine, bleven stabiel (Wood CM, 2010). Hieruit zou men kunnen besluiten dat β-alanine in
het lichaam aanwezig blijft om als energiereserve te kunnen dienen mocht dit nodig zijn, maar
het zou evengoed kunnen betekenen dat β-alanine niet wordt ingeschakeld in de
energielevering tijdens vasten. Interpretatie van deze studie is moeilijk omdat het onderzoek
-45-
werd uitgevoerd bij haaien. Tevens werd de β-alanineconcentratie in het plasma gemeten,
terwijl in dit onderzoek vooral de β-alanineconcentratie in de urine van belang is. Verder
onderzoek naar de functie van β-alanine in de energielevering is vereist.
4.3 Link met de resultaten van het onderzoek
Indien β-alanine in geval van vasten zou worden ingeschakeld in de energielevering, kan
men veronderstellen dat er in dat geval meer β-alanine wordt opgenomen in het lichaam dan
wanneer er minder nood is aan energie. Indien deze stelling correct zou zijn, dan zou er bij het
innemen van koolhydraten (een sterke energiebron) minder β-alanine worden opgenomen.
Tenzij de theorie omtrent de activatie van de β-alaninetransporter (TauT) correct zou zijn.
Wanneer de β-alaninetransporter (TauT) sterker geactiveerd wordt door de hoge
insulineconcentratie die de koolhydraten veroorzaken, zou men kunnen veronderstellen dat de
transporter ervoor zorgt dat er meer β-alanine wordt opgenomen in de spieren en eventueel in
andere weefsels, waar het kan worden omgezet naar carnosine. Men kan dus vermoeden dat
koolhydraten weinig tot geen effect hebben op de retentie van β-alanine, maar wel op de
totale opname van β-alanine in de spieren. In beide gevallen wordt β-alanine meer opgenomen
door het lichaam, waardoor men kan vermoeden dat er weinig verschil is in de opname van β-
alanine tussen beide condities.
5. Verhogen van de (homo)carnosineconcentratie in het lichaam
5.1 Blokkeren van 4-aminobuyraat aminotransferase (ABAT)
Het zou mogelijk kunnen zijn dat koolhydraten zorgen voor een hogere
carnosineconcentratie in de skeletspieren, wat een heel belangrijke bevinding zou zijn naar
supplementatiestrategie. Daarnaast heeft de studie van Petroff (1998) aangetoond dat de
homocarnosineconcentratie in de hersenen verdubbeld kan worden door het inhiberen van het
enzym 4-aminobutyraat aminotransferase (ABAT) dat verantwoordelijk is voor de omzetting
van GABA naar succinaat semi-aldehyde. Wellicht kan dit ook leiden tot een verhoging van
carnosine in de spieren. Indien koolhydraten de opname van β-alanine in de skeletspieren
verhogen kan een combinatie van beide methoden leiden tot een grotere stijging van de
spiercarnosineconcentratie.
6. Toekomstig onderzoek
Uit deze discussie kan men een aantal interessante hypotheses stellen voor volgende
onderzoeken.
-46-
6.1 Langer supplementeren
Men zou kunnen vermoeden dat een supplementatieperiode van zes weken te kort is.
Zoals hierboven werd beschreven is het plafondeffect bij β-alanine zeer moeilijk te bereiken.
Men zou dus kunnen onderzoeken welke effecten chronische supplementatie heeft op de β-
alanineretentie over een supplementatieperiode van 12 of zelfs 18 weken.
6.2 Voedingstoestand vergelijken
Verder zou men kunnen onderzoeken in welke mate de voedingstoestand van de
proefpersonen effect heeft op de -alanine-opname in de spier. Zoals reeds gezegd, bestaat de
kans dat de -alanine-opname in skeletspieren stijgt wanneer voldoende energie
(koolhydraten, eiwitten en vetten) voorradig is in het lichaam. Omgekeerd kan men stellen dat
wanneer men nuchter is, het tekort aan energie wordt vermeden door verbranding van
aminozuren (β-alanine). Bij elke voedingstoestand kan men nogmaals de retentie gaan
analyseren. Een daling van de retentie bij een voldoende voorraad aan energie lijkt een voor
de hand liggende hypothese, maar de kans dat dit een positief resultaat oplevert is heel klein.
Ook in dit onderzoek werd aangetoond dat koolhydraten de retentie niet veranderden. Er zijn
nog heel wat andere reactiewegen die β-alanine kan doorlopen die voor een even hoge retentie
zouden kunnen zorgen. Toch zouden eventuele verschillen in β-alanine-opname in de spier
een belangrijke aanzet kunnen zijn om verdere voedingspatronen te vergelijken (nuchter,
koolhydraatrijk, eiwitrijk, vetrijk).
6.3 Opname van β-alanine in de spieren
Men weet nu dat chronische supplementatie van -alanine een zeer hoge retentie teweeg
brengt. Wat men niet weet uit dit onderzoek is de hoeveelheid β-alanine dat in de spier wordt
opgenomen. Wel kan men berekenen hoeveel carnosine wordt gesynthetiseerd in de spieren
(Stellingwerff et al., 2011). Het zou heel interessant zijn om te weten hoeveel procent van de
gesupplementeerde β-alanine effectief in de skeletspieren terechtkomt en hoeveel daarvan
wordt omgezet naar spiercarnosine. Op basis van deze resultaten zou men dus een goede
uitspraak kunnen doen over het effect van koolhydraten op de β-alanine-opname in de
skeletspieren.
6.4 Inhibitoren
Zoals reeds in de literatuur werd beschreven zou het interessant zijn mochten
enzymatische werkingen kunnen geblokkeerd worden om zo de omzetting van β-alanine naar
andere metabolieten dan carnosine te verlagen. Wanneer deze inhibitoren de pathways
-47-
blokkeren, kan men dus vermoeden dat de carnosineconcentratie in de skeletspieren zal
stijgen. Onderzoek naar het effect van deze inhibitoren zou interessante informatie kunnen
geven over de β-alanineretentie en β-alanine-opname in de spieren. Een daling in β-
alanineretentie zou het logische gevolg zijn van inhibitie van andere pathways, aangezien β-
alanine minder mogelijkheden heeft om in het lichaam te blijven. In die zin kan men ook
veronderstellen dat de opname van β-alanine in de spieren verhoogt, waardoor meer carnosine
in de spieren kan worden gevormd.
6.5 Invloed van fysieke activiteit op de opname van β-alanine in de spieren
In de literatuur werden twee manieren besproken om creatine op te nemen in de spieren.
Harris RC et al. (1992) vonden dat zowel spiercontracties als insuline zorgden dat creatine
meer werd opgenomen in de spieren. Men kan aldus veronderstellen dat ook β-alanine meer
zal worden opgenomen in de spieren, hoewel dit in tegenstelling is met de veronderstelling
over energie en acetyl coenzyme A. Het is dus geen zekerheid dat spiercontracties dezelfde
invloed uitoefenen op β-alanine zoals op creatine. Verder onderzoek is dus vereist om
hierover uitsluitsel te geven.
7. Eindconclusie
Als algemene conclusie kan men stellen dat de supplementatie van creatine en carnitine
enerzijds en β-alanine anderzijds zeer sterk verschilt. Uit dit onderzoek werd duidelijk dat de
retentiewaarden van β-alanine ten opzichte van de andere metabolieten hoger liggen. Het
lichaam hecht dus veel belang aan β-alanine en wil het niet zomaar uitscheiden via de urine,
ook niet na een chronische supplementatie van zes weken. De nieren zorgen dan ook voor een
quasi perfecte reabsorptie. Om β-alanine in de spier te gaan verhogen is het dus niet zozeer
belangrijk om te kijken naar de urinaire retentie. Onderzoek over de transporters van β-
alanine van de bloedbaan naar de spier kan nuttigere informatie opleveren. Hierbij is het van
belang om de optimalisering van deze opname te bestuderen, waarbij men vermoedt dat de
insuline in het bloed een rol zou kunnen spelen. Het grote aanbod aan metabole pathways
zorgt ervoor dat β-alanine op zeer veel manieren kan gekataboliseerd worden. Afgaande op de
literatuur is dit wellicht de belangrijkste reden waarom de retentie van β-alanine zo hoog is.
-48-
REFERENTIES
1. Abe H (2000). Role of histidine-related compounds as intracellular proton buffering
constituents in vertebrate muscle. Biochemistry (Mosc), 65:757-765.
2. Alkonyi I, Kerner J, Sandor A (1975). Possible role of carnitine and carnitine acetyl-
transferase in contracting skeletal-musle. FEBS Lett, 52: 265-268.
3. Anderson CM, Howard A, Walters JR et al (2009). Taurine uptake across the human
intestinal brush-border membrane is via two transporters: H+-coupled PAT1 (SLC36A1)
and Na+- and Cl
—dependent TauT (SLC6A6). J Physiol, 587: 731-744.
4. Asatoor AM, Bandoh JK, Lant AF, Milne MD, Navab F (1970). Intestinal absorption of
carnosine and its constituent amino acids in man. Gut, 11: 250-254.
5. Awad R, Muhammad A, Durst T (2009). Bioassay-guided fractionation of lemon balm
(Melissa officinalis L.) using an in vitro measure of GABA transaminase activity.
Phytother Res, 23: 1075-1081.
6. Baguet A, Bourgois J, Vanhee L et al (2010). Important role of muscle carnosine in
rowing performance. J Appl Physiol,109: 1096–1101.
7. Baguet A, Reyngoudt H, Pottier A et al (2009). Carnosine loading and washout in human
skeletal muscles. J Appl Physiol, 106: 837–842.
8. Bakardjiev A, Bauer K (1994). Transport of β-alanine and biosynthesis of carnosine by
skeletal muscle cells in primary culture. Eur J Biochem, 225: 617-623.
9. Barnett C, Kostill DL, Vukuvich MD et al (1994). Effect of L-carnitine supplementation
on muscle and blood carnitine content and lactate accumulation during high-intensity
sprint cycling. Int J Sport Nutr, 4: 280-288.
10. Bate-Smith EC (1938). The buffering of muscle in rigor: protein, phosphate and
carnosine. J Physiol, 92: 336-343.
11. Batrukova MA, Rubtsov AM (1997). Histidine-containing dipeptides as endogenous
regulators of the activity of sarcoplasmic reticulum Ca-release channels. Biochim
Biophys Acta, 1324: 142-150.
12. Birch R, Noble D, Greenhaff PL (1994). The influence of dietary creatine
supplementation on performance during repeated bouts of maximal isokinetic cycling in
man. Eur J Appl Physiol, 69: 268-270.
13. Bloch K, Schoenheimer R, Rittenberg D (1941). Rate of formation and disappearance of
body creatine in normal animals. J Biol Chem, 138: 155-166.
-49-
14. Boldyrev AA (1993). Does carnosine possess direct antioxidant activity? Int J Biochem,
25: 1101-1107.
15. Brooks DE, McIntosh JE (1975). Turnover of carnitine by rat tissues. Biochem J, 148:
439-445.
16. Campbell LL (1957). Reductive degradation of pyrimidines. II. Mechanism of uracil
degradation by Clostridium uracilicum. J Bacteriol, 73: 225-229.
17. Canellakis ES (1956). Pyrimidine metabolism. I. Enzymatic pathways of uracil and
thymine degradation. J Biol Chem, 221:315-322.
18. Canellakis ES (1957). Pyrimidine metabolism. III. The interaction of the catabolic and
anabolic pathways of uracil metabolism. J Biol Chem, 227: 701-709.
19. Casey A, Constantin-Teodosiu D, Howell S et al (1996). Metabolic response of type I
and II muscle fibers during repeated bouts of maximal exercise in humans. Am J Physiol,
271: E38-E42.
20. Casey A, Greenhaff PL (2000). Does dietary creatine supplementation play a role in
skeletal muscle metabolism and performance? Am J Clin Nutr, 72: 607S-617S.
21. Cederblad G, Lindstedt S, Lundholm K (1974). Concentration of carnitine in human
muscle tissue. Clin Chim Acta, 53: 311-321.
22. Childress CC, Sacktor B, Traynor DR (1966). Function of carnitine in fatty acid oxidase-
deficient insect flight muscle. J Biol Chem, 242: 754-760.
23. Daly MM, Seifter F (1980). Uptake of creatine by cultured-cells. Arch Biochem Biophys,
203: 317-324.
24. Decombaz J, Beaumont B, Vuichoud J et al (2011). Effect of slow-release β-alanine
tablets on absorption kinetics and paresthesia. Amino Acids, doi:10.1007/s00726-011-
1169-7.
25. Drozak J, Veiga-da-Cunha M, Vertommen D et al (2010). Molecular identification of
carnosine synthase as ATP-grasp domain-containing protein 1 (ATPGD1). J Biol Chem,
285: 9346–9356.
26. Dunnett M, Harris RC (1995). Carnosine and taurine contents of type I, IIA and IIB
fibres in the middle gluteal muscle. Equine Vet J, 18: 214-217.
27. Dunnett M, Harris RC (1999). Influence of oral beta-alanine and L-histidine
supplementation on the carnosine content of the gluteus medius. Equine Vet J Suppl, 30:
499–504.
28. Everaert I, Mooyaart A, Baguet A et al (2010). Vegetarianism, female gender and
-50-
increasing age, but not CNDP1 genotype, are associated with reduced carnosine levels in
humans. Amino Acids, 40: 1221-1229.
29. Fink RM, McGaughey C, Cline RE et al (1956). Metabolism of intermediated
pyrimidine reduction products in vitro. J Biol Chem, 218: 1-7.
30. Fitch CD, Shields RP (1966). Creatine metabolism in skeletal muscle. I. Creatine
movement across muscle membranes. J Biol Chem, 241: 3611-3614.
31. Fitch CD, Shields RP, Payne WF, et al (1968). Creatine metabolism in skeletal muscle.
III. Specificity of the creatine entry process. J Biol Chem, 243: 2024-2027.
32. Flancbaum L, Fitzpatrick JC, Brotman DN et al (1990). The presence and significance of
carnosine in histamine-containing tissues of several mammalian species. Agents Actions,
31: 190–196.
33. Friedman S, Fraenkel G (1955). Reversible enzymatic acetylation of carnitine. Arch
Biochem Biophys, 59: 491-501.
34. Fritz IB (1955). The effect of muscle extracts on the oxidation of palmitic acid by liver
slices and homogenates. Acta Physiol Scand, 34: 367-385.
35. Fritz IB, McEwen B (1959). Effects of carnitine on fatty-acid oxidation by muscle.
Science, 129: 334-335.
36. Fritz IB, Yue KTN (1963). Long-chain carnitine acyltransferase and the rol of
acylcarnitine derivatives in the catalytic increase of fatty acid oxidation induced by
carnitine. J Lipid Res, 4: 279-288.
37. Fritzson P, Pihl A (1957). The catabolisme of C14-labeled uracil, dihydrouracil, and
beta-ureidopropionic acid in the intact rat. J Biol Chem, 226: 229-235.
38. Green AL, Hultman E, MacDonald IA (1996). Carbohydrate ingestion augments skeletal
muscle creatine accumulation during creatine supplementation in humans. Am J Physiol,
271: E821-E826.
39. Green AL, Simpson EJ, Littlewood JJ et al (1996). Carbohydrate ingestion augments
creatine retention during creatine feeding in man. Acta Physiol Scand, 158: 195-202.
40. Greenhaff PL (1995). Kreatin: Seine Rolle im Bezug auf die körperliche
Leistungsfähigkeit sowie Ermüdung; seine Anwendung als ein Sporternäahrungs-
Supplement. Insider, News Sport Nutr, Isostar Sport Nutr Found, 3: 1-4.
41. Greenhaff PL, Bodin K, Soderlund K et al (1994). Effect of oral creatine
supplementation on skeletal muscle phosphocreatine resynthesis. Am J Physiol, 266:
E725-E730.
-51-
42. Greenwood M, Kreider R, Earnest C et al (2003). Differences in creatine retention
among three nutritional formulations of oral creatine supplements. J Am Soc Exerc
Fysiol, 6: 37-43.
43. Grisolia S, Cardoso SS (1957). Purification and properties of hydropyrimidine
dehydrogenase. Biochim Biophys Acta, 25: 430-431.
44. Guerrero-Ontiveros ML, Walliman T (1998). Creatine supplementation in health and
disease. Effects of chronic creatine ingestion in vivo: down-regulation of the expression
of creatine transporter isoforms in skeletal muscle. Mol Cell Biochem, 184: 427-437.
45. Harris RC (2010). Simultaneous changes in muscle carnosine and taurine during and
following supplementation with β-alanine. Am Coll Sports Med, 5:107.
46. Harris RC, Foster CVL, Hultman E (1987). Acetylcarnitine formation during intense
muscular-contraction in humans. J Appl Physiol, 63: 440-442.
47. Harris RC, Hultman E, Nordesjo LO (1974). Glycogen, glycolytis intermediates and
high-energy phosphates determined in biopsy samples of musculus quadriceps femoris
of man at rest. Methods and variance of values. Scand J Clin Lab Invest, 33: 109-120.
48. Harris RC, Jones G, Wise JA (2008). The plasma concentration-time profile of β-alanine
using a controlled-release formulation (Carnosyn TM). FASEB J, 22:701.9.
49. Harris RC, Soderlund K, Hultman E (1992). Elevation of creatine in resting and
exercised muscle of normal subjects by creatine supplementation. Clin Science, 83: 367-
374.
50. Harris RC, Tallon MJ, Dunnett M et al (2006). The absorption of orally supplied beta-
alanine and its effect on muscle carnosine synthesis in human vastus lateralis. Amino
Acids, 30: 279-289.
51. Haugland RB, Chang DT (1975). Insulin effect on creatine transport in skeletal-muscle.
Proc Soc exp Biol Med, 148: 1-4.
52. Hayaishi O, Nishizuka Y, Tatibana M et al (1961). Enzymatic studies on the metabolism
of beta-alanine. J Biol Chem, 236: 781-790.
53. Hill CA, Harris RC, Kim HJ et al (2007). Influence of beta-alanine supplementation on
skeletal muscle carnosine concentrations and high intensity cycling capacity. Amino
Acids, 32: 225–233.
54. Horinishi H, Grillo M, Margolis FL (1978). Purification and characterization of
carnosine synthetase from mouse olfactory bulbs. J Neurochem, 31: 909-919.
55. Hultman E, Soderlund K, Timmons JA et al (1996). Muscle creatine loading in men. J
-52-
Appl Physiol, 81: 232-237.
56. Hunter A (1922). The physiology of creatine and creatinine. Physiol Rev, 2: 586-626.
57. Jessen H, Jorgensen KE, Roigaard-Petersen H, et al. (1989). Demonstration of H+- and
Na+-coupled co-transport of beta-alanine by luminal membrane vesicles of rabbit
proximal tubule. J Physiol, 411: 517-528
58. Kalyankar GD, Meister A (1959). Enzymatic synthesis of carnosine and related beta-
alanyl and gamma-aminobutyryl peptides. J Biol Chem, 234: 3210-3218.
59. Kendrick IP, Harris RC, Kim HJ et al (2008). The effects of 10 weeks of resistance
training combined with beta-alanine supplementation on whole body strength, force
production, muscular endurance and body composition. Amino Acids, 34: 547–554.
60. Lippert B, Metcalf BW, Jung MJ et al (1977). 4-amino-hex-5-enoic acid, a selective
catalytic inhibitor of 4-aminobutyric-acid aminotransferase in mammalian brain. Eur J
Biochem, 74: 441-445.
61. Liu M, Russell RL, Beigelman L (1999). Β-alanine and α-fluoro-β-alanine concentrative
transport in rat hepatocytes is mediated by GABA transporter GAT-2. Am J Physiol
Gastrointest Liver Physiol, 276: 206-210.
62. Lu H, Klaassen C (2006). Tissue distribution and thyroid hormone regulation of Pept1
and Pept2 mRNA in rodents. Peptides, 27: 850–857.
63. Luo DX, Tong DJ, Rajput S, et al. 2012. Targeting Acetyl-CoA Carboxylases: Small
Molecular Inhibitors and their Therapautic Potential. Recent Pat Anticancer Drug
Discov, 7: 168-184.
64. Matthews MM, Traut TW (1987). Regulation of N-carbamoyl-beta-alanine
amidohydrolase, the terminal enzyme in pyrimidine catabolism, by ligand-induced
change in polymerization. J Biol Chem, 262: 7232-7237.
65. Murakami T, Furuse M (2010). The impact of taurine- and beta-alanine-supplemented
diets on behavioral and neurochemical parameters in mice: antidepressant versus
anxiolytic-like effects. Amino Acids, 39: 427-434.
66. Ng RH, Marshall FD (1978). Regional and subcellular distribution of homocarnosine-
carnosine synthetase in the central nervous system of rats. J Neurochem, 30: 187-190.
67. Odoom JE, Kemp GJ, Radda GK (1996). The regulation of total creatine content in a
myoblast cell line. Mol Cell Biochem, 158: 179-188.
68. Petroff OA, Mattson RH, Behar KL et al (1998). Vigabatrin increases human brain
homocarnosine and improves seizure control. Ann Neurol, 44: 948-952.
-53-
69. Pihl A, Fritzson P (1955). The catabolism of C14-labeled beta-alanine in the intact rat. J
Biol Chem, 215: 345-351.
70. Pittas G, Hazell MD, Simpson EJ et al (2010). Optimization of insulin-mediated creatine
retention during creatine feeding in humans. J Sports Sci, 27: 67-74.
71. Rebouche CJ (1977). Carnitine movement across muscle cell membranes. Studies in
isolated rat muscle. Biochim Biophys Acta, 471: 145-155.
72. Roberts E, Bregoff HM (1953). Transamination of gamma-aminobutyric acid and beta-
alanine in brain and liver. J Biol Chem, 201: 393-398.
73. Preen D, Dawson B, Goodman C et al (2001). Effect of creatine loading on long-term
sprint exercise performance and metabolism. Med Sci Sports Exerc, 33: 814-821.
74. Sadikali F, Darwish R, Watson WC (1975). Carnosinase activity of human
gastrointestinal mucosa. Gut, 16: 585-589.
75. Schor DS, Struys EA, Hogema BM et al (2001). Development of a stable-isotope
dilution assay for gamma-aminobutyric acid (GABA) transaminase in isolated
leukocytes and evidence that GABA and beta-alanine transaminases are identical. Cil
Chem, 47: 525-531.
76. Scriver SR, Pueschel S, Davies E (1966). Hyper-beta-alaninemia associated with beta-
aminoaciduria and gamma-aminobutyric aciduaia, somnolence and seizures. N Engl J
Med, 274: 635-643.
77. Shuttleworth TJ, Goldstein L (2005). Beta-alanine transport in the isolated hepatocytes
of the elasmobranch Raja erinacea. J Exp Zool, 231: 39-44.
78. Steenge GR, Simpson EJ, Greenhaff PL (2000). Protein- and carbohydrate-induced
augmentation of whole body creatine retention in humans. J Appl Physiol, 89: 1165-
1171.
79. Stellingwerff T, Anwander H, Egger A et al (2011). Effect of two β-alanine dosing
protocols on muscle carnosine synthesis and washout. Amino Acids, doi:10.1007/s00726-
011-1054-4.
80. Stellingwerff T, Décombaz J, Harris RC et al (2012). Optimizing human in vivo dosing
and delivery of β-alanine supplements for muscle carnosine synthesis. Amino Acids, DOI
10.1007/s00726-012-1245-7.
81. Stenesh JJ, Winnick T (1960). Carnosine-anserine synthetase of muscle. IV. Partial
purification of the enzyme and further studies of beta-alanyl peptide synthesis. Biochem
J, 77: 575-581.
-54-
82. Stephens FB, Constantin-Teodosiu D, Greenhaff PL (2007). New insights concerning the
role of carnitine in the regulation of fuel metabolism in skeletal muscle. J Physiol, 581:
431-444.
83. Stephens FB, Constantin-Teodosiu D, Laithwaite D et al (2007). A threshold exists for
the stimulatory effect of insulin on plasma L-carnitine clearance in humans. Am J
Physiol Endocrinol Metab, 292: 637-641.
84. Stephens FB, Evans CE, Constantin-Teodosiu D et al (2007). Carbohydrate ingestion
augments L-carnitine retention in humans. J Appl Physiol, 102: 1065-1070.
85. Tamai I, Ohashi R, Nezu J et al (1998). Molecular and functional identification of
sodium ion-dependent, high affinity human carnitine transporter OCTN2. J Biol Chem,
273: 20378-20382.
86. Teufel M, Saudek V, Ledig JP et al (2003). Sequence identification and characterization
of human carnosinase and a closely related non-specific dipeptidase. J Biol Chem, 278:
6521-6531.
87. Tiedje KE, Stevens K, Barnes S et al (2010). β-alanine as a small molecule
neurotransmitter. Neurochem Int, 57: 177-188.
88. Tomi M, Tajima A, Tachikawa M, Hosoya K (2008). Function of taurine transporter
(Slc6a6/TauT) as a GABA transporting protein and its relevance to GABA transport in
rat retinal capillary endothelial cells. Biochim Biophys Acta, 1778: 2138–2142.
89. Van Loon LJC, Saris WHM, Verhagen H et al (2000). Plasma insulin responses after
ingestion or different amino acids or protein mixtures with carbohydrate. Am J Clin Nutr,
72: 96-105.
90. Van Waarde A (1987). Biochemistry of non-protein nitrogenous compounds in fish
including the use of amino acids for anaerobic energy production. Comp Biochem
Physiol, 91: 207-228.
91. Vukuvich MD, Kostill DL, Fink WJ (1994). Carnitine supplementation: effect on muscle
carnitine and glycogen-content during exercise. Med Sci Sports Exerc, 26: 1022-1029.
92. Wächter S, Vogt M, Kreis R et al (2002). Long-term administration of L-carnitine to
humans: effect on skeletal muscle carnitine content and physical performance. Clin Chim
Acta, 318: 51-61.
93. Walker JB (1979). Creatine: biosynthesis, regulation and function. Adv Enzymol, 50:
177-242.
94. Wall BT, Stephens FB, Constantin-Teodosiu et al (2011). Chronic oral ingestion of L-
-55-
carnitine and carbohydrate increases muscle carnitine content and alters muscle fuel
metabolism during exercise in humans. J Physiol, 589: 963-973.
95. Walliman T, Wyss M, Brdiczka D et al (1992). Significanceof intracellular
compartmentation, structure and function of creatine kinase isoenzymes for cellular
energy homeostasis: ‘the phospho-creatine circuit’. Biochem J, 281: 21-40.
96. Williams MH, Kreider RB, Branch JD (1999). Creatine: the power supplement, Human
Kinetics, Champaign, Illinois.
97. Winnick RE, Winnick T (1959). Carnosine-anserine synthetase of muscle. Biochim
biophys Acta, 31: 47-55.
98. Wood CM, Walsh PJ, Kajimura M et al (2010). The influence of feeding and fasting on
plasma metabolites in the dogfish shark (Squalus acanthias). Comp Biochem Physiol,
155: 435-444.
99. Wyss M, Kaddurah-Daouk R (2000). Creatine and creatinine metabolism. Physiol Rev,
80: 1107-1213.
100. Xiang J, Hu Y, Smith DE et al (2006). Pept2-mediated transport of 5-aminolevulinic
acid and carnosine in astrocytes. Brain Res, 1122: 18-23.
101. Yamada EW, Jakoby WB (1960). Aldehyde oxidation. V. Direct conversion of malonic
semialdehyde to acetyl-coenzyme A. J Biol Chem, 235: 589-594.
102. Yue KTN, Fritz IB (1962). Fate of tritium-labeled carnitine administered to dogs and
rats. Am J Physiol, 202: 122-128.