REPUBLIQUE DU BENIN DEPARTEMENT DE GENIE DE BIOLOGIE ...

REPUBLIQUE DU BENIN ------------

MINISTERE DE L’ENSEIG EMENT SUPERIEUR ET DE LA RECHERCHE

SCIENTIFIQUE --------- ECOLE SUPERIEURE LE ‘‘FAUCON’’ ---------

DEPARTEMENT DE GENIE DE BIOLOGIE HUMAINE ---------

OPTION : ANALYSE BIOLOGIQUE ET BIOCHIMIQUE -------

RAPPORT DE STAGE DE FIN DE FORMATION Pour l’obtention du

DIPLOME DE LICENCE PROFESSIONNELLE

THEME :

PRESENTE ET SOUTENU PAR :

OGODO D. Augustin SOUS LA DIRECTIONB DE :

TUTEUR : SUPERVISEUR : Mr DEGBELO Jean-Eude Dr DEGBEY C. Cyriaque Chef service du laboratoire Maitre-assistant, Microbiologie et Hygiène Ingénieur biomédical IRSP-UAC

ANNEE ACADEMIQUE : 2019-2020

9ème promotion

CORRELATION ENTRE LA VITESSE DE SEDIMENTATION ET LA PROTEINE C REACTIVE CHEZ LES PATIENTS DU SERVICE DE

LA PEDIATRIE AU CHUZ ABOMEY-CALAVI/Sô-AVA

Corrélation entre la protéine c reactive et la vitesse de sédimentation chez les patients du service de la pédiatrie au chuz Abomey-calavi/Sô-ava

Réaliser par : OGODO D. Augustin sur 52

LES DIRIGEANTS DE L’ECOLE SUPERIEURE LE FAUCON

DIRECTEUR GENERAL : Mr Jean Michel SOARES

DIRECTEUR ACADEMIQUE : Prof. Hyacinthe AHISSOU AAAAHISSOU

CHEF DEPARTEMENT : Dr. Paulin K. YOVO

MINISTERE DE L’ENSEIGNEMENT SUPERIEUR ET DE LA RECHERCHE SCIENTIFIQUE

**********

ECOLE SUPERIEURE LE FAUCON

**********

SPECIALITE : ANALYSES BIOLOGIQUES ET BIOCHIMIQUES



Nom et Prénoms Matières Enseignées

ADJISSE Simplice Mathématiques

AHISSI Vahid Biochimie Structurale

AHISSOU Hyacinthe Biochimie Métabolique

AHOUIGNAN Gilbert Hématologie générale/Hématologie pathologie

/Hémostase

AKPOVI Casimir Biochimie Clinique

ANAGO Eugénie Enzymologie

ATCHADE Pascal Parasitologie générale/Mycologie/Parasitologie

Médicale

ATREVI Nicolas Anatomie générale

BANKOLE S. Honoré Bactériologie appliquée, Virologie

DEGBEY Cyriaque Microbiologie Médicale /Hygiène Hospitalière /Santé

Publique

DESSOUASSI Noel Biophysique

DJEDATIN Gustave Génétique Moléculaire

DOUGNON Victorien Microbiologie générale/Méthodologie de Recherche

GLELE Moise Transfusion sanguine

KANFON Aurélien Immunohématologie/Sérologie/Contrôle Qualité

KLOTOE Jean-Robert Technique instrumentale/Equipements biomédicaux et

Maintenance

LAFIA Edgard Immunologie generale /Management des services de santé

MASLOKONON Vincent Histologie générale/Histologie Pathologie

NONVIGNON Gisèle Technique d’expression écrite et orale

LISTE DES ENSEIGNANTS DE GBH



QUENUM Chantal Education physique et sportive

QUIRINO Clet Informatique

SEGBO Julien Biologie moléculaire

SOARES R. Armel Gestion des ressources humaines

TCHOBO P. Fidel Chimie organique

TOBOSSI Boniface Statistique et Probabilité

TOKPANOU Nikita Chimie générale

YADOULETON Anges Entomologie médicale

YOKOSSI Daniel Anglais générale/Anglais Scientifique

YOVO K. Paulin Pharmacologie/Toxicologie

YOVOGAN Julien Sciences-Physiques

PAZOU Elisabeth Biologie cellulaire



DEDICACES JE DÉDIE CE TRAVAIL

À mes parents en particulier ma très chère mère : RAMANOU Philomène, le

plus beau cadeau de ma vie, aucune dédicace ne saurait être assez éloquente

pour exprimer ce que tu mérites pour tous les sacrifices consentis depuis ma

naissance.



HOMMAGES • A son Excellence Monsieur le Président du jury, pour ce grand honneur

que vous nous faites en présidant ce jury de soutenance de Licence. Nous

vous en sommes gré et vous prions de recevoir l’expression de notre profond

respect.

• Aux Honorables membres du jury, pour avoir accepté juger ce travail qui,

nous le savons, reste à parfaire ; nous vous disons merci. Vos critiques et

suggestions contribueront à l’amélioration de la qualité scientifique de ce

travail.



REMERCIEMENTS L’accomplissement de ce travail est le fruit d’importants concours. Nous nous emparons de

cette utile et inestimable occasion pour témoigner nos sincères remerciements à tous ceux qui

de près ou de loin ont contribué de manière avérée à la réalisation de ce travail.

• A notre superviseur Dr DEGBEY Cyriaque ; vous nous avez dirigé pour la

réalisation de ce travail malgré vos multiples occupations. Recevez l’expression de

nos sentiments les plus respectueux et le témoignage de notre reconnaissance.

SINCERES REMERCIEMENTS !

• A mon tuteur Mr ASSANI Mohamed et son épouse pour leur esprit social, leur comp

assion et leur humble volonté de m’accompagner très loin dans mes études.

QUE DIEU VOUS BENISSE !

• A mes sœurs et frères Kalif, Hubert, Marcelin, Barthelemy, Ornella ; Sylvestre merci

pour vos conseils et votre soutien. Puisse l’affection, la confiance et la solidarité qui n

ous animent rester inébranlables.

FRATERNELLEMENT !

• Aux autorit és et enseignants de l’Ecole Supérieure le Faucon. En particulier ceux d

u département d’Analyses Biomédicales. Chers professeurs, vous avez contribué très e

fficacement à notre formation universitaire. Recevez ici le témoignage de notre profon

de gratitude.

• A monsieur Jean-Eude DEGBELO ; notre tuteur pour avoir été toujours disponible

à répondre à nos préoccupations. Que Dieu vous comble de ses grâces.

• A tous mes camarades de la 9ème promotion ; tous ces moments passés ensemble s

ont inoubliables. Que Dieu vous donne la force d’aller loin dans vos études.

• A tous ceux qui de près ou de loin ont contribué à la réalisation de ce travail ; nos sinc

ères remerciements



LISTE DES ABREVIATIONS - ABB : analyse biologique et biochimique

- ALAT : alanine amino-transferase

- ASAT : aspartatet amino-transferase

- CHUZ : centre hospitalier universitaire de zone

- CRP : protéine c réactive

- ECBU : examen cytobactériologique des urines

- EDTA : ethylène diamine tetra acetique

- ESF : école supérieure le faucon

- GBH : génie de biologie humaine

- GE-DP : goutte epaisse densité parasitaire

- IgG : immunoglouline de type G

- LCR : liquide cephalo rachidien

- TPHA : treponema pallidum hemagglutination essay

- VS : vitesse de sedimentation

- VS1 : vitesse de sédimentation à la prémière heure

- VS2 : viesse de sédimentation à la deuxième heure



LISTE DES TABLEAUX

Tableau I : procédure du dosage de la CRP latex semi-quantitatif. .................. 26

Tableau II : répartition de la population d’étude par sexe et tranche d’âge

.................................................................................... Erreur ! Signet non défini.

Tableau III : répartition de la population d’étude par CRP et VS .................... 43

Tableau IV : coefficient de corrélation .............................................................. 44



LISTE DES FIGURES

Figure 1 : matériels nécessaire pour le dosage de la CRP ................................. 36

Figure 2 : Test CRP au latex .............................................................................. 38

Figure 3 : Tube de westergren…………………………..……………………..39

Figure 4 : Répartition des résultats de la CRP ................................................... 42

Figure 5 : répartition des résultats du VS ........................................................... 42

Figure 6 : courbes de corrélation entre CRP et VS1 .......................................... 43

Figure 7 : courbe de corrélation entre VS1 etVS2 ............................................. 44



Résumé Introduction : La réaction inflammatoire constitue une ligne de défense de l’organisme, non

spécifique, dirigée contre les agressions des agents infectieux. La CRP est donc un paramètre

diagnostic de l’inflammation tout comme la VS

Objectif : Cette étude avait pour objectif d’étudier la corrélation entre la Protéine C Réactive

et la vitesse de sédimentation des hématies chez les patients du service de la pédiatrie au

Centre Hospitalier Universitaire Abomey-calavi/Sô-ava

Méthodes : Nous avons mené une étude transversale descriptive sur une population de 62

patients de la pédiatrie du CHUZ Abomey-calavi / Sô-Ava. Chaque patient a bénéficié de

deux types de prélèvements : un sur tube à anticoagulant et le second sur tube sec. Nous avons

fait le dosage de la CRP par la méthode d'agglutination (CRP-Latex) et la vitesse de

sédimentation par la méthode de Westergren chez le même patient.

. Résultats : 19,35% des patients affichent une vitesse VS normale/CRP négative, 38,71%

présentent une VS accélérée/CRP positive, 25,81% présentent une VS normale/CRP positive

et enfin 16,13% présentent une vitesse de sédimentation accélérée/CRP négative dont 8

anémiés. Les valeurs du coefficient de corrélation entre CRP/VS1, CRP/VS2 et VS1/VS2 sont

respectivement de 0,297 ; 0,260 et 0,990. La concordance et la discordance obtenue entres les

deux paramètres CRP et la vitesse de sédimentation montrent l’existence d’une faible

corrélation dont l'importance varie selon l’âge entre la vitesse de sédimentation et la CRP

dans la recherche d'un syndrome inflammatoire.

Conclusion : il est donc utile de revoir l’intérêt des deux prescriptions pour déterminer quel

paramètre est plus utile selon l’âge et le sexe pour le diagnostic de syndrome inflammatoire.

Mots clés : Corrélation, Protéine C réactive, vitesse de sédimentation, pédiatrie, centre

hospitalier universitaire Abomey-calavi/So-ava



Abstract Introduction: The inflammatory reaction is a body’s non-specific line of defence against

attack by infectious agents. The C-reactive protein is therefore a diagnostic parameter of

inflammation, as is the sedimentation rate.

bjective: The objective of this study was to evaluate the correlation between c-reactive

protein and the sedimentation rate of red blood cells in patients in the pediatric department of

the Abomey-calavi/Sô-ava University hospital centre

Methods: We conducted a descriptive cross-sectional study on a population of 62 patients

from the pediatrics department of the Abomey-calavi/Sô-ava University hospital centre. Each

patient received two types of samples: one on anticoagulant tube and the second on dry tube.

We measured the CRP by the agglutination method (CRP-Latex) and the sedimentation rate

by the Westergren method in the same patients.

Result: 19,35% of the patients showed a negative CRP/sedimentation rate normal; 38,71%

showed a positive CRP/accelerated sedimentation rate; 25,81% showed a positive CRP/

normal sedimentation rate and finally 16,13% showed a negative CRP/accelerated

sedimentation rate, 8 of which were anemic. The values of the correlation coefficient between

CRP/VS1; CRP/VS2 and VS1/VS2 were 0,297, 0,260 and 0,990 respectively. The

concordance and discrepancy obtained between the two parameters CRP and the

sedimentation rate show the existence of a weak age-dependent correlation between the

sedimentation rate and CRP in the search for an inflammatory syndrome.

Conclusion: It is useful to review the value of the two prescriptions to determine which

parameter is more useful for the diagnosis of inflammatory syndrome.

Key words: correlation, C-reactive protein, sedimentation rate, pediatrics, Abomey-

calavi/Sô-Ava University Hospital Center



SOMMAIRE

INTRODUCTION ............................................................................................. 14

Présentation du cadre de stage ................................... 15

Déroulement du stage ................................................ 17

: Etude du thème ......................................................... 30

RESULTATS ............................................................ Erreur ! Signet non défini.

COMMENTAIRES ........................................................................................... 44

CONCLUSION ......................................................... Erreur ! Signet non défini.

SUGGESTIONS ................................................................................................ 47

REFERENCE .................................................................................................... 48



INTRODUCTION

La réaction inflammatoire constitue une ligne de défense de l’organisme, non spécifique,

dirigée contre les agressions des agents infectieux (bactéries, virus, parasites et champignons)

le plus souvent, mais aussi traumatiques, tumorales et auto-immunes [1]. L’inflammation est

aussi l’ensemble des mécanismes réactionnels de défense par lesquels l’organisme reconnaît,

détruit et élimine toutes les substances qui lui sont étrangères [2]. En effet, elle est la

conséquence d’une réaction immunologique dont les agents responsables sont les antigènes

qui sont les non soi et les anticorps dirigés contre ces derniers. L’un des principaux

mécanismes visant à limiter ces processus pathologiques passe par la production (par le foie)

de façon précoce des protéines dites « inflammatoires » dont les principales sont : la protéine

C réactive, la fibrinogène et l’haptoglobine qui peuvent être facilement dosées à partir d’une

prise de sang. La protéine C réactive(CRP) est donc un paramètre diagnostic de

l’inflammation tout comme la vitesse de sédimentation.

Par ailleurs, un taux de sédimentation érythrocytaire est un test sanguin non spécifique

commun, qui est utilisé pour détecter et surveiller l’inflammation dans le corps. Elle occupe

encore une place importante dans les bilans sanguins à la recherche du syndrome

inflammatoire [3].

Ce travail avait pour objectif d’étudier la nécessité de l’association de la prescription dans le

cadre de la recherche d’un syndrome inflammatoire, par l’étude de corrélation entre la vitesse

de sédimentation (VS) et la protéine C réactive chez les patients du service de la pédiatrie

dans le diagnostic du syndrome inflammatoire.

Ce travail a été réalisé après avoir remarqué que les demandes reçues au niveau du laboratoire

pour l’investigation d’un syndrome inflammatoire comportent le plus souvent une association

de deux paramètres dont la VS et la CRP en même temps.

Ce travail effectué au laboratoire du Centre Hospitalier Universitaire de Zone Abomey-calavi

/ So-Ava est subdivisé en trois (03) parties.

La première partie va s’occuper de la présentation du cadre de stage, ensuite la deuxième

partie du déroulement du stage et enfin la troisième partie du traitement du sujet choisi.



Présentation du cadre de stage



1. PRESENTATION DU CADRE DE STAGE

1.1. Cadre institutionnel

Le déroulement de notre formation s’est effectué au département du Génie de la Biologie

Humaine (GBH), spécialité Analyse Biologique et Biochimique (ABB) à l’Ecole Supérieure

le Faucon (ESF). Le parcours a duré trois années comme prévu pour la licence

professionnelle.

1.2. Cadre technique

L’étude s’est déroulée au CHUZ Abomey-Calavi/Sô-Ava. Ce centre de santé comprend les

services suivants : le service administratif et financier, la médecine, le laboratoire polyvalent

de biologie, le service de radiologie, le service de la pédiatrie, le service des urgences, le

service de néonatologie, un bloc opératoire et la maternité. Notre étude a été faite au

laboratoire polyvalent de biologie clinique.

1.2.1. Historique de l’Hôpital de Zone d’Abomey-Calavi / Sô-Ava

Selon la pyramide sanitaire du Benin, chaque zone sanitaire doit être dotée d’un centre de

référence. C’est dans ce cadre qu’il a été démarré dans la zone sanitaire d’Abomey-Calavi, au

cours de l’année 2000, la construction d’un Hôpital de zone. Les communes d’Abomey-

Calavi et de Sô-Ava dépendent de ce centre. Cet hôpital de zone a été inauguré le 12 mai 2003

par le Ministre de la santé d’alors. Il n’a été mis en service que le 18 aout 2003. Il convient de

noter que le Centre Hospitalier Universitaire de zone d’Abomey-Calavi / Sô-Ava est une

structure périphérique de la pyramide sanitaire et est placé sous la tutelle technique et

administrative du Ministère de la Santé et dépend directement de la Direction Départementale

de la sante de l’Atlantique et du Littoral.

1.2.2. Situation géographique

Implanté dans le département de l’Atlantique a environ trente (30) kilomètres de Cotonou et

plus précisément dans la commune d’Abomey-Calavi au quartier ZOPAH, le Centre

Hospitalier Universitaire de zone d’Abomey-Calavi / Sô-Ava est situé à moins d’un (1)

kilomètre du carrefour Arconville sur la voie de ZOPAH en face de la station terrienne de

BENIN TELECOM SA.



Déroulement du stage



2. DEROULEMENT DU STAGE

2.1. Objectif du stage

2.1.1. Objectif général

Apprendre à faire usage de tous les appareils de diagnostic en biologie et en biochimie.

2.1.2. Objectifs spécifiques

- Participer aux différentes étapes de réalisation des examens de biologie médicale en v

ue de diagnostic courant

- Identifier les difficultés liées au processus du diagnostic et à l’environnement du travai

l

- Analyser les difficultés identifiées

- Proposer des solutions techniques, administratives et ou de gestion appropriées

2.2. Travaux effectués par section de laboratoire

2.2.1. Hématologie

Dans cette section, différents examens sont réalisés. On a entre autres :

Vitesse de sédimentation

La détermination de la vitesse de sédimentation des globules rouges repose sur le principe

que dans du sang rendu incoagulable, les globules rouges sédimentent spontanément avec une

certaine vitesse. Cette vitesse est liée à l'équilibre protéique du plasma. Normalement, elle est

lente. Dans un grand nombre de maladie (syndrome inflammatoire), elle est augmentée, en

raison de l’augmentation des protéines dans le plasma. La hauteur de la colonne de plasma au-

dessus de la couche de globules rouges mesurée en millimètre représente la vitesse de

sédimentation.

Le sang veineux est recueilli dans un tube contenant un anticoagulant (du citrate de

sodium) après homogénéisation soigneuse du sang, on le dépose sur une échelle de lecture. La

lecture se fait après 1h.



Tableau I : valeurs normales de la VS

sexe 1ere heure 2eme heure

Homme 3-15mm <20mm

Femme 4-15mm <20mm

Une augmentation de la VS (réalisée dans les règles de l'art) est une indication

aspécifique d'un trouble physiologique. Exemples : Anémie, grossesse, infections

(rhumatisme articulaire aigu, pneumonie, tuberculose, trypanosomiase, leishmaniose, etc),

cancer, leucémie. Une V.S. normale exclut la présence de beaucoup de maladies. Certaines

maladies ne provoquent cependant pas d'augmentation de la V.S. (exemples : malaria aiguë,

fièvre typhoïde, brucellose, maladie virales, maladies mentales, ...). Une lecture de la vitesse

de sédimentation après 2 heures est peu utile.

Hémogramme

La numération consiste à compter les cellules du sang grâce à un automate. Cet automate

est constitué de deux électrodes de platine. La tâche principale du technicien est de confirmer

la bonne utilisation de l'appareil. Pour cela il doit effectuer un contrôle quotidien qu'il doit

comparer à un abaque donné par le fournisseur. Tous les matins un contrôle est effectué pour

pouvoir confirmer le bon fonctionnement de la machine.

Après avoir homogénéisé pendant 15 minutes l’échantillon sur un rotor ; on plonge

l’électrode dans le sang et on l’aspire en appuyant sur le bouton d’aspiration une fois

l’aspiration terminée, on retire l’échantillon et la machine établit le dosage de l'hémoglobine

et détermine la Concentration Corpusculaire Moyenne en Hémoglobine, la Teneur

Corpusculaire Moyenne en Hémoglobine, le Volume Globulaire Moyen.

2.2.2. Parasitologie

On distingue plusieurs examens tels que :

Goutte Epaisse et Densité Parasitaire

C’est un examen qui a pour but de détecter dans le sang les parasites sanguicoles en

l’occurrence les trophozoites de Plasmodium falciparum (parasites responsables du

paludisme) et ceci sous leur forme de trophozoites.



La GE est une méthode de concentration par contre le frottis sanguin est une méthode

d’identification de l’espèce plasmodiale. La technique se présente comme suit :

• Frottis sanguin

- Recueillir (sang capillaire) ou déposer (sang veineux) une petite goutte de sang à deux

centimètres de l’une des deux extrémités d’une lame propre et bien dégraissée

- Tenir la lame d’une main (entre le pouce et l’index), et de l’autre main le bord de la la

me rodée ou de la lamelle juste en avant de la goutte de sang afin que la goutte s’étale

au bord de la lamelle ou de la lame rodée

- Glisser la lame rodée ou la lamelle d’un mouvement doux et régulier jusqu’au bout de

la lame d’étalement

• Goutte épaisse

- Recueillir (sang capillaire) ou déposer (sang veineux) une goutte de sang à un centimè

tre du frottis

- Etaler le sang à l’aide d’une lame ou d’une lamelle en faisant un mouvement circulaire

de manière à obtenir un cercle d’un centimètre de diamètre

- Laisser sécher, identifier la lame (écrire au crayon le nom et le prénom du patient sur l

e frottis) et fixer le frottis

- Laisser sécher

- Recouvrir le frottis du May Grunwald pendant 3 minutes et rincer à l’eau

- Ensuite recouvrir le frottis et la goutte du Giemsa dilué à 10%

- Laisser pendant 15 minutes et rincer à l’eau

- Laisser sécher et observer au microscope à l’objectif 100X avec l’huile à immersion.

L’interprétation des résultats se fait de la manière suivante

• Densité parasitaire

Elle permet d’apprécier la parasitémie par la connaissance du nombre de parasite par

microlitre de sang. Soit X le nombre de leucocytes comptés et Y le nombre de plasmodies

comptés. La formule de la DP sera :



6000 * Y

DP = = nombre de parasites /ul

X

NB :::: On s’arrête à 200 leucocyte si le nombre de parasite compté est supérieur ou égale à 10 ;

si moins de 10, on continue jusqu’à 500 leucocytes.

2.2.3. Biochimie

On distingue plusieurs examens tels que :

Les transaminases (Aspartate aminotransférase et Alanine aminotransférase)

Les aminotransférase catalysent le transfert d’un groupement amine d’un acide aminé

à α cétoglutarate pour former du glutamate et un autre produit selon l’acide aminé concerné. L

a vitesse de la réaction est proportionnelle à la vitesse de conversion du NADH en NAD+. Cet

te vitesse est déterminée à 340 nm. Pour le réaliser,

- Disposer de deux tubes étiquetés Blanc (tube 1), et Echantillon (tube 2)

- Prélever 1000µl du réactif d’ASAT dans les deux tubes

- Lire le Blanc

- Ensuite ajouter 100µl de l’échantillon au contenu du tube 2, homogénéiser et faire la l

ecture instantanément

- Faire le même processus pour l’ALAT en utilisant le réactif d’ALAT

Tableau II : valeurs normales de ALAT et ASAT

ALAT UI/L ASAT UI/L

Nouveau-né 13-45 Nouveau-né 39-117

Homme 10-40 Enfant 23-94

Femme 7-35 Adulte 13-31

- Une élévation légère se voit en cas de trouble hépatique lié à l’alcool, en cas d’hépati

te virale chronique ou de stéatose (accumulation de graisses dans les cellules du foie),

par exemple. Par ailleurs, un rapport ASAT/ALAT > 2 fait davantage penser à une ma



ladie alcoolique du foie.

- Une élévation plus importante correspond plutôt à une hépatite virale aiguë (l’élévat

ion peut être très importante dans les 4 à 6 semaines qui suivent la contamination), à d

es lésions induites par des médicaments ou une intoxication, ainsi qu’une ischémie hé

patique (arrêt partiel de l’irrigation sanguine au niveau du foie).

Créatininémie

Il est basé sur la réaction de Jaffet. La créatinine forme en présence de l’acide picrique

en milieux alcalin du picrate de créatinine. La vitesse d’apparition du complexe jaune orangé

formé est proportionnelle à la concentration en créatinine dans l’échantillon. La lecture se fait

à 505nm. La technique est la suivante :

- Prélever 1000µl du réactif (500 µl du R1 et 500 µl du R2) dans trois tubes identifiés B

lanc, Etalon et Dosage

- Ajouter 100µl d’eau distillée dans le 1er tube, homogénéiser et faire instantanément la

lecture

- Ajouter 100ul de l’étalon au 2ème tube, homogénéiser et faire instantanément la lecture

- Ajouter 100µl du sérum de l‘échantillon au troisième tube, homogénéiser et faire insta

ntanément la lecture

Tableau III : valeurs normales de la créatinine

Créatininémie Mg/L

Homme 9-13

Femme 6-11

Enfant 3-10

Une concentration élevée de créatinine dans le sang peut être le signe :

- d’une atteinte de la fonction rénale

- d’une insuffisance cardiaque

- d’un épuisement physique



- d’une déshydratation

- d’une blessure musculaire

Une concentration basse de créatinine dans le sang peut-être le signe :

- d’une faible masse musculaire

- d’une atteinte du foie

- d’une grossesse

NB : La valeur de la clairance revêt une signification sémiologique fondamentale lors de

l’étude d’une insuffisance rénale.

2.2.4- Sérologie

Les différents examens effectués dans cette section sont entre autres :

Treponema Pallidum Hemagglutinations Assay

Le TPHA est un test biologique quantitatif utilisé pour diagnostiquer la syphilis. Pour

la détecter, il étudie la réaction d'hémagglutination passive en utilisant des tréponèmes fixés

sur des globules rouges de mouton ou de poussin.

- Disposer d’une microplaque propre

- Identifier 3 puits 1, 2 et 3

- Mettre 190µl du diluant dans le puits 1

- Ajouter au contenu du puits 1 10µl du sérum du patient

- Homogénéiser le contenu du puits 1 et distribuer 25µl du mélange dans chacune des

puits 2 et 3

- Ajouter 75µl de cellules contrôle dans le puits 2

- Ajouter 75µl de cellules test dans le puits 3

- Homogénéiser mécaniquement ou manuellement le contenu des puits

- Couvrir la plaque et la placer à l’abri de la lumière de la chaleur et de toutes sources

de vibration

- Incuber 45-60 minutes à température ambiante et lire le résultat



Tableau IV : La lecture du résultat de la TPHA

Résultats Cellules Test Cellules contrôles

Fortement positif Voile de cellules

couvrant la totalité du

fond du puits

Pas d’agglutination,

bouton compact

Légèrement positif Voile de cellules

couvrant les 1/3 du

fond du puits


bouton compact

Indéterminé Voile de cellules avec

un trou central bien

visible


bouton compact

Négatif Cellules compactées en

un bouton central,

habituellement avec un

petit centre clair


bouton compact

Le dosage de la crp latex

Principe du test

Le réactif latex est une suspension de particules latex polystyrène de dimension uniforme

sensibilisées à la fraction IgG d’un sérum spécifique anti-CRP humain les particules de

lUatex permettent une observation visuelle de la réaction antigène anticorps (CRP-IgG

anti-CRP). Si la réaction à lieu, due à la présence de protéine C réactive dans le sérum, la

suspension de latex change son apparence uniforme et une agglutination claire devient

évidente. Cette modification a lieu car la protéine c réactive présente dans le sérum réagit

avec les IgG fixés sur les particules de latex, formant un tissu entre elles. Quand on

mélange le réactif latex avec le sérum, si celui-ci contient plus de 6 mg/L de protéine C

réactive, une agglutination nette apparait.

• Méthode quantitative

Mode opératoire :

- Porter les réactifs et les échantillons à la température ambiante (+15/+25°C).



- Remettre en suspension le réactif latex par agitation répété du flacon (4-5 fois)

- Déposer 50ul de l’échantillon (ou une goutte de contrôle) sur une des sections de la

lame

- Ajouter une goutte de réactif à côté de la goutte d’échantillon

- Mélanger les deux gouttes à l’aide d’un bâtonnet en recouvrant toute la surface de la

section de la lame

- Agiter la lame avec un léger mouvement de rotation, manuellement ou à l’aide d’un

agitateur rotatif (80-100rpm) pendant 2 minutes

- Vérifier la présence ou l’absence de l’agglutination

Résultat positif

Tableau V : La lecture du résultat de la CRP

Résultats Interprétation

+++ Grand agrégat sur fond transparent

++ Agrégat modéré sur fond légèrement opaque

+ Agrégat fins sur fond opaque

Résultat négatif : Absence d’agrégat, suspension uniforme

• Test semi- quantitative

Matériel complémentaire :

-micropipette et tubes à essais

-chlorure de sodium (09g/L)

-un agitateur rotatif

Procédure :

Le test semi-quantitatif peut être effectué selon le même mode opératoire que le test

quantitative en réalisant des dilutions du spécimen dans Na Cl 9g/l comme suit :



Tableau VI : Procédure du dosage de la CRP latex semi-quantitatif

Dilution ½ ¼ 1/8 1/16 1/32 1/64

Na Cl 9g/L 50µl 50µl 50µl 50µl 50µl 50µl

Spécimen 50µl 50µl 50µl 50µl 50µl 50µl

50µl

50µl

50µl

50µl

50µl

Transférer sur un cercle de la lame de test

Spécimen dilué 50µl 50µl 50µ 50µl 50µl 50µl

Réactif 1 50µl 50µl 50µl 50µl 50µl 50µl

Calculer les résultats selon les formules suivante :

6 * N° de la

dilution

6 * 2 6 * 4 6 * 8 6 * 16 6 * 32 6 * 64

Résultat 12 24 48 96 192 384

2.2.5. Bactériologie

Plusieurs examens sont réalisés ; nous avons :

- L’Examen Cytobactériologique des Urines (ECBU),

- L’examen cytobactériologique du liquide céphalorachidien(LCR)

- Le spermogramme.

Examen cytobactériologique des urines



L’examen cytobactériologique des urines, ou sédiment urinaire est un examen de biologie

médical, étudiant l’urine d’un patient. Il est fréquemment utilisé pour diagnostiquer une

infection urinaire. C’est une analyse qui s’effectue en plusieurs étapes que sont :

Technique

Au laboratoire, l’urine doit être analysée sans retard.

• Examen macroscopique

- Noter l’aspect de l’urine (couleur, turbidité, odeur, corps étranger)

- Prélever 2 à 5 ml d’urine homogénéisée

- Centrifuger à 1500-2500 tours/min pendant 10 minutes

- Rejeter le surnageant ;

- Apprécier le culot

• Examen microscopique

1ere étape : Etat frais

- Homogénéiser le culot

- Disposer d’une lames porte objets en verre

- Déposer une goutte du culot sur la lame

- Recouvrir la goutte avec la lamelle

- Monter au microscope pour l’observation à l’objectif×10 puis ×40 de l’état frais, pour

identifier et quantifier les sédiments.

A cet effet, on peut avoir, les leucocytes, les hématies, les levures, les cristaux

d’oxalate de calcium ou d’acide urique, des cellules épithéliales

2eme étape : Etat coloré

- A l’aide d’une anse de platine, faire l’étalement sur une seconde lame

- Délimiter la zone d’étalement

- Laisser sécher l’étalement à l’air ambiant

- Fixer la lame à la flamme du bec bunsen puis coloré au gram.

Coloration de Gram

C’est une coloration différentielle qui permet d’apprécier la morphologie des germes,

leur disposition et leur affinité au colorant (Gram+ ou Gram-). Le principe de cette coloration

est le suivant :



- Recouvrir la lame avec le violet de gentiane pendant une minute

- Rincer abondamment à l’eau

- Rincer à l’eau distillée

- Recouvrir la lame avec le lugol et attendre une minute

- Rejeter le lugol et rincer

- Recouvrir la lame avec l’alcool à 95° degré ou alcool acétone pendant 30 à 60

secondes

- Rejeter et rincer

- Laisser agir 20 secondes Recouvrir la lame avec la solution de fuchsine

- Rincer et sécher



2.3. Justification

La vitesse de sédimentation est un examen du laboratoire qui permet de déceler un

diagnostic, un syndrome inflammatoire, une infection chez le patient. Elle est un indice pour

le médecin que vous pourriez avoir une maladie lignée à l’inflammation, comme arthrite,

cancer ou infection. Le test de VS mesure la vitesse à laquelle les globules tombent au fond

d’un tube. L’inflammation créée des protéines qui accélère la chute des globules rouges. Elle

peut être une méthode pour suivre l’évolution du traitement des maladies caractérisées par

l’inflammation [9]. Toutefois, le test de vitesse de sédimentation ne peut qu’indiquer au

médecin que vous avez une inflammation quelque part dans votre corps, il ne peut pas

montrer où se trouve l’inflammation ou ce qui-là causer. De plus la VS peut également être

modifiée au cour d’un état pathologique n’impliquant pas un syndrome inflammatoire mais

une anomalie des immunoglobulines et hémoglobinopathie. Quant à la CRP, elle est une

protéine sérique spécifique de la réaction inflammatoire synthétisée par le foie, précocement

au cour de la réponse inflammatoire. En effet la CRP est beaucoup plus sensible et spécifique

à l’inflammation avec un diagnostic plus précis que la VS. La vitesse de sédimentation peut

être augmentée en absence d’inflammation par les facteurs tels que : l’âge, le sexe, la

grossesse, l’anémie, l’augmentation de la quantité d’immunoglobuline. La polyglobulie et

présence de certaines immunoglobulines anormales (la cryoglobuline) peuvent ralentir la VS

en présence d’inflammation [8]. Si la VS et la CRP pris séparément présente d’insuffisance

dans le diagnostic du syndrome inflammatoire, le couple permettrait de diagnostiquer un

syndrome inflammatoire.



Etude du thème



3. ETUDE DU THEME

3.1. OBJECTIFS DE L’ETUDE

3.3.1. Objectif général

L’objectif de ce travail était d’étudier la corrélation entre la vitesse de sédimentation et le

dosage de la protéine C réactive chez les patients du service de la pédiatrie au CHUZ

d’Abomey-Calavi/Sô-Ava dans le diagnostic du syndrome inflammatoire.

3.3.2. Objectifs spécifiques :

- Décrire l’intérêt de la VS dans le diagnostic du syndrome inflammatoire

- Décrire l’intérêt la CRP dans le diagnostic du syndrome inflammatoire

- Déterminer la corrélation entre la VS et la CRP

- Proposer des solutions pour une prise en charge correcte du syndrome inflammatoire.

3.2. SYNTHESE BIBLIOGRAPHIQUE

3.2.1. Généralité sur le sang

3.2.1.1. Définition

Le sang est un liquide rouge qui circule dans les artères, les veines et les capillaires sous

l’impulsion du cœur, et qui irrigue tous les tissus de l’organisme, auxquels il apporte les

éléments nutritifs (glucose, par exemple) et l’oxygène, et dont il recueille les déchets.

3.2.1.2 Composition

Le sang est constitué de cellules (les globules et les plaquettes) qui baignent dans un liquide

salé, le plasma. Sont également présents dans ce plasma des substances dissoutes (le glucose,

le cholestérol, les sels minéraux, etc.), des grosses protéines (anticorps, globulines) ainsi que

des protéines géantes comme l’albumine qui servent de transporteur pour toutes les

substances qui ne peuvent être dissoutes dans le plasma en raison de leur taille ou de leurs

compositions

3.2.1.3 Le sérum

Le plasma est un liquide de couleur jaunâtre quand il est isolé (c’est-à-dire quand on a enlevé

tous les autres constituants du sang). Il transporte les nutriments fournis par la digestion et les

déchets produits par les cellules ainsi que les protéines et autres agents intervenants dans la



coagulation. Il est composé de 90% d’eau dans laquelle baignent les protéines parmi

lesquelles l’albumine (la plus importante) et les globulines (immunoglobulines ou anticorps)

et des sels minéraux.

3.2.2. La vitesse de sédimentation :

La vitesse de sédimentation (VS) est un examen de laboratoire qui consiste à laisser

sédimenter les hématies dans un tube vertical. On mesure la distance parcourue en une heure

puis en deux heures. La méthode de référence est la méthode de Westergren La VS est un

examen simple, peu coûteux, reproductible et permet surtout de détecter une anomalie des

immunoglobulines (hypergammaglobulinémie, gammapathie monoclonal). [3]

La vitesse de sédimentation est un test sanguin qui vérifie l’inflammation dans le corps. C’est

un indice qui permet de vérifier que vous pourriez avoir une maladie liée à l’inflammation

comme infection, cancer, vascularite systémique.

3.2.3. La protéine C réactive

3.2.3.1 Définition

La protéine c réactive est une protéine sérique spécifique de la réaction inflammatoire,

synthétisée par le foie, précocement au cours de la réponse inflammatoire. [5]

C’est aussi une protéine synthétisée par le foie après pénétration dans le sang d’un antigène.

Son apparition dans le plasma sanguin s’effectue immédiatement après l’introduction d’un

antigène dans l’organisme et disparait plus tard lors de la formation des anticorps. [6,7]

La CRP est constituée chimiquement par l’association du sucre (polysaccharide extrait du

pneumocoque C et plus précisément de la capside de cette bactérie) et d’une protéine. Elle

porte pour cette raison le nom de glycoprotéine. [8]

3.2.3.2. CRP : caractéristiques générales

Le rôle de la CRP dans l’organisme n’est pas précisément déterminé mais on sait qu’elle a la

capacité d’interagir avec de nombreux ligands, qu’elle peut activer le complément et stimuler

la phagocytose [9]. Ainsi, un rôle protecteur de la CRP contre les infections a été évoqué [5].

Chez le sujet sain, la CRP existe à l’état de trace dans le plasma (généralement < 3 mg/L) et il

y a relativement peu de variations inter- et intra-individuelles [4].



Le site principal de production de la CRP est l’hépatocyte, principalement sous le contrôle

transcriptionnel de la cytokine Il-6. Même si d’autres sites de production ont été décrits

(monocytes/macrophages alvéolaires, reins en période d’inflammation, cellules musculaires

lisses), leur contribution au taux de CRP circulante est marginale en comparaison avec la

production hépatocytaire. [10,4]

3.2.3.3. CRP : Déterminants du taux circulant

La synthèse de CRP est remarquablement dynamique : après un stimulus majeur, la

concentration plasmatique de CRP peut varier dans des rapports importants (jusqu’à 1000 fois

le taux de base) en 24 à 48 heures et peut chuter rapidement dans le même délai après

traitement du stimulus. La demi-vie plasmatique de la CRP est de 12 heures et demeure

constante dans différentes conditions chez le sujet sain ou malade [11]. Ainsi, le seul

déterminant de la concentration de CRP circulante est son taux de synthèse qui dépend

directement du stimulus à l’origine de la production de CRP [12].

La production de CRP fait partie de la phase aiguë non spécifique de réponse à une

inflammation, à une infection ou à un dommage tissulaire. En conséquence, une augmentation

du taux de CRP est mise en évidence dans de nombreuses pathologies : maladies

inflammatoires chroniques (par exemple : polyarthrite rhumatoïde), nécroses (infarctus du

myocarde, pancréatite aigüe), tumeurs, traumatismes, brûlures [11]. Il existe notamment une

littérature abondante et récente sur l’importance de la CRP dans l’athérosclérose : des

élévations modestes du taux de CRP circulante seraient associées à un risque augmenté de

pathologies coronariennes à long terme et, au cours de l’infarctus du myocarde, une

augmentation importante de la CRP serait associée à une augmentation des risques de

mortalité et de complications cardiaques [13].

3.2.3.4. CRP : Utilisation comme marqueur biologique d’infection

Comme il a été vu, beaucoup de facteurs influencent le taux plasmatique de CRP. Bien que la

CRP ne soit en rien spécifique de l’infection, de nombreuses études ont montré l’intérêt de

son dosage comme argument en faveur de la présence d’une infection, notamment en

réanimation. Ainsi, il a été montré que le dosage de la CRP présentait une puissance

supérieure à des paramètres tels que la température ou la numération des leucocytes dans le

diagnostic d’infection chez des patients de réanimation [14, 15].



3.2.4. Réaction inflammatoire

La réaction inflammatoire est l’ensemble de mécanisme physiologiques de défense visant à

circonscrire et à réparer les lésions tissulaires. Ces lésions peuvent être provoquées par

différents pathogènes (bactéries, virus ou parasites), des traumatismes physiques ou

chimiques, les corps étrangers exogènes. [7,8]

La réaction inflammatoire est une composante de la réponse immune. Elle est impliquée dans

l’immunité naturelle en réponse à un signal de danger.

Elle est le plus souvent une réponse adaptée strictement contrôlée par multiples système

régulateur. Elle est généralement protectrice en participant aux processus de défense naturelle

et à la réparation de tissus lissés. Si la réaction inflammatoire est inadaptée ou mal contrôlée

elle peut devenir agressive. Ainsi les syndromes inflammatoires sont fréquemment rencontrés

en pratique courante et le médecin doit évaluer leur importance et en faire le diagnostic

étiologique car l’inflammation peut être associée à une grande variété de situation

pathologiques (infection, maladie du système, cancer, pathologie thromboemboliques). [6]

3.3. MATERIELS ET METHODES

3.3.1. Type et période d’étude

Il s’agit d’une étude transversale et descriptive qui s’est déroulée du 02 mars au 09 mai 2020

3.3.2. Population d’étude

Notre population était constituée des patients du service de la pédiatrie reçus au laboratoire de

sérologie Médicale et au laboratoire d’hématologie du CHUZ Abomey-calavi/ Sô-ava

3.3.2.1. Critères d’inclusion

Etaient inclus dans l’étude les sujets des deux sexes et d’âges comprise entre 2 mois à 17ans,

chez qui la protéine C réactive soit positive ou non et quel que soit le motif de consultation

3.3.2.2. Critères de non inclusion

Etaient exclus tout patient ayant un âge compris entre 2 mois et 17 ans chez qui la CRP et la

VS n’étaient pas demandés et les femmes enceinte qui ont un âge inferieur ou égale à 17 ans.



3.3.3. Echantillonnage :

3.3.3.1. Méthode et technique d’échantillonnage

La méthode d’échantillonnage était non probabiliste avec la technique d’exhaustivité pour les

patients.

3.3.3.2. Taille de l’échantillon

Pour notre étude nous avons travaillé sur un effectif de 62 patients reçus pour suspicion

d’infection au laboratoire.

3.3.4. Collecte de données :

3.3.4.1. Techniques des données

Deux techniques de collecte des données ont été utilisées : L’enquête par questionnaire et le

prélèvement.

3.3.4.2. Outils de collectes

Les outils de collecte étaient le questionnaire et le matériel de prélèvement.

3.3.5. Le prélèvement

Chaque sujet de l'échantillonnage a bénéficié de deux types de prélèvements : un prélèvement

par ponction veineuse de 5 ml de sang dans un tube contenant de l'anticoagulant (citrate de

sodium ou EDTA) pour la VS et un autre prélèvement de 5 ml de sang dans un tube sec (tube

rouge) sans anticoagulant pour le dosage de la CRP.

3.3.6. Traitement et analyse des données :

3.3.6.1. Analyses au laboratoire

Le sang recueilli est centrifugé à 3000 tours/min pendant 3 minutes et le sérum servira à la

réalisation du CRP.

Un dosage de CRP-latex et une mesure de VS par la technique de Westergren ont été réalisé

pour le même sujet, suite à une prescription médicale

3.3.7. Dosage de la protéine C reactive

Test d’agglutination au latex sur lame pour la détermination qualitative et semi-qualitative de

la (CRP) dans le sérum humain.

E



3.3.7.1. Principe du test

Le réactif latex est une suspension de particules latex polystyrène de dimension uniforme

sensibilisées à la fraction IgG d’un sérum spécifique anti-CRP humain les particules de latex

permettent une observation visuelle de la réaction antigène anticorps (CRP-IgG anti-CRP). Si

la réaction à lieu, due à la présence de protéine C réactive dans le sérum, la suspension de

latex change son apparence uniforme et une agglutination claire devient évidente. Cette

modification a lieu car la protéine c réactive présente dans le sérum réagit avec les IgG fixés

sur les particules de latex, formant un tissu entre elles. Quand on mélange le réactif latex avec

le sérum, si celui-ci contient plus de 6 mg/L de protéine C réactive, une agglutination nette

apparait après 2 minutes.

3.3.7.2. Composition du kite (MEDIFF : one for all)

- Réactif Latex : suspension de particules de latex sensibilisées avec des IgG d’anti-

CRP humaine, dans un tampon. Azide de sodium 0.95g/L

- Contrôle positif (+) : sérum humain immunisé (CRP>20mg/L). Azide de sodium

0.95g/L

- Contrôle négatif (-) : sérum animal. Azide de sodium. 0,95g/L

Figure 1 : matériels nécessaire pour le dosage de la CRP



3.3.7.3. Prélèvement Utilisé le sérum prélevé selon les techniques standards de ponction veineuse dans les tubes en

verre ou en plastique avec ou sans gel séparateur.

Il faut s'assurer que la coagulation est terminée avant d'effectuer la centrifugation.

Conservation : La durée maximale de conservation est de 2 jours à température 2 à 8 C.

3.3.7.4. Mode opératoire

Nous avons effectué deux tests :

• Test quantitatif

• Test semi-qualitatif

3.3.7.4.1. Test quantitatif

- Porter les réactifs et les échantillons à la température ambiante (+15/+25°C).

- Remettre en suspension le réactif latex par agitation répété du flacon (4-5 fois)

- Déposer 50ul de l’échantillon (ou une goutte de contrôle) sur une des sections de la

lame

- Ajouter une goutte de réactif à côté de la goutte d’échantillon

- Mélanger les deux gouttes à l’aide d’un bâtonnet en recouvrant toute la surface de la

section de la lame

- Agiter la lame avec un léger mouvement de rotation, manuellement ou à l’aide d’un

agitateur rotatif (80-100rpm) pendant 2 minutes. Ne pas dépasser les 2 minutes pour

éviter le phénomène d’évaporation pouvant conduire à une erreur d’interprétation

- Vérifier la présence ou l’absence de l’agglutination à la fin du test

- Rincer la lame à l'eau déminéralisée et sécher à l'air libre.

• Lecture et interprétation :

Examiner macroscopiquement la présence ou l'absence de visible agglutination

immédiatement après le retrait de la lame du dispositif de rotation.

-La présence d'agglutination indique une concentration de CRP égale ou supérieure à 6 mg / L



-l'absence d'agglutination indique une concentration de CRP inferieur a 6mg/l, figure 2

Résultat négatif : Absence d’agrégat, suspension uniforme

Figure 2 : Test CRP au latex

3.3.7.4.2. Test semi- quantitative

• Matériel complémentaire :

-micropipette et tubes à essais

-chlorure de sodium (09g/L)

-un agitateur rotatif

• Procédure :

Le test semi-quantitatif peut être effectué selon le même mode opératoire que le test

quantitatif en réalisant des dilutions du spécimen dans Na Cl 9g/l comme suit : préparé les

dilutions dans des tubes a essais.



Tableau VI : Procédure du dosage de la CRP latex semi-quantitatif

Dilution ½ 1/4 1/8 1/16 1/32 1/64

Na Cl 9g/L 50µl 50µl 50µl 50µl 50µl 50µl

Spécimen 50µl 50µl 50µl 50µl 50µl 50µl

50µl

50µl

50µl

50µl

50µl

Transférer sur un cercle de la lame de test

Spécimen dilué 50µl 50µl 50µ 50µl 50µl 50µl

Réactif 1 50µl 50µl 50µl 50µl 50µl 50µl

Calculer les résultats selon les formules suivante :

6 * N° de la

dilution

6 * 2 6 * 4 6 * 8 6 * 16 6 * 32 6 * 64

Résultat 12 24 48 96 192 384

3.3.8. Mesure de la vitesse de sédimentation

3.3.8.1. Principe

Il s’agit de remplir le sang anti-coagulé des tubes de diamètres calibrés, disposer

verticalement et laisser reposer le mélange. La vitesse de sédimentation est la hauteur de la

colonne de plasma dépourvu de globule rouge après un temps donné.



3.3.8.2. Matériels et réactifs

- Sang prélevé sur citrate de sodium dans la proportion de 1 volume de citrate pour 4

volume de sang ;

- Tube à sédimentation de westergren gradué de 0 à 200mm, d’une longueur de 30mm

et d’un diamètre de 2,5mm

- Support à sédimentation tenant les tubes dans une position parfaitement verticale,

- Une poire aspirante adaptée au tube pour le pipetage

Figure 3 : tube de Westergren

3.3.8.3. Technique

Le sang veineux est soigneusement mélangé. Le test doit être effectué dans les deux heures

qui suivent le prélèvent du sang, cependant un retard de 6h est toléré si le sang est conservé à

4°C.

- Remplir le tube westergren jusqu’au repère 0 en évitant la formation de bulle d’air ;

- placer le tube à sédimentation verticalement sur le support, laisser en attente. Après

première heure, lire la hauteur de la colonne du plasma dépourvu de globule rouge

directement en mm sur le tube

- Reprendre la lecture à la deuxième heure et les résultats.

NB : les supports des tubes doivent être à l’abri de toute variation. Cet examen doit être fait à

une température constante (20-22°C).

3.3.9. Analyse statistique des données

Nos données ont été saisies et analysées dans le logiciel SPSS version 21 et le logiciel Excel

2013. Des analyses descriptives (calcul de pourcentages) et analytiques (calcul du coefficient

de corrélation de Pearson) ont été effectuées. Les résultats ont été considérés comme

significatifs si p value < 0,05.



Résultats

Caractéristiques des sujets

Le tableau ci-dessous nous renseigne sur la répartition de la population d’étude en

fonction du sexe et de tranche d’âge. En effet, 55% des patients étaient de sexe féminin.

S’agissant de la répartition de la population d’étude par tranche d’âge, la majorité des

enfants de la population d’étude ont un âge compris entre 2 mois à 5 ans (soit 53,2%).

Tableau II : répartition de la population d’étude par sexe et tranche d’âge

SEXE

Tranche

d’âge

Féminin Masculin

TOTAL Effectif % Effectif %

]2 mois-5ans]

18

29,12

15

24,19

33 (55,2%)

]5ans-10ans]

8

12,90

8

12,90

16 (25,8%)

]10ans-17ans]

8

12,90

5

8,06

13 ( 21%)

TOTAL

34

55

28

45

62 (100%)



Résultats de la crp et de vs

La figure ci-dessous nous présente la répartition de la population d’étude en fonction des

résultats de la CRP. 65% des patients avaient un résultat de CPS positif (40 patients sur 62)

Figure 5 : Répartition des résultats de la CRP chez les sujets prélevés

La figure ci-dessous nous informe la répartition de la population d’étude en fonction des

résultats de la VS. En effet, il a été observé une VS normale chez 28 enfants (soit 45%) et une

VS accélérée chez 34 enfants (soit 55%).

Figure 6 : Répartition des résultats de la VS chez les sujets prélevés

65%

35%

0%

10%

20%

30%

40%

50%

60%

70%

P0SITIF NEGATIF

CRP

55%

45%

0%

10%

20%

30%

40%

50%

60%

Accélérée Normal

VSVSVSVS



Relation entre la CRP et la VS

Le tableau ci-dessous nous renseigne sur la distribution de la CRP et la VS. Il convient de

noter que les patients ayant une VS accélérée/CRP positive (38,71%) présentent un

pourcentage supérieur à ceux qui ont les VS normale/CRP positive (25, 81%). Il a été aussi

remarqué que chez 10 patients (16,13%) une VS accélérée/CRP négative dont 8 anémiés.

Tableau III : répartition de la population d’étude en fonction de la CRP et la VS

CRP TOTAL

CRP

POSITIVE(%)

CRP

NEGATIVE(%)

VS

(%)

Normale 25,81 19,35 45

Accélérée 38,71 16,13 55

TOTAL 65 35 100

La figure 7 nous renseigne une corrélation entre CRP et VS à la deuxième heure. Il a été noté

une faible corrélation entre CRP et VS à la 1ère heure égale à r=0,297.

Figure 7 : courbes de corrélation entre CRP et VS1

y = 0,5854xR² = 0,0471

0

50

100

150

200

250

300

350

400

450

0 20 40 60 80 100 120 140 160

CR

P (

mg/

L)

VS (mm/h)



La figure 8 renseigne sur la corrélation entre VS1 et VS2. En effet, il a été constaté une forte

corrélation soit r=0,970 entre VS1 et VS2.

Figure 8 : courbe de corrélation entre VS1 etVS2

Le tableau ci-dessous nous montre les valeurs de coefficient de corrélation entre la CRP/VS1 ;

la CRP/VS2 et VS1/ VS2. Il a été remarqué qu’il y a une forte corrélation (0, 970) entre la

VS à la première heure et celle à la seconde heure.

Tableau IV : coefficient de corrélation

Coefficient de corrélation Valeurs

CRP et VS1 0 ,297

CRP et VS2 0,260

VS1 et VS2 0,970

y = 1,3726xR² = 0,9333

0

50

100

150

200

250

0 20 40 60 80 100 120 140 160

VS

2

VS 1



COMMENTAIRES

Cette étude menée au CHUZ Abomey-calavi/Sô-ava a montré qu’il y a une faible corrélation

entre la CRP et la VS à la 1ère heure autant qu’à la 2ème heure ayant pour coefficients

respectivement 0,297 et 0,260. Cependant, il a été noté une forte corrélation entre la VS à la

première et celle à seconde heure soit un coefficient de 0,97. Ces résultats sont en accord avec

celui trouvé par Boukhari A. en Algérie dans son étude qui prend en compte 14 enfants âgés

de 06 ans à 16 ans chez qui il a trouvé comme coefficient de corrélation respectivement 0,564

; 0,432 et 0, 965 entre VS1/CRP ; VS2/CRP et VS1/VS2 [16]. Il convient de noter que l’étude

a permis de trouver 65% de CRP positive et 55% de VS accélérée de la population d’étude.

Ces résultats sont en accord avec ceux trouvés par Gabolde M. et Croisille L. en France

(2002) dans leur étude rétrospective prenant en compte 62 enfants âgés de 2 mois à 15 ans. La

CRP était supérieure à 100 mg/L dans 63% ; 64% ; 100% et 25 % des maladies de Still,

maladies de Kawasaki, des hémopathies malignes et des syndromes inflammatoires restés

sans diagnostic respectivement ; la VS était supérieure à 100 mm/h dans 88% ; 62% ; 100% et

12,5 % des maladies de Still, maladies de Kawasaki, des hémopathies malignes et des

syndromes inflammatoires restés sans diagnostic [17]. Le résultat était aussi concordant avec

celui de Mondé A. et Djessou P. en 2008 à Abidjan. 53 patients, soit 74,6% avaient une CRP

élevée, et 18 patients soit 25,4% avait une CRP normale [18]. Il est avéré que nos résultats

sont également en accord avec celui de Diallo O. en 2010 à travers son étude sur intérêt de la

CRP dans le diagnostic des infections bactérienne en néonatologie au mali. Les résultats de

ces études révèlent 60% de cas de CRP positives [19]. Les résultats obtenus étant en accord

avec ceux de Boukhari A. montrant une faible corrélation entre CRP et VS incitent à revoir la

prescription concomitante de la VS et la CRP chez certains cas, notamment chez les enfants

de 0 à 10 ans, l’interférence avec l’anémie, les hémoglobinopathies et anomalie des globules

rouges peuvent interférer dans la mesure de la VS. Nous avons remarqué que les patients qui

ont une valeur de CRP élevée n’ont pas toujours une VS accélérée. C’est le cas de certains

patients qui ont respectivement une concentration de 384mg/L ; 192mg/L et 192mg/L en CRP

et des valeurs de VS 60mm/h, 75mm/h et 120mm/h. Il a été noté également qu’il y a un grand

écart entre les valeurs de la CRP et celles de la VS chez les patients ayant un âge compris

entre 2 mois à 10 ans soit un écart de 56,75 comparativement aux patients qui ont un âge

compris entre 11ans à 17 ans soit un écart de 14,43. Ce grand écart empêcherait l’utilisation

judicieuse des résultats de la VS et de la CRP dans cette tranche d’âge



Conclusion

Notre étude a été prospective et a concerné 62 enfants hospitalisés au service de la pédiatrie

du CHUZ Abomey-calavi/Sô-ava pendant la période allant de 02 mars au 09 mai 2020 pour

suspicion de syndromes inflammatoires. Au terme de cette étude, il a été noté une nette

prédominance féminine (55%) et une forte proportion d’enfants de 2mois à 5ans constaté dans

la population étudiée (53,2%). La vitesse de sédimentation et la C Réactive Protéine sont deux

marqueurs biologiques de routine pour diagnostiquer et suivre l’évolution d’une

inflammation. Les résultats qui ont été obtenu dans notre travail (65%) de CRP positive et

(55%) de la VS accélérée démontrent qu’il existe une variabilité de corrélation entre la vitesse

de sédimentation et la Protéine C Réactive selon l’âge. Revoir l’intérêt des deux prescriptions

est nécessaires pour déterminer quel paramètre est plus utile. Des études supplémentaires

peuvent être suggérées afin de confirmer la nécessité des deux paramètres dans le diagnostic

et dans le suivie des syndromes inflammatoires.



SUGGESTIONS

Au terme de ce travail, nous suggérons :

A l’endroit des médecins cliniciens, de faire la prescription concomitante de la vitesse de

sédimentation et CRP.

A l’endroit des biotechnologistes, de faire le titrage en cas de CRP positif et d’éviter la

vibration du tout genre du dispositif de westergren lors de la réalisation de la vitesse de

sédimentation.

A l’endroit des autorités de l’Ecole Supérieure le Faucon, il s’agit d’augmenter la période du

stage pour les années à venir afin de permettre aux étudiants de parcourir toutes les sections

du laboratoire.



REFERENCES

1. Ouhrich I . Les biomarqueurs actuels de l’inflammation. Thèse pour l’obtention du

doctorat en pharmacie. 2017. Page 2-40.

2. Abbal, Alric L., A. Cantagrel, Delisle B. Réaction inflammatoire: aspects biologiques

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3. Jaibobola : vitesse de sédimentation : basse, élevé, normale... on vous explique tout ;

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4. Balédent F. vitesse de sédimentation et CRP. Centre hospitalier de Saint-Denis (93),17

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5. Sacoub P., Terrier B. vitesse de sédimentation et les marqueurs de l’inflammation.

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6. Borghini T., L. Vernez, D. K. : Fiche technique Protéine C réactive (CRP) et Vitesse de

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7. Devulder B., Hatron Py, Hachulla : aspect clinico-biologique. Medicine interne. Abrégé

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8. Korganow S. ; Martin T. ; Pasqual J.L. : syndrome inflammatoire : aspects biologiques

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9. Sangare, Monnet D., Diallo T. Et Yapo A. E. Intérêt clinique du dosage de la protéine C-

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11. Szalai A., Vancott J., Mcghee J., Volanakis E., Benjamin W., human J. c-réactive

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bactériennes néonatales au CHU-GABRIEL TOURE. 2010. page : 20-58.



TABLES DES MATIERES DEDICACES ............................................................................................................................ 5

HOMMAGES ........................................................................................................................... 6

REMERCIEMENTS ................................................................................................................ 7

LISTE DES ABREVIATIONS ............................................................................................... 8

LISTE DES TABLEAUX ........................................................................................................ 9

LISTE DES FIGURES ........................................................................................................... 10

RESUME ................................................................................................................................. 11

ABSTRACT ............................................................................................................................ 12

SOMMAIRE ........................................................................................................................... 13

INTRODUCTION .................................................................................................................. 14

Présentation du cadre de stage ................................................ 15

1. PRESENTATION DU CADRE DE STAGE ................................................................ 16

1.1. Cadre institutionnel ........................................................................................................ 16

1.2. Cadre technique ................................................................................................................... 16

1.2.1. Historique de l’Hôpital de Zone d’Abomey-Calavi / Sô-Ava .................................. 16

1.2.2. Situation géographique ............................................................................................... 16

Déroulement du stage................................................................. 17

2. DEROULEMENT DU STAGE ......................................................................................... 18

2.1. Objectif du stage ...................................................................................................................... 18

2.1.1. Objectif général ................................................................................................................ 18

2.1.2. Objectifs spécifiques .......................................................................................................... 18

2.2. Travaux effectués par section de laboratoire ......................................................................... 18

2.2.1. Hématologie ....................................................................................................................... 18

2.2.2. Parasitologie ...................................................................................................................... 19

2.2.3. Biochimie ............................................................................................................................ 21

2.2.4- Sérologie ............................................................................................................................. 23

Tableau I : procédure du dosage de la CRP latex semi-quantitatif. ........................................... 26

2.2.5. Bactériologie ....................................................................................................................... 26



2.3. Justification contextuelle.......................................................................................................... 29

: Etude du thème .......................................................................... 30

3. ETUDE DU THEME ...................................................................................................... 31

3.1. OBJECTIFS DE L’ETUDE .................................................................................................. 31

3.3.2. Objectifs spécifiques : ........................................................................................................... 31

3.2. SYNTHESE BIBLIOGRAPHIQUE .......................................................................................... 31

3.2.1. Généralité sur le sang ........................................................................................................ 31

3.2.2. La vitesse de sédimentation : .......................................................................................... 32

3.2.3. La protéine C réactive ..................................................................................................... 32

3.2.4. Réaction inflammatoire .................................................................................................. 34

3.3. MATERIELS ET METHODES .......................................................................................... 34

3.3.1. Type et période d’étude ............................................................................................... 34

3.3.2. Population d’étude.......................................................................................................... 34

3.3.3. Echantillonnage .............................................................................................................. 35

3.3.4. Collecte de données : ...................................................................................................... 35

3.3.5. Le prélèvement................................................................................................................ 35

3.3.6. Traitement et analyse des données : .............................................................................. 35

3.3.7. Dosage de la protéine C reactive ..................................................................................... 35

Figure 1 : matériels nécessaire pour le dosage de la CRP ....................................................... 36

Figure 2 : Test CRP au latex ................................................................................................... 38

3.3.8. Mesure de la vitesse de sédimentation ............................................................................. 39

3.3.9. Analyse statistique des données ........................................................................................ 40

RESULTATS ................................................................................. Erreur ! Signet non défini.

Figure 4 : la réparation de la population d’étude en fonction du sexeErreur ! Signet non défini.

Tableau II : répartition de la population d’étude par tranche d’âgeErreur ! Signet non défini.

Figure 5 : Répartition des résultats de la CRP ........................................................................ 42

Figure 6 : répartition des résultats du VS ................................................................................ 42

Tableau III : répartition de la population d’étude par CRP et VS .......................................... 43

Figure 7 : courbes de corrélation entre CRP et VS1 ............................................................... 43

Figure 8 : courbe de corrélation entre VS1 etVS2 .................................................................. 44

Tableau 4 : coefficient de corrélation ..................................................................................... 44

COMMENTAIRES ................................................................................................................ 44

CONCLUSION .............................................................................. Erreur ! Signet non défini.



SUGGESTIONS ..................................................................................................................... 47

REFERENCE ........................................................................................................................ 48

TABLES DES MATIERES ................................................................................................... 50

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