Enkele (“veel”)-gebruikte waardcel-stammen

HB101 (Herbert Boyer)supE44 hsdS20(rB

- mB-) recA13 ara-14 proA2 lacY1 galK2 rpsL20 xyl-5 mtl-1

Een hybride stam ontstaan door een kruising tussen een E. coli K12 x E.coli Bkruising. Een amber-suppressor. Oorspronkelijk gebruikt voor grootschaligeplasmideproductie en “efficiente” transformatie.

RR1 : is een recA+ derivaat van HB101

1778 dap (deficient in synthese van diaminopimelinezuur, essentieel voor peptidoglycaanopbouw)

DH1 (Doug Hanahan)DH5DH5DH10DH10B

JM101 (Joachim Messing)

supE thi (lac-proAB) F’ (traD36 proAB+ lacIq lacZM15)(JM103)TG1 (Toby Gibson) Een EcoK- derivaat van JM101 (noch restrictie, noch modificatie)TG2 Een recombinatie-deficient derivaat van TG1.

Strain Information

E. coli K-12 MG1655

DescriptionGenotype: F- lambda- ilvG rfb-50 rph-1Serotype: OR:H48:K-

This strain was sequenced by the Blattner laboratory because it approximates wild-type E. coli and "has been maintained as a laboratory strain with minimal genetic manipulation, having only been cured of the temperate bacteriophage lambda and F plasmid by means of ultraviolet light and acridine orange, respectively." (Blattner, et al. 1997).

The mutations listed in the genotype are present in most K-12 strains and were probably acquired early in the history of the laboratory strain. - A frameshift at the end of rph results in decreased pyrE expression and a mild

pyrimidine starvation, such that the strain grows 10 to 15% more slowly in pyrimidine-free medium than in medium containing uracil.

- The ilvG mutation is a frameshift that knocks out acetohydroxy acid synthase II. - The rfb-50 mutation is an IS5 insertion that results in the absence of O-antigen

synthesis.

MG1655 was derived and named by Mark Guyer from strain W1485, which was derived in Joshua Lederberg's lab from a stab-culture descendant of the original K-12 isolate. This original E. coli strain K-12 was obtained from a stool sample of a diphtheria patient in Palo Alto, CA in 1922.

MG1655 1997, volledige genoomsequentie van E.coli K12 (Blattner et al.)

MC1061 startpunt van Doug Hanahan voor de constructie van DH1 en verder tot DH10B

belangrijke elementen in deze stappen :

recA1 : verbeteren van de kloonstabiliteit (homologe recombinatie verhinderen)

endA1 : inactiveert de codering van het periplasmatisch DNA-specifieke

endonuclease => verhoogt de DNA stabiliteit tijdens transformatie

een defectief 80 faag met lacZM15 voor screening door -complementatie

een deoR mutatie zou aanwezig zijn die verhoogde transformatie-efficiëntie geeft,

maar dit blijkt nu op een foute interpretatie te berusten.

(er blijken nu 52 kandidaat-gemuteerde-genen te zijn potentieel verantwoordelijk voor dit interessante fenotype)

DH10

DH10B : na Tn10 insertie (in mdoB) werd met 2-carboxyl, 5-butyl pyridine (5-butyl picoline of ‘fusaric acid’ : heeft

antivirale eigenschappen) de TcR (van het Tn10) tegengeselecteerd (i.a.v. een plasmide dat recA tot expressie bracht,

en nadien verwijderd werd).

Met het verwijderen van de Tn10 merker werd in het isolaat DH10B het flankerende DNA

met de MDRS loci gedeleteerd (mrr, mcrA, mcrB, mcrC). Dit verhoogt de efficientie van

klonering van zoogdier DNA, waarin cytosine vaak gemethyleerd is.

D10B tonA : spontane mutant die werd geselecteerd. tonA geeft resistentie tegen de

fagen T1, T5 en 80. Is commercieel verkrijgbaar (Invitrogen NV)

DeoR : proteine met Mr = 30.500repressor van deo operon (betrokken bij het nucleoside catabolisme)

De co-lineariteit tussen MG1655 en DH10B is behoorlijk, maar wat vooral

opvalt is de veel hogere mutatiesnelheid in DH10B.

De mutatiesnelheid van DH10B is 13,5 maal hoger t.o.v. MG1655.

Dit blijkt echter niet te wijten aan puntmutaties, noch aan deleties,

maar aan IS-elementen, voornamelijk IS150.

Er zijn 226 gemuteerde genen in DH10B tegenover MG1655, vooral als

gevolg van de genetische manipulaties (transducties).

Er is enige “remodelling” van de genoomarchitectuur, o.a. een 113.260 bp

tandem herhaling.

DH10B is een Leu-auxotroof (deletie van leuLABCD) : groeit op

minimaal medium alleen i.a.v. leucine. De groeisnelheid is lichtjes trager

dan van de wild-type stam.

Meestal transductie met faag P1 vanuit E.coli K12 stammen, behalve met D7091F die een E.coli B stam is.

De basesamenstelling doorheen het genoom is niet random. De "G-C skew" (d.i. de verhouding G-C/G+C) is uitgezet als een 10-kbvenstergemiddelde voor een van de strengen van het ganse genoom.

De skews zijn uitgesplitst voor de 3 codonposities (lijn 1, 2 en 3), voor alle posities samen (lijn 4), voor de linksgerichte genen (lijn 5), de rechtsgerichte genen (lijn 7) en de niet-eiwitcoderende gebieden (lijn 6).

De twee verticale lijnen geven de positie van ori aan (in de buurt van bp

3.900.000) en van replicatieterminatie (in de buurt van bp 1.600.000).