Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

1/82

SKRIPSI

PENGARUH PEMBERIAN AIR PERASAN

DAUN KAMBOJA MERAH (Plumeria rubra L)

TERHADAP KEMATIAN LARVA Aedes aegypt i L INSTAR III

Penelitian Eksperimental Laboratorium

ANGELINE ROSA HARTONO

2012.04.0.0054

FAKULTAS KEDOKTERAN

UNIVERSITAS HANG TUAH

SURABAYA

2016

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

2/82

SKRIPSI





Diajukan sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana

Kedokteran pada Fakultas Kedokteran

Universitas Hang Tuah

ANGELINE ROSA HARTONO

2012.04.0.0054

FAKULTAS KEDOKTERAN

UNIVERSITAS HANG TUAH

SURABAYA

2016

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

3/82

i

PERNYATAAN ORISINALITAS

Skripsi ini adalah hasil karya saya sendiri, bebas plagiat, semua sumber

baik yang dikutip maupun yang dirujuk telah saya nyatakan dengan benar.

Apabila dikemudian hari terbukti terdapat plagiat dalam skripsi saya, maka

saya bersedia menerima sanksi sesuai ketentuan peraturan perundang-

undangan.

Surabaya,

Angeline Rosa Hartono

2012.04.0.0054

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

4/82

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

5/82

iii

SKRIPSI






2012.04.0054

Mengesahkan,

Ketua Penguji

Riami, dr., M. Kes

NIK. 01213

Penguji II

Erina Yatmasari, dr., M. Kes

NIK. 01194

Penguji I

Eva Pravitasari Nefertiti, dr., Sp. PA

NIK. 01452

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

6/82

iv

KATA PENGANTAR

Puji dan syukur kepada Tuhan Yang Maha Esa, atas berkat

penyertaan-Nya, penulis dapat menyelesaikan penelitian dan penulisan

skripsi yang berjudul “PENGARUH PEMBERIAN AIR PERASAN DAUN

KAMBOJA MERAH (Plumeria rubra L) TERHADAP KEMATIAN LARVA

Aedes aegypti L INSTAR III”.

Skripsi ini diajukan sebagai salah satu syarat untuk meraih gelar

sarjana kedokteran S1. Dalam proses penyusunan skripsi ini, penulis

menyadari bahwa skripsi ini tidak akan bisa terselesaikan tanpa terlepas

dari peranan, bantuan, bimbingan, dukungan dan doa dari berbagai pihak

sehingga penulis dapat mengatasi hambatan dan kendala yang timbul.

dari berbagai pihak. Oleh sebab itu, dengan rendah hati penulis

menyampaikan ucapan terima kasih yang sebesar-besarnya kepada:

1. Sakti Hoetama, dr, Sp. U, selaku Dekan Fakultas Kedokteran

Umum Universitas Hang Tuah Surabaya, beserta staf yang

telah membantu dan memfasilitasi penulis selama mengikuti

pendidikan di Fakultas Kedokteran Universitas Hang TuahSurabaya.

2. Sri Rukmini, dr, Sp. THT selaku wakil dekan I Fakultas

Kedokteran Umum Universitas Hang Tuah Surabaya, beserta

staf yang telah membantu dan memfasilitasi penulis selama

mengikuti pendidikan di Fakultas Kedokteran Universitas Hang

Tuah Surabaya.

3. Budiarto Adiwinoto, dr., Sp. PK., selaku Wakil Dekan II FakultasKedokteran Umum Universitas Hang Tuah Surabaya, beserta



Tuah Surabaya.

4. Prajogo Wibowo, dr., M. Kes, selaku Wakil Dekan III Fakultas

Kedokteran Umum Universitas Hang Tuah Surabaya, beserta


8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

7/82

v


Tuah Surabaya.

5. Erina Yatmasari, dr., M. Kes selaku dosen pembimbing. Terima

kasih yang sebesar-besarnya atas bantuan dalam memberikan

bimbingan, nasihat, saran, ide, dan perbaikan yang sangat

berharga dalam proses penyusunan skripsi ini di sela-sela

kesibukan beliau.

6. Riami, dr., M. Kes dan Eva Pravitasari Nefertiti, dr., Sp. PA

selaku dosen penguji skripsi, terima kasih atas waktu yang

telah diluangkan, serta saran dan ide yang diberikan selama

sidang skripsi.

7. R. Varidiyanto Yudo Tj, dr, M. Kes selaku dosen wali. Terima

kasih telah menyetujui tema karya tulis ini dan membimbing

saya selama menempuh pendidikan di Fakultas Kedokteran

Universitas Hang Tuah Surabaya.

8. Orang tua tercinta Hartono dan Melyana Hermanto, serta adik

tersayang Sebastian Felix Hartono, dan Alexander William

Hartono. Terima kasih banyak atas dukungannya baik secaramoril, material, dan doa-nya sehingga saya mampu

menyelesaikan karya tulis ini.

9. Yang terkasih Yudi Kristanto, yang telah memberikan

dukungan, bantuan, waktu, semangat dan doa sehingga saya

dapat menyelesaikan skripsi ini.

10. Debora Renata, Reski Chandra dan Reza Muliyanto, sebagai

rekan satu kelompok yang sama-sama dibimbing oleh dr. ErinaYatmasari. Terima kasih banyak atas bantuan, kekompakan

dan kerjasamanya selama ini, sehingga saya dapat

menyelesaikan karya tulis ini.

11. Teman-teman Fakultas Kedokteran Universitas Hang Tuah

Surabaya angkatan 2012 khususnya Stefani Dewi Widodo,

Claudia Sandra Kuncoro, Christabela Dwiutami Tanto, Della

Valeria Sutanto, Felicia Liemanjutak, Antonius Rico Andreawan,

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

8/82

vi

Andrew Santoso yang selalu membantu, memberikan motivasi

dan semangat serta mengingtkan agar skripsi ini dapat

terselesaikan tepat waktu.

12. Kepada teman-teman kelompok tutorial 7 yang telah menjadi

sahabat saya sejak semester 1. Terima kasih atas waktu,

bantuan, dukungan, doa, dan saran yang telah kalian berikan

kepada saya.

13. Sahabat-sahabat yang tidak akan terlupakan, Sany Antika

Wijaya, Vanya Natasha Gani, Yulia Magdalena, Albert Edwin

Wiyono, Dennis Sutanto, Ivan Hendrayanta yang selalu

memberi dukungan dan semangat kepada penulis.

14. Kepada semua pihak yang sudah berperan dalam penelitian ini

namun tidak bisa saya sebutkan satu persatu, terima kasih atas

bantuannya.

Penulis menyadari bahwa masih banyak kekurangan dalam

penelitian dan penyusunan skripsi ini, oleh karena itu penulis memohon

maaf atas kesalahan yang diperbuat baik yang sengaja maupun tidak

disengaja, serta penulis juga mengharapkan saran maupun kritik yangmembangun. Semoga penelitian ini dapat berguna bagi masyarakat serta

membantu bagi pengembangan ilmu kedokteran.

Akhir kata, penulis mengucapkan terima kasih dan semoga Tuhan

Yang Maha Esa selalu memberikan berkat-Nya kepada semua pihak yang

sudah berkontribusi dalam penelitian ini.

Surabaya, Januari 2016

Penulis


8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

9/82

vii

DAFTAR ISI

Pernyataan Orisinalitas ............................................................................... i

Lembar Persetujuan .................................................................................. ii

Lembar pengesahan ................................................................................. iii

Kata Pengantar ......................................................................................... iv

Daftar Isi .................................................................................................. vii

Daftar Tabel ............................................................................................... x

Daftar Gambar .......................................................................................... xi

Daftar Lampiran ....................................................................................... xii

Daftar Simbol, Singkatan dan Istilah ....................................................... xiii

Abstract .................................................................................................. xiv

Abstrak .................................................................................................... xv

BAB 1 PENDAHULUAN ........................................................................... 1

1.1 Latar Belakang ........................................................................ 1

1.2 Rumusan Masalah .................................................................. 3

1.3 Tujuan Penelitian .................................................................... 4

1.3.1 Tujuan umum ............................................................. 4

1.3.2 Tujuan khusus ............................................................ 4

1.4 Manfaat Penelitian .................................................................. 4

1.4.1 Manfaat teoritis ........................................................... 4

1.4.2 Manfaat praktis ........................................................... 4

BAB 2 TINJAUAN PUSTAKA ................................................................... 5

2.1 Tinjauan Tentang Nyamuk Aedes aegypti ............................... 52.1.1 Taksonomi .................................................................. 5

2.1.2 Morfologi nyamuk aedes aegypti ................................ 6

2.1.2.1 Kepala ........................................................... 6

2.1.2.2 Thorax ........................................................... 6

2.1.2.3 Abdomen ...................................................... 7

2.1.3 Siklus hidup nyamuk aedes aegypti ............................ 8

2.1.3.1 Telur ............................................................... 8

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

10/82

viii

2.1.3.2 Larva .............................................................. 9

2.1.3.3 Pupa ............................................................. 11

2.1.3.4 Nyamuk dewasa ........................................... 12

2.1.4 Perilaku nyamuk aedes aegypti betina ..................... 13

2.1.5 Tempat pembiakan nyamuk aedes aegypti .............. 15

2.1.6 Pemberantasan dan pencegahan ............................. 16

2.2 Tinjauan Tentang Kamboja Merah (Plumeria rubra L) .......... 17

2.2.1 Taksonomi ................................................................ 18

2.2.2 Nama lain plumeria rubra L ...................................... 18

2.2.3 Morfologi plumeria rubra L........................................ 18

2.2.4 Asal dan distribusi plumeria rubra L .......................... 20

2.2.5 Kandungan plumeria rubra L .................................... 21

2.3 Tinjauan Tentang Kamboja Merah (Plumeria rubra L) .......... 21

BAB 3 KERANGKA KONSEPTUAL DAN HIPOTESIS .......................... 25

3.1 Kerangka Konseptual ............................................................ 25

3.1.1 Penjelasan kerangka konseptual .............................. 26

3.2 Hipotesis Penelitian .............................................................. 26

BAB 4 METODE PENELITIAN................................................................ 27

4.1 Rancangan Penelitian ........................................................... 27

4.2 Populasi, Sampel, Unit Eksperimen dan Teknik Pengambilan

Sampel ................................................................................. 27

4.2.1 Populasi ................................................................... 27

4.2.2 Sampel ..................................................................... 27

4.2.3 Unit eksperimen ....................................................... 274.2.4 Teknik pengambilan sampel ..................................... 28

4.3 Variabel Penelitian ................................................................ 28

4.3.1 Klasifikasi variabel penelitian .................................... 28

4.3.2 Definisi operasional variabel ..................................... 29

4.4 Alat dan Bahan Penelitian ..................................................... 29

4.4.1 Bahan penelitian ....................................................... 29

4.4.2 Alat penelitian ........................................................... 32

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

11/82

ix

4.5 Lokasi dan Waktu Penelitian ................................................. 32

4.6 Prosedur Penelitian ............................................................... 32

4.6.1 Persiapan alat dan bahan ......................................... 32

4.6.1.1 Persiapan larva aedes aegypti ..................... 32

4.6.1.2 Koleksi kamboja merah ................................ 32

4.6.1.3 Pembuatan larutan induk air perasan daun

kamboja merah ............................................ 33

4.6.1.4 Pembuatan larutan kontrol ........................... 33

4.6.2 Uji sesungguhnya ..................................................... 33

4.6.3 Alur penelitian........................................................... 35

4.7 Pengumpulan Data ............................................................... 36

4.8 Analisis Data ......................................................................... 37

BAB 5 HASIL PENELITIAN DAN ANALISIS DATA ............................... 38

5.1 Hasil Penelitian ..................................................................... 38

5.2 Analisa Hasil Statistik ............................................................ 40

5.2.1 Saphiro-wilk .............................................................. 40

5.2.2 Uji kruskal-wallis ....................................................... 41

5.2.3 Uji wilcoxon mann-whitney ....................................... 41

5.2.4 LC50 .......................................................................... 44

BAB 6 PEMBAHASAN ........................................................................... 46

6.1 Hasil Uji Sesungguhnya ........................................................ 47

6.2 Penentuan LC50 .................................................................... 49

6.3 Penutupan Pembahasan....................................................... 49

BAB 7 KESIMPULAN DAN SARAN ....................................................... 50

7.1 Kesimpulan ........................................................................... 50

7.2 Saran .................................................................................... 50

DAFTAR PUSTAKA ................................................................................. 52

LAMPIRAN .............................................................................................. 58

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

12/82

x

DAFTAR TABEL

Tabel 2.1 Tanaman dengan Efek Larvasida............................................. 21

Tabel 5.1 Hasil Pemberian Air Perasan Daun Kamboja Merah terhadap

Larva Aedes aegypti instar III .................................................................. 38

Tabel 5.2 Hasil Uji Wilcoxon Mann-Whitney............................................. 41

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

13/82

xi

DAFTAR GAMBAR

Gambar 2.1 Nyamuk Aedes aegypti .......................................................... 8

Gambar 2.2 Siklus Hidup Aedes aegypti .................................................... 8

Gambar 2.3 Telur Aedes aegypti ............................................................... 9

Gambar 2.4 Larva Aedes aegypti ............................................................ 11

Gambar 2.5 Pupa Aedes aegypti ............................................................. 12

Gambar 2.6 Tempat-Tempat Perkembangbiakan Aedes aegypti ................ 15

Gambar 2.7 Plumeria rubra L .................................................................. 20

Gambar 5.1 Grafik Jumlah Kematian Larva terhadap Pemberian

Konsentrasi Air Perasan Daun Kamboja Merah ....................................... 39

Gambar 5.2 Grafik Persentase Rata-Rata Kematian Larva terhadap

Pemberian Konsentrasi Air Perasan Daun Kamboja Merah ..................... 39

Gambar 5.3 Grafik LC50 ........................................................................... 44

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

14/82

xii

DAFTAR LAMPIRAN

LAMPIRAN 1 Jadwal Pelaksanaan .......................................................... 58

LAMPIRAN 2 Taksonomi Kamboja Merah ............................................... 59

LAMPIRAN 3 Dokumentasi penelitian...................................................... 60

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

15/82

xiii

DAFTAR SIMBOL, SINGKATAN dan ISTILAH

α : Tingkat signifikansi

3M : Menguras, menutup, mengubur

AChE : Asetilkolinesterase / achetylcholinesterase

Anova : Analysis of Variance

DBD : Demam Berdarah Dengue

DEN : Serotype dari virus dengue

DHF : Dengue Haemorrhagic Fever

gr : gram

ITD : Institute of Tropical Disease

LC50 : Median Lethal Concentration

LC90 : Lethal Concentration 90%

ltr : liter

LSD : Least Significant Differences

ml : mililiter

PSN : Pemberantasan Sarang Nyamuk

R1 : Replikasi pertamaR2 : Replikasi kedua

R3 : Replikasi ketiga

SPSS : Statistical Package for the Social Science

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

16/82

xiv

ABSTRACT

EFFECT OF RED FRANGIPANI LEAF (Plumeria rub ra L.) AGAINST

DEATH OF Aedes aegypti L THIRD INSTAR LARVA


Background: Dengue hemorrhagic fever (DHF) are found in the tropicsand sub-tropics. DHF is caused by the infection of dengue virus which istransmitted to humans through the bite of an infected mosquito. Aedes aegypti is a vector of dengue. In Indonesia Dengue is one of the majorhealth problems. Mosquito eradication efforts, eradication of the larvaeand the use of insecticides to combat the dengue vector has been done

long ago. But, the use of insecticides that are not targeted result in theemergence of resistance in the mosquito, and is harmful to living thingsaround it. Therefore, research is needed to explore the potential of naturallarvicidal around us.Objective: This study is aimed to verify the effect of natural larvicidaleffect contained in red frangipani leaves in the form of juice to the death ofthe third instar larvae of Aedes aegypti .Method: The design of this study is pure experimental research designwith "Post Test Only Control Group Design". Samples of third instar larvaeof Aedes aegypti to be used are obtained from the laboratory ofEntomology ITD (Institute of Tropical Disease), Surabaya. The researchsample must meet the criteria for inclusion and exclusion criteria. Thisstudy uses eight treatment groups and two control groups with threerepetitions. The sample size of each group are as many as 10 larvae. Dataanalysis was done with Shapiro-Wilk normality test (p = 0.000). Thenproceeding with Kruskal Wallis test (sig = 0.001, so p

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

17/82

xv

ABSTRAK





Latar belakang: Demam berdarah dengue (DBD) banyak ditemukan didaerah tropis dan sub-tropis. DBD disebabkan oleh infeksi virus dengueyang ditularkan ke manusia melalui gigitan nyamuk yang terinfeksi. Aedesaegypti merupakan salah satu vektor DBD. Di Indonesia DBD merupakan

salah satu masalah kesehatan yang utama. Upaya pemberantasan sarangnyamuk, pemberantasan larva dan penggunaan insektisida untukmemberantas vektor DBD sudah dilakukan sejak dulu. Tetapi penggunaaninsektisida yang tidak tepat sasaran berakibat munculnya resistensi padanyamuk, serta berbahaya bagi makhluk hidup yang ada disekitarnya. Olehsebab itu perlu dilakukan penelitian untuk menggali potensi larvasidaalami di sekitar kita.Tujuan: Penelitian ini bertujuan untuk membuktikan adanya pengaruhefek larvasida alami yang terdapat dalam daun kamboja merah dalambentuk air perasan terhadap kematian larva instar III Aedes aegypti. Metode: Rancangan penelitian ini merupakan penelitian eksperimental

murni dengan rancangan “Post Test Only Control Group Design”. Sampellarva Aedes aegypti instar III yang akan digunakan diperoleh darilaboratorium Entomologi ITD (Institute of Tropical Disease), Surabaya.Sampel penelitian harus memenuhi kriteria inklusi dan kriteria eksklusi.Penelitian ini menggunakan 8 kelompok perlakuan dan 2 kelompok kontroldengan 3 kali pengulangan. Besar sampel masing-masing kelompoksebanyak 10 ekor larva. Analisa data dilakukan dengan uji normalitasSaphiro-Wilk (p=0,000). Kemudian dilanjutkan dengan uji Kruskal Wallis(sig=0,001, sehingga p

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

18/82

1

BAB 1PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang

Penyakit Demam Berdarah Dengue atau yang sering disebut DBD

sudah menjadi masalah yang mendunia sejak tahun 1950, dan bersifat

endemik di Puerto Rico, Amerika Latin, Asia Tenggara dan pulau-pulau di

daerah Pasifik (CDC, 2013). Demam Berdarah Dengue (DBD) banyak

ditemukan di daerah tropis dan sub-tropis. Data dari seluruh dunia

menunjukkan bahwa Asia menempati urutan pertama dalam jumlah

penderita DBD setiap tahunnya. Sementara itu, terhitung sejak tahun 1968

hingga tahun 2009, World Health Organization (WHO) mencatat bahwa

negara Indonesia sebagai negara dengan kasus DBD tertinggi di Asia

Tenggara (Kemenkes RI, 2010).

Penyakit Demam Berdarah Dengue (DBD) masih merupakan salah

satu masalah kesehatan masyarakat yang utama di Indonesia. Jumlah

penderita dan luas daerah penyebarannya semakin bertambah seiring

dengan meningkatnya mobilitas dan kepadatan penduduk. Infeksi virus

dengue sendiri sebenarnya telah ada di Indonesia sejak abad ke – 18, dan

pada saat itu dikenal sebagai penyakit dengan sebutan demam lima hari

dan kadang juga disebut sebagai demam sendi. Hal tersebut dikarenakan

demam yang terjadi dan menghilang dalam 5 hari, disertai rasa nyeri pada

sendi, otot, dan kepala. Tetapi sejak tahun 1952 infeksi virus dengue

menimbulkan penyakit dengan manifestasi klinis yang berat, yaitu DBD

yang ditemukan di Manila, Filipina. Penyakit tersebut kemudian menyebar

ke negara lain seperti Thailand, Vietnam, Malaysia dan Indonesia. Pada

tahun 1968 DBD dilaporkan di Surabaya dan Jakarta dengan jumlah

kematian yang sangat tinggi (Depkes, 2007).

DBD sendiri ditularkan ke manusia melalui gigitan nyamuk Aedes

aegypti yang terinfeksi oleh virus Dengue. Virus Dengue yang merupakan

penyebab Demam Dengue (DD), Demam Berdarah Dengue (DBD) dan

Dengue Shock Syndrome (DSS) adalah virus single-standed RNA

termasuk dalam kelompok B Arthropod Virus (Arbovirosis) yang sekarang

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

19/82

2

dikenal sebagai genus Flavivirus, famili Flaviviridae, dan memiliki 4 jenis

serotipe, yaitu: DEN-1, DEN-2, DEN-3, DEN-4 Dari keempat serotipe

tersebut yang paling sering menyebabkan kasus-kasus berat dan

menyebabkan kematian adalah serotipe DEN-3. (Gubler, 1995; Kemenkes

RI, 2010; WHO, 2009).

Nyamuk betina mendapat virus waktu menggigit manusia yang

telah menderita viremia. Nyamuk-nyamuk tersebut menjadi infektif setelah

8-14 hari (masa inkubasi ekstrinsik). Pada manusia, penyakit klinik dimulai

pada 2-15 hari setelah gigitan nyamuk infektif. Sekali nyamuk menjadi

infektif, nyamuk mungkin tetap infektif selama sisa hidupnya (1-3 bulan

atau lebih). Virus tersebut tidak diturunkan dari satu generasi nyamuk ke

generasi berikutnya. Di daerah tropis, di mana nyamuk tetap ada

sepanjang tahun, penyakit dapat dipertahankan terus (Suhendro, 2007;

Widoyono 2008).

Seperti kita ketahui, bahwa upaya pengendalian dan

pemberantasan terhadap vektor demam berdarah telah banyak dilakukan

di berbagai daerah. Selain dengan menerapkan usaha pemberantasan

sarang nyamuk (PSN), juga dilakukan fogging untuk memutus mata rantaipenularan penyakit DBD. Fogging dimaksudkan sebagai upaya

membasmi nyamuk Aedes aegypti dewasa yang merupakan vektor

penularan DBD. Di pasaran, saat ini, salah satu jenis insektisida yang

digunakan untuk memberantas vektor demam berdarah dengue adalah

malathion (Indonesian Public Health, 2014; Sukana 1993).

Namun penggunaan insektisida (untuk memberantas nyamuk

Aedes aegypti ) yang kurang terkendali akan berakibat terjadinya resistensipada nyamuk yang disebabkan karena terlalu banyaknya penggunaan

pestisida sintetis (Kemkes RI, 2010; Rawani, et al ; 2012). Menurut World

Health Organization (WHO), pengertian resistensi adalah berkembangnya

kemampuan toleransi suatu spesies serangga terhadap dosis toksik

insektisida yang mematikan sebagian besar populasi. Secara prinsip

mekanisme resistensi ini akan mencegah insektisida berikatan dengan titik

targetnya atau tubuh serangga menjadi mampu untuk mengurai bahan

http://www.indonesian-publichealth.com/2014/12/pedoman-pengendalian-demam-chikungunya.htmlhttp://www.indonesian-publichealth.com/2014/02/sanitasi-lingkungan-dan-dbd.htmlhttp://www.indonesian-publichealth.com/2014/12/pedoman-teknis-pemeriksaan-kesehatan-jemaah-haji.htmlhttp://www.indonesian-publichealth.com/2015/02/respon-imun-vaksin.htmlhttp://www.indonesian-publichealth.com/2015/02/respon-imun-vaksin.htmlhttp://www.indonesian-publichealth.com/2014/12/pedoman-teknis-pemeriksaan-kesehatan-jemaah-haji.htmlhttp://www.indonesian-publichealth.com/2014/02/sanitasi-lingkungan-dan-dbd.htmlhttp://www.indonesian-publichealth.com/2014/12/pedoman-pengendalian-demam-chikungunya.html

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

20/82

3

aktif insektisida sebelum sampai pada titik sasaran. Sedangkan jenis atau

tingkatan resistensi itu sendiri meliputi tahap rentan, toleran baru

kemudian tahap resisten (Indonesian Public Health, 2014; WHO, 2009).

Sampai sekarang tidak ada terapi anti virus atau vaksin untuk DBD

yang tersedia. Pencegahan penyebaran yang paling efektif dan dapat

dilakukan adalah dengan kontrol jumlah vektor, hal tersebut dapat

dilakukan melalui penggunaan insektisida dan membuang genangan air

yang dijadikan tempat perkembangbiakan nyamuk Aedes aegypti

(Kemenkes RI, 2011). Di Indonesia sendiri Pengendalian vektor DBD di

daerah endemis tidak tepat sasaran, tidak berkesinambungan dan belum

mampu memutus rantai penularan. Hal ini disebabkan metode yang

diterapkan belum mengacu kepada data/informasi tentang vektor,

disamping itu masih mengandalkan kepada penggunaan insektisida

dengan cara penyemprotan dan larvasidasi. (Kemkes RI, 2010).

Kamboja merah biasanya ditanam sebagai tanaman hias di

pekarangan, taman, dan umumnya di daerah pekuburan. Kamboja sangat

populer di Pulau Bali karena ditanam di hampir setiap pura serta sudut

kampung, dan memiliki fungsi penting dalam kebudayaan setempat.Kemboja dapat diperbanyak dengan mudah, melalui stek batang,

cangkok. Daun dan batangnya banyak mengandung fulvoplumierin. Daun,

getah dan kulit akarnya mengandung flavonoida dan polifenol. Serta

daunnya mengandung alkaloida. Kandungan minyak menguapnya terdiri

dari geraniol, sitronellol, linallol, farnesol dan fenetilalkohol (AgroMedia,

2008; Depkes, 2015).

Berdasarkan latar belakang tersebut maka peneliti ingin melakukanpencegahan awal dari stadium larva Aedes aegypti L instar III sehingga

peneliti akan meneliti apakah penggunaan air perasan alami dari tanaman

seperti Kamboja Merah dapat bersifat larvasidal.

1.2 Rumusan Masalah

Berdasarkan latar belakang di atas, maka dapat disusun rumusan

masalah berikut: Apakah air perasan daun Kamboja Merah (Plumeria

rubra L) dapat bersifat larvasidal bagi larva Aedes aegypti L instar III?

https://id.wikipedia.org/wiki/Pulau_Balihttps://id.wikipedia.org/wiki/Purahttps://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Stek&action=edit&redlink=1https://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Stek&action=edit&redlink=1https://id.wikipedia.org/wiki/Purahttps://id.wikipedia.org/wiki/Pulau_Bali

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

21/82

4

1.3 Tujuan Penelitian

1.3.1 Tujuan umum

Membuktikan daya larvasida air perasan daun Kamboja Merah

(Plumeria rubra L) terhadap larva Aedes aegypti L instar III.

1.3.2 Tujuan khusus

a. Untuk membuktikan air perasan daun Kamboja Merah (Plumeria

rubra L) mempunyai daya larvasida terhadap larva Aedes

aegypti L instar III dalam waktu 24 jam.

b. Untuk mengetahui konsentrasi minimal dari air perasan daun

Kamboja Merah (Plumeria rubra L) yang mempunyai daya

larvasida terhadap larva Aedes aegypti L instar III.

1.4 Manfaat Penelitian

1.4.1 Manfaat teoritis

a. Bagi masyarakat

Hasil penelitian ini dapat menambah wawasan masyarakat

dalam meminimalkan angka kejadian DBD dengan

menggunakan larvasida alternatif yang alamiah.

b. Bagi peneliti lainHasil penelitian ini dapat digunakan sebagai dasar teori untuk

penelitian lebih lanjut mengenai efek larvasidal dari air

perasan daun Kamboja merah.

c. Bagi universitas

Hasil penelitian ini dapat dipakai sebagai informasi dan

referensi di Perpustakaan Fakultas Kedokteran Universitas

Hang Tuah Surabaya.1.4.2 Manfaat praktis

Apabila penelitian ini berhasil maka diharapkan hasil dari

penelitian ini dapat digunakan oleh masyarakat luas sebagai pilihan

larvasida.

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

22/82

5

BAB 2

TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Tinjauan Tentang Nyamuk Aedes aegypt i

Nyamuk Aedes aegypti merupakan salah satu organisme yang

perlu diwaspadai karena merupakan vektor dari virus dengue yang

menyebabkan DBD. Nyamuk tersebut harus jenis nyamuk belang-belang

hitam-putih Aedes, dan bukan oleh jenis nyamuk lainnya. Nyamuk rumah,

nyamuk malaria, dan jenis nyamuk lainnya tidak dapat membawa virus

dengue, sehingga bukan nyamuk penularnya (Nadesul, 2007;

Yuswulandary, 2008).

Agar dapat mengatasi dan mencegah penyakit DBD, salah satu hal

yang dapat kita lakukan adalah dengan merusak siklus hidup dari vektor

DBD, yaitu nyamuk Aedes aegypti (Kemkes, 2010; WHO, 2009). Oleh

karena itu, kita perlu mengetahui taksonomi, morfologi, siklus hidup,

habitat, dan sifat atau kebiasaan hidup serta penanggulangan terhadap

vektor.

2.1.1 TaksonomiMenurut Mullen dan Durden (2002), kedudukan nyamuk Aedes

aegypti dalam klasifikasi hewan adalah sebagai berikut:

Kingdom : Animalia

Filum : Arthropoda

Kelas : Insekta

Ordo : Diptera

Sub Ordo : NemaroceraInfra Ordo : Culicomorpha

Superfamili : Culicoidea

Famili : Culcidae

Sub Famili : Culcinae

Genus : Aedes

Spesies : Aedes aegypti

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

23/82

6

2.1.2 Morfologi nyamuk Aedes aegypt i

Nyamuk Aedes aegypti jantan dan betina tidak memiliki perbedaan

nyata dalam hal ukuran. Biasanya, nyamuk jantan sendiri memiliki tubuh

lebih kecil daripada nyamuk betina, dan terdapat rambut-rambut yang

lebih tebal pada antena nyamuk jantan. Kedua ciri tersebut dapat diamati

dengan mata telanjang (Ginanjar, 2008; Sianipar, 2010).

Nyamuk Aedes aegypti betina dewasa memiliki tubuh berwarna

hitam kecoklatan. Ukuran tubuh nyamuk Aedes aegypti betina berkisar

antara 3-4 cm, dengan mengabaikan panjang kakinya. Tubuh dan

tungkainya ditutupi oleh sisik dengan garis-garis putih keperakan. Di

bagian punggung (dorsal) tubuhnya tampak dua garis melengkung vertikal

di bagian kiri dan kanan yang menjadi ciri khas dari nyamuk spesies ini

(Ginanjar, 2008; Hamzah, 2010).

Tubuh nyamuk Aedes aegypti terdiri dari 3 bagian utama yaitu

kepala, thorax , dan abdomen. Ketiga bagian tersebut memiliki batas-batas

yang jelas yang tampak memisahkan satu bagian dengan yang lainnya

(Bogitsh, 2013; Sianipar, 2010).

2.1.2.1 KepalaKepala nyamuk Aedes aegypti mempunyai sepasang antena, pada

nyamuk jantan antena tersebut berbulu panjang dan lebat disebut tipe

pulmose, sedangkan pada nyamuk betina, antenanya berbulu pendek dan

jarang/tidak lebat disebut tipe pilose. Antena nyamuk tersebut terdiri dari

15 segmen. Mulutnya mempunyai alat penusuk yang disebut proboscis,

yang kecil dan panjang. Proboscis pada nyamuk Aedes aegypti betina dan

jantan digunakan untuk menusuk ( piercing ), dan juga untuk menghisapdarah manusia. Pada daerah kepala nyamuk Aedes aegypti juga

didapatkan mata majemuk. (Kemenkes RI, 2011; Soegijanto et al ; 2006).

2.1.2.2 Thorax

Segmen thorax ini terdiri atas tiga bagian yaitu bagian prothorax

yang terdapat di bagian anterior, mesothorax yang terdapat di bagian

tengah dan metathorax yang terdapat di bagian posterior. Mesothorax

tumbuh menjadi besar dan menonjol. Sebagian besar thorax yang tampak

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

24/82

7

(mesothorax ), diliputi bulu-bulu halus, prothorax dan metathorax , masing-

masing keluar satu pasang sayap. Pada ordo Diptera hanya terdapat satu

pasang sayap, yang keluar dari sisi dorsolateral mesothorax , sayap-sayap

yang terdapat pada bagian metathorax telah mengalami perubahan

bentuk dan fungsinya menjadi alat keseimbangan yang disebut halter .

Sayap nyamuk berpangkal pada mesothorax , dengan ciri khas tipis,

transparan (berbentuk membranous, dilengkapi vena sayap (wing vein)

yang terdiri atas delapan vena sayap. Pada family culicidae, terdapat

bentukan di perbatasan mesothorax dan metathorax disebut scutellum.

Setiap ruas dada (thorax ) akan keluar pula sepasang kaki dan terdapat

tiga pasang kaki sehingga berjumlah enam kaki. Pada ruas-ruas kaki ada

gelang-gelang putih, tetapi pada bagian tibia tidak ada gelang putih.

Gambaran punggung nyamuk (mesontum) Aedes aegypti berupa

sepasang garis lengkung putih (bentuk lyre) yang masing-masing garis

lengkung terdapat pada sisi lateral dan dua garis sejajar di mediannya.

(Kemenkes RI, 2011; Soegijanto, 2006).

2.1.2.3 Abdomen

Abdomen berbentuk silindris, memanjang, dan terdiri atas delapanruas. Dua ruas yang terakhir pada ujung posterior berubah menjadi alat

bantu kopulasi, berbentuk seperi capit. Alat bantu kopulasi tersebut pada

nyamuk betina adalah cerci (sepasang caudal cerci ), dan pada nyamuk

jantan adalah hypopygium. Waktu istirahat posisi nyamuk Aedes aegypti

ini tubuhnya sejajar dengan bidang permukaan yang dihinggapinya.

(Kemenkes RI, 2011; Soegijanto, 2006).

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

25/82

8

Gambar 2.1 Nyamuk Aedes aegypti (gambaran “lyre”)

(Sumber : Zettel, 2013)

2.1.3 Siklus hidup nyamuk Aedes aegypt i

Nyamuk Aedes aegypti melewati metamorfosis sempurna

(holometabole), yang terdiri dari stadium telur, stadium larva, stadium

pupa, dan stadium nyamuk dewasa.

Gambar 2.2 Siklus hidup Aedes aegypti

(Sumber : CDC, 2012)

2.1.3.1 Telur

Setelah menghisap darah, nyamuk betina dapat menghasilkan rata-

rata 100 sampai 200 telur. Telur biasanya diletakkan pada permukaan

yang basah, kontainer air, lubang pada pohon, dan sebagainya. Bentuk

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

26/82

9

telur nyamuk Aedes aegypti halus, panjang, bulat telur/ elips, dan

panjangnya sekitar 0,5 - 0,8 milimeter. Ketika pertama kali diletakkan, telur

akan tampak putih, tapi dalam beberapa menit akan berubah warna

menjadi hitam mengkilap. Pada daerah iklim tropis, telur akan menetas

menjadi jentik setelah dua hari, pada tempat yang sesui dengan kondisi

optimum yaitu didalam air dengan suhu 20-40oC. Sedangkan di iklim

dingin bisa berlangsung hingga satu minggu (Mangunjaya, 2006;

Soegijanto, 2006).

Gambar 2.3 Telur Aedes aegypti


2.1.3.2 Larva (Jentik)

Telur yang telah menetas akan menjadi larva atau sering disebut

jentik nyamuk. Larva dari kebanyakan nyamuk menggantungkan dirinya

pada permukaan air untuk mendapatkan oksigen dari udara (Andrew,

2013; Sembel, 2009).

Secara morfologis, larva dapat dibagi atas beberapa bagian, yaitu

kepala (cephal ), leher, dada (thorax ) dan perut (abdomen). Pada bagian

kepala terdapat sepasang mata majemuk, sepasang antena tanpa duri-

duri dan alat-alat mulut tipe pengunyah (chewing ). Bagian dada larva

Aedes aegypti berbentuk globular, dan tampak bulu-bulu simetris yang

muncul dari bagian lateralnya. Bagian perut dari larva Aedes aegypti

berbentuk panjang, silindris, dan pipih, serta memiliki 8 segmen. Pada

segmen ke-8 dari abdomen ini, terdapat gigi-gigi sisir (comb spines) yang

membentuk gerigi di bagian ventral. Selain itu, dapat ditemukan corong

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

27/82

10

pernapasan (respiratory siphon), berwarna hitam, memiliki gigi pecten di

lateralnya, juga spirakel pada ujung siphon yang berfungsi untuk

mengambil kebutuhan oksigen. Pada bagian anal terdapat anal gills atau

anal papilla yang bersifat transparan (Andrew, 2013; Sianipar, 2010).

Dalam pertumbuhan dan perkembangannya, larva mengalami 4

kali pergantian kulit dan larva yang terbentuk berturut-turut disebut larva

instar I (L1), larva instar II (L2), larva instar III (L3), dan larva instar IV (L4)

(Andrew, 2013; Depkes RI, 2003).

Perubahan instar larva dari instar I menjadi instar II berlangsung

dalam 2-3 hari, selanjutnya dari instar II ke instar III dalam waktu 2 hari,

dan perubahan dari instar III ke instar IV dalam waktu 2-3 hari. (Aradilla,

2009; Veriswan, 2006).

Secara spesifik perbedaan untuk identifikasi larva adalah sebagai

berikut.

1. Larva instar I, II, III, dan IV secara berurutan memiliki ukuran

sebesar 1-2 mm, 2,5-3,8 mm, 4-5 mm, dan 5-7 mm (Andrew, 2013;

Yuswulandary, 2008).

2. Larva instar I bentuk kepalanya triangular, sementara stadiumselanjutnya memiliki bentuk kepala globular dan lebih besar jika

dibandingkan stadium instar sebelumnya (Andrew, 2013). Pada

larva instar I, tubuhnya sangat kecil, warna transparan, panjang 1-2

mm, duri-duri (spinae) pada dada (thorax ) belum begitu jelas dan

corong pernapasan (siphon) belum menghitam (Christophers,1960;

Depkes RI, 2005).

3. Larva instar II bertambah besar, duri dada belum jelas, dan corongpernapasan sudah berwarna hitam. Larva instar II mengambil

oksigen dari udara, dengan menempatkan corong udara (siphon)

pada permukaan air seolah-olah badan larva berada pada posisi

membentuk sudut dengan suhu pemukaan air sekitar 30oC. Larva

instar II dalam bergerak tidak terlalu aktif (Christophers,1960;

Depkes RI, 2005).

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

28/82

11

4. Larva instar III lebih besar sedikit dari larva instar II dan lebih aktif

bergerak (Christophers,1960; Depkes RI, 2005).

5. Larva instar IV telah lengkap struktur morfologinya dan jelas. Tubuh

dapat dibagi jelas menjadi bagian kepala (cephal ), dada (thorax )

dan perut (abdomen). Larva ini tubuhnya langsing dan bergerak

sangat lincah, bersifat fototaksis negatif dan temperatur optimal

untuk perkembangan larva ini adalah 25oC-30

oC

(Christophers,1960; Depkes RI, 2005). Larva instar IV juga memiliki

warna kepala yang paling gelap jika dibandingkan dengan stadium

larva sebelumnya (Andrew, 2013; Mariaty, 2010).

Gambar 2.4 Larva Aedes aegypti


2.1.3.3 Pupa

Pupa nyamuk Aedes aegypti bentuk tubuhnya bengkok, ukuran

tubuh 2 mm dengan bagian kepala-dada (cephalothorax ) lebih besar

daripada bagian perutnya. Pada bagian perutnya melengkung, sehingga

tampak seperti tanda baca “koma”. Pada bagian punggung dada, terdapat

alat bernapas seperti terompet. Pada ruas perut ke-8 terdapat sepasang

alat pengayuh yang berguna untuk berenang. Saat pupa disentuh atau

terganggu oleh gelombang, mereka akan turun dan akan naik beberapa

saat kemudian. Pupa adalah bentuk yang tidak makan, tapi memiliki

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

29/82

12

gerakan yang lebih lincah bila dibandingkan larva. Waktu istirahat, posisi

pupa sejajar dengan permukaan air untuk persiapan munculnya nyamuk

dewasa (Achmadi, 2011; Kemenkes RI, 2011; Soegijanto, 2006).

Gambar 2.5 Pupa Aedes aegypti


2.1.3.4 Nyamuk Dewasa

Pada prinsipnya, nyamuk termasuk ke dalam kelas insecta dengan

ciri-ciri khas: badan dan kaki serangga beruas-ruas. Tubuh serangga

terdiri dari 3 bagian utama yaitu cephal (kepala), thorax (dada), abdomen

(perut). Ketiga bagian tubuh tersebut mempunyai batas-batas yang jelas

yang memisahkan satu bagian dan bagian lainnya, bentuk tubuh bilateral

simetris, sebelah luar tubuh dilapisi oleh chitin (Djakaria, 1998, UNSRAT,

2010). Nyamuk Aedes aegypti dewasa berukuran lebih kecil jika

dibandingkan dengan rata-rata nyamuk yang lainnya. Nyamuk ini

mempunyai warna dasar hitam dengan bintik-bintik putih pada bagian

badan, kaki, dan sayapnya. Di kenal dari morfologinya yang khas sebagai

nyamuk yang memiliki gambaran lira (lyre form) yang putih pada

punggungnya. Probosis bersisik hitam, kaki pendek dengan ujung hitam

bersisik putih perak. Oksiput bersisik lebar, berwarna putih terletak

memanjang. Pada bagian thorax, terdapat sepasang kaki depan,

sepasang kaki tengah, sepasang kaki belakang. Tibia berwarna hitam

seluruhnya. Tarsi belakang berlingkaran putih pada segmen basal ke-1

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

30/82

13

sampai ke-4 dan ke-5 berwarna putih. Sayap bersisik hitam dan

mempunyai ukuran selebar 2,5-3 mm. Nyamuk dewasa akan beristirahat

singkat di atas pemukaan air agar sayap-sayap dan badan mereka kering

dan menguat sebelum akhirnya dapat terbang. Perbandingan jumlah

munculnya nyamuk betina maupun jantan adalah 1:1. Nyamuk jantan

muncul lebih cepat 1 hari daripada nyamuk betina dan menetap dekat

dengan tempat perkembangbiakan, makan dari sari buah tumbuhan dan

kawin dengan nyamuk betina yang muncul kemudian. Setelah

kemunculan pertama, nyamuk betina makan sari buah tumbuhan untuk

mengisi tenaga, kemudian kawin dan menghisap darah manusia. Umur

nyamuk betinanya dapat mencapai 2-3 bulan (Achmadi, 2011; Sayono,

2008).

2.1.4 Perilaku nyamuk Aedes aegypt i betina dewasa

Setelah kawin, nyamuk betina Aedes aegypti memerlukan darah

untuk bertelur. Nyamuk betina menggigit dan menghisap darah manusia

setiap 2-3 hari sekali. Menghisap darah pada pagi hari sampai sore hari,

dan lebih banyak di siang hari pada antara pukul 08.00-12.00 dan pukul

15.00-17.00. untuk mendapatkan darah cukup, nyamuk betina sringmenggigit lebih dari satu orang dalam satu siklus gonotropik, untuk

memenuhi lambungnya dengan darah. Dengan demikian nyamuk sangat

efektif sebagai penylar penyakit. Jarak terbang nyamuk sekitar 100 meter.

Umur nyamuk betina dapat mencapai sekitar 1 bulan. Waktu mencari

makanan, selain terdorong oleh rasa lapar, nyamuk Aedes aegypti juga

dipengaruhi oleh beberapa faktor, yaitu bau yang dipancarkan oleh inang,

suhu, kelembapan, kadar CO2 dan warna (Kemenkes RI, 2011;Soegijanto, 2006).

Setelah kenyang menghisap darah, nyamuk betina perlu istirahat

sekitar 2-3 hari untuk mematangkan telur. Nyamuk Aedes aegypti hidup

domestik, lebih menyukai tinggal di dalam rumah daripada di luar rumah.

Tempat istirahat yang disukai adalah berbagai tempat yang lembab dan

kurang terang, seperti kamar mandi, dapur, dan WC. Di dalam rumah

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

31/82

14

seperti baju yang digantung, kelambu, dan tirai. Di luar rumah seperti

tanaman hias di halaman rumah (Kemenkes RI, 2011; Soegijanto, 2006).

Aedes aegypti bersifat diurnal atau aktif pada pagi hingga sampai

sore hari. Penularan penyakit hanya oleh nyamuk betina karena hanya

nyamuk betina yang menghisap darah. Hal itu dilakukannya untuk

memperolah asupan protein yang diperlukannya untuk memproduksi telur.

Sedangkan nyamuk jantan tidak membutuhkan darah dan memperoleh

energi dari nectar bunga (Ginanjar, 2008; Sianipar, 2010).

Di Indonesia sendiri, nyamuk Aedes aegypti umumnya mempunyai

habitat di lingkunyan perumahan, tempat terdapat banyak penampungan

air bersih dalam bak mandi ataupun tempayan yang menjadi sarang

berkembang biaknya (Ginanjar, 2008; Tampi 2013).

Selain itu, di dalam rumah juga banyak terdapat baju yang

tergantung atau lipatan gorden. Di tempat-tempat itulah biasanya nyamuk-

nyamuk Aedes aegypti betina dewasa bersembunyi (Ginanjar, 2008;

Purnama, 2012).

Nyamuk betina menghisap darah menusia. Tiga hari sesudahnya

sanggup bertelur 100 butir. Waktu yang diperlukan untuk menyelesaikanperkembangan telur mulai dari nyamuk menghisap darah sampai telur

dikeluarkan biasanya bervariasi antara 3-4 hari. Jangka waktu tersebut

disebut gonotropik. Nyamuk Aedes aegypti meletakkan telurnya

(oviposition) di tempat yang airnya jernih. Telur Aedes aegypti tahan

kekeringan dan dapat bertahan hingga satu bulan dalam keadaan kering.

Jika terendam air, telur kering dapat menetas menjadi larva. Sebaliknya,

larva sangat membutuhkan air yang cukup untuk perkembangannya.Sekitar 2-3 hari telur tersebut menetas menjadi larva/jentik nyamuk

(hatching). Terdapat empat tahapan dalam perkembangan larva yang

disebut instar. Perkembangan dari instar I sampai instar IV membutuhkan

waktu sekitar lima hari. Setelah mencapai instar IV, larva berubah menjadi

pupa di mana pupa memasuki masa dorman. Setelah 6-8 hari, larva

Aedes aegypti berubah menjadi pupa (pupation). Pupa bertahan selama

dua hari sebelum akhirnya menjadi nyamuk dewasa yang keluar dari

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

32/82

15

pupa. Sekitar 1-2 hari, pupa menjadi nyamuk dewasa Aedes aegypti

(emergence). Perkembangan dari telur menjadi nyamuk dewasa

membutuhkan waktu 7 hingga 8 hari, namun dapat lebih lama jika kondisi

lingkungan tidak mendukung (Depkes, 2007; Womack, 1993).

2.1.5 Tempat pembiakan nyamuk Aedes aegypt i .

Tempat pembiakan nyamuk Aedes aegypti terdapat di dalam

rumah (indoor) maupun di luar rumah (outdoor) dan biasanya berupa

tempat penampungan air (TPA). Tempat pembiakan yang ada di dalam

rumah yang utama adalah bak air mandi, bak air, tandon air minum,

tempayan, gentong tanah liat, gentong plastikm ember, drum, vas

tanaman hias, perangkap semut, dan lain-lain. Sedangkan tempat

pembiakan yang ada di luar rumah (halaman): drum, kaleng bekas, botol

bekas, ban bekas, pot bekas, pot tanaman hias yang terisi oleh air hujan,

dan lain-lain (Depkes RI, 2005; Soegijanto, 2006).

Gambar 2.6 Tempat-tempat perkembangbiakan Aedes aegypti

(Sumber : Sardar, 2011)

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

33/82

16

2.1.6 Pemberantasan dan pencegahan

1. Pemberantasan

Pemberantasan nyamuk Aedes aegypti dapat dilakukan terhadap

nyamuk dewasa ataupun jentiknya.

a. Pemberantasan nyamuk dewasa

Pemberantasan nyamuk dewasa dilakukan dengan cara

penyemprotan (pengasapan=fogging ) dengan insektisida, misalnya:

Organofosfat misalnya malation, fenitrotion

Piretroid sintetik, misalnya lamda shalotrin, permetrin

Karbamat

b. Pemberantasan jentik

Pemberantasan jentik Aedes aegypti yang dikenal dengan istilah

pemberantasan sarang nyamuk (PSN), dilakukan dengan cara:

i. Kimia

Pemberantasan larva dilakukan dengan

mengggunakan larvasida yang dikenal dengan

istilah abatisasi. Larvasida yang biasa digunakan

contohnya adalah temephos, dengan formulasi

granul (sand granules) yang ditaburkan dalam air

di tempat perindukannya.

ii. Biologi

Dengan menggunakan ikan pemakan jentik

(contoh: ikan kepala timah, ikan guppy).

iii. Fisik / mekanik

Cara ini dikenal dengan kegiatan 3M (menguras,

menutup, mengubur) yaitu dengan cara menguras

bak mandi, bak WC, menutup tempat

penampungan air rumah tangga (tempayan, drum,

dan lainnya) serta mengubur atau memusnahkan

barang bekas (kaleng, ban, dan lain-lain).

Pengurasan TPA (Tempat Penampungan Air)

perlu dilakukan secara teratur sekurang-kurangnya

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

34/82

17

seminggu sekali agar nyamuk tidak dapat

berkembang biak di tempat tersebut.

Menabur bubuk pembasmi jentik (larvasida)

(Sianipar, 2010; Soegijanto, 2006).

2. Pencegahan

Pencegahan dapa dilakukan dengan berbagai cara:

a. Perlindungan perseorangan untuk mencegah gigitan Aedes

aegypti dengan memasang kawat kasa di lubang-lubang

angin di atas jendela atau pintu, memakai kelambu di sekitar

tempat tidur, penyemprotan dinding rumah dengan

insektisida dan penggunaan repellent pada saat di luar

rumah.

b. Pembuangan atau mengubur benda-benda di halaman

rumah yang dapat menampung air hujan seperti kaleng,

botol, ban mobil dan tempat lain yang berpotensi menjadi

tempat pembiakan (breeding site) Aedes aegypti.

c. Mengganti atau membersihkan tempat penampungan air

secara teratur tiap minggu sekali, pot bunga, tempayan, dan

bak mandi.

d. Pendidikan kesehatan masyarakat melalui ceramah agar

masyarakat dapat memelihara kebersihan lingkungan dan

turut serta individu dalam memberantas tempat-tempat

pembiakan Aedes aegypti di sekitar rumah (Hoedojo, 2011;

Nurcahyo, 1996; Nurcahyo, 2007).

2.2 Tinjauan tentang Kamboja Merah (Plumeria rub ra L)Tanaman yang memiliki nama latin Plumeria ini dinamakan sesuai

dengan nama penemunya, yaitu Charles Plumier yang merupakan botanis asal

Perancis. Terdapat beberapa macam spesies, diantaranya Plumeria alba,

Plumeria obtusa, Plumeria pudica, Plumeria rubra, Plumeria stenopetala,

Plumeria inodora, Plumeria stenophylla. Selain itu juga terdapat beberapa jenis

baru yang merupakan hasil persilangan seperti Rubra Hybrid , Rubra Tricolor ,

Singepore Hybrid yang memiliki warna-warna yang lebih bervariasi (Don, 2002;

Burrows, 2008).

https://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Plumeria_alba&action=edit&redlink=1https://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Plumeria_alba&action=edit&redlink=1https://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Plumeria_obtusa&action=edit&redlink=1https://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Plumeria_obtusa&action=edit&redlink=1https://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Plumeria_pudica&action=edit&redlink=1https://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Plumeria_pudica&action=edit&redlink=1https://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Plumeria_rubra&action=edit&redlink=1https://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Plumeria_rubra&action=edit&redlink=1https://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Plumeria_stenopetala&action=edit&redlink=1https://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Plumeria_stenopetala&action=edit&redlink=1https://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Plumeria_inodora&action=edit&redlink=1https://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Plumeria_inodora&action=edit&redlink=1https://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Plumeria_stenophylla&action=edit&redlink=1https://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Plumeria_stenophylla&action=edit&redlink=1https://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Plumeria_stenophylla&action=edit&redlink=1https://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Plumeria_inodora&action=edit&redlink=1https://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Plumeria_stenopetala&action=edit&redlink=1https://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Plumeria_rubra&action=edit&redlink=1https://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Plumeria_pudica&action=edit&redlink=1https://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Plumeria_obtusa&action=edit&redlink=1https://id.wikipedia.org/w/index.php?title=Plumeria_alba&action=edit&redlink=1

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

35/82

18

2.2.1 Taksonomi

Kedudukan Kamboja Merah (Plumeria rubra L) di dalam taksonomi

adalah sebagai berikut :

Kingdom : Plantae

Divisi : Spermatophyta

Sub Divisi : Angiospermae

Class : Dicotyledoneae

Ordo : Apocynales

Family : Apocynaceae

Genus : Plumeria

Species : Plumeria rubra L

2.2.2 Nama lain Plumeria rubra L

Brazil – Jasmim-De-Caiena

Danish – Mexican Frangipani

Indonesia – Kamboja

Inggris – Frangipani, Graveyard Tree, Hawaiian Lei Flower, Temple

Tree, Tree of Life

Italian – Frangipane, PomeliaJawa – Semboja, Kembang Jebun

Hawaii – Pumeli, melia

Laos – Champa, Dok Champa

Malaysia – Kemboja, Bunga Kemboja

Mexico – Caxtaxanat, Flor De Mayo

Philippines - Kalachuche

Sri Lanka – AraliyaTahiti – Tipanier

Thailand – Champa Lao

2.2.3 Morfologi Plumeria rub ra L

1. Batang

Kamboja merah memiliki batang yang berkayu, tegak serta dapat

mencapai tinggi ± 6 m. Batang utamanya besar, berbentuk bulat,

serta memiliki banyak percabangan. Cabang mudanya cenderung

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

36/82

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

37/82

20

Gambar 2.7 Plumeria rubra L

(Sumber : Depkes, 2015)

2.2.4 Asal dan Distribusi Plumeria rub ra L

Plumeria rubra merupakan tanaman local dari Mexico, Amerika

Tengah dan Venezuela. Tanaman tersebut sudah tersebar keseluruh

daerah tropis di dunia, terutama di Hawaii, di mana tanaman tersebut

dapat tumbuh dengan subur (GRIN, 2015; Lim, 2014).

Tanaman tersebut dapat tumbuh dengan subur pada daerah tropis

dan subtropis dengan suhu yang hangat sekitar 20-32 ˚C serta curah

hujan tahunan 1000-2000 mm. Tanaman ini juga tahan terhadap musim

kemarau, tetapi akan menggugurkan daunnya pada musim kemarau yang

berkepanjangan. Di daerah subtropis tanaman ini harus sering disiram

saat musim panas, sedangkan saat musim dingin tidak perlu sering

disiram. Frangipani dapat tumbuh dengan baik di tanah yang subur dan

mudah menyerap air, serta mendapat sinar matahari penuh. Tanaman ini

juga bisa menjadi dorman dan bertahan pada suhu rendah meskipun tidak

dalam waktu yang lama. (Lim, 2014; Pali Plumies, 2015).

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

38/82

21

2.2.5 Kandungan Plumeria rub ra L

Pohon kamboja merah banyak mengandung getah. Getah tersebut

mengandung senyawa kimia seperti senyawa sejenis karet (damar dan

kauteuk) dan senyawa triterpenoid (amyrin dan lupeol). Kulit batangnya

banyak mengandung plumierid (zat pahit yang beracun). Daun dan

batangnya banyak mengandung fulvoplumierin. Daun, getah dan kulit akar

Plumeria rubra mengandung flavonoida dan polifenol. selain itu daunnya

juga mengandung alkaloida. Kandungan minyak menguapnya terdiri dari

geraniol, sitronellol, linallol, farnesol dan fenetilalkohol (AgroMedia, 2008;

Depkes, 2015; Permadi, 2006).

Pohon kamboja merah juga memiliki efek antiviral, antiinflamatori,

antimikrobial, dan antimutagenic , serta juga bisa digunakan sebagai obat

anestesi (Lim, 2014; Oliver, 1986).

Secara umum bahan aktif yang ditemukan dalam tanaman adalah

hasil metabolit sekunder dari tanaman tersebut yang digunakan oleh

tanaman tersebut untuk melindungi dari insekta. Ketika insekta atau

herbivora memakan tanaman tersebut, metabolit akan masuk ke dalam

tubuh herbivora atau insekta dan berefek pada berbagai level molekuler(Ghosh, 2011; Susanto, 2014).

Beberapa efek fisiologis yang terjadi dalam tubuh insekta tersebut

antara lain, abnormalitas pada sistem saraf (seperti sintesis

neurotransmitter , release, dan re-uptake). Terdapat berbagai macam

gangguan seperti inhibisi asetilkolinesterase, inhibisi respirasi seluler,

blokade kanal kalsium, toxic poisoning, serta mengganggu sistem

kolinergik. Hal yang paling penting adalah inhibisi asetilkolinesterase(AChE) yang berfungsi untuk menghentikan impuls syaraf dengan cara

memecah asetilkolin menjadi asetil dan kolin. Mekanisme inilah yang pada

akhirnya mematikan insekta (Ghosh, 2011; Susanto, 2014).

2.3 Tinjauan Tentang Kamboja Merah (Plumeria rubra L )

Kamboja merah sudah terbukti pada penelitian sebelumnya dapat

berfungsi sebagai larvasida. Hal tersebut dikarenakan adanya

nanopartikel silver (AgNPs) yang disintesis dari getah kamboja merah

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

39/82

22

ditemukan bersifat toxic terhadap larva Aedes aegypti dan Anopheles

stephensi instar II dan instar IV. AgNPs ditemukan lebih bersifat toxic

terhadap larva nyamuk dibandingkan dengan ekstrak getah kamboja

merah. AgNPs juga tidak menunjukkan sifat toxic pada dosis dan

terhadap organisme yang umumnya berada di habitat dari Aedes

aegypti dan Anopheles stephensi , seperti salah satu spesies ikan Poecilia

reticulata (Lim, 2014; Patil, et al ; 2012).

Selain kamboja merah (Plumeria rubra L) yang akan digunakan

pada penelitian ini, sebenarnya masih banyak tanaman lain yang juga

memiliki efek sebagai larvasida alami. Karena diyakini bahwa salah satu

cara yang efektif untuk mengontrol jumlah nyamuk adalah dengan

menggunakan larvasida alami, sebab dianggap lebih murah dalam hal

biaya, lebih ramah lingkungan, dan lebih tidak berbahaya untuk kesehatan

manusia apabila dibandingkan dengan larvasida sintetis (Ghosh, 2011;

Susanto, 2014).

Spesies tanaman Bagian yangdigunakan

Spesies nyamuk yang menjaditarget

Artemisia annua Daun Anopheles stephensi

Acacia nilotica Daun Anopheles stephensi

Withanis somnifera Daun Anopheles stephensi

Aloe barbadensi Daun Anopheles stephensi

Jatropha curcas Daun Cx. Quinquefasciatus

Citrus aurantium Kulit buah Cx. Quinquefasciatus

Solanum xanthocarpum Akar Cx. Pipiens pallens

Eucalyptus globulus Biji, daun Culex pipiens

Thymus capitatus Daun cx. pipiens

Myrtus communis Bunga, daun Cx. Pipiens molestus

Argemone mexicana Daun, biji Cx. Quinquefasciatus

Piper nigrum Biji Cx. Pipiens

Ocimum basilicum Daun An. Stephensi, Cx.

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

40/82

23

Quinquefasciatus

Momordica charantia Buah An. stephensi, Cx.

quinquefasciatus, Ae.

Aegypti

Momordica charantia Daun Cx.

Quinquefasciatus

Kaempferia galanga Rhizom Cx. Quinquefasciatus

Khaya senegalensis Daun Cx. Annulirostris

Eucalyptus citridora Daun An. stephensi, Cx.


Aegypti

Solanum nigrum Buah kering An. culicifacies, An.

stephensi, Cx.


Aegypti

Ageratina adenophora Ranting Ae. aegypti, Cx.

Quinquefasciatus

Aloe barbadensis Daun An. Stephensi

Plumbago zeylanica Akar An. Gambiae

Nyctanthes arbotristis Bunga Cx. Quinquefasciatus

Aloe ngongensis Daun An. Gambiae

Citrus sinensis Kulit buah An. Subpictus

Atlantia monophylla Daun An. Stephensi

Chrysanthemum

Indicum

Daun Cx. Tritaeniorhynchus

Atlantia monophylla Daun Cx. Quinquefasciatus

Solanum villosum Daun An. Subpictus

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

41/82

24

Cestrum diurnum Daun An. Stephensi

Curcuma aromatica Rhizom Ae. Aegypti

Tridax procumbens Daun An. Subpictus

Feronia limonia Daun Cx. Quinquefasciatus, An.Stephensi, Ae. Aegypti

Tabel 2.1 Tanaman dengan Efek Larvasida

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

42/82

25

BAB 3

KERANGKA KONSEPTUAL DAN HIPOTESIS

3.1 Kerangka Konseptual

• Abate

Pemberantasan larva

Aedes aegypti L instar III

: Yang diteliti

: Yang tidak diteliti

• Air perasan daun kamboja merah

• Bakteri (Bacillusthuringiensis serotype H-14)

• Ikan pemakan jentik(Pachypanchax, Gambusiaaffinis)

• Pemberantasan sarangnyamuk (3M: Menguras,Menutup, Mengubur)

• Pengelolaan sampah padat

• Perbaikan desain Rumah

• Dibagi menjadi beberapakonsentrasi 20%, 30%, 40%,50%, 60%, 70%, 80% dan 90%(Susanto, 2014)

Flavonoid menghambat proses

makan serangga dan bersifat toksik

Alkaloid mendegradasi membran

sel dan mengganggu kerja saraf

Polifenol menghambat pencernaan

(stomach poisoning)

•

Rata-rata jumlah jentik nyamukdalam masing-masing wadah

Kematian

larva Aedes

aegypti

Bersifat larvasidal

Tidak ada

kematian larva

Aedes aegypti

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

43/82

26

3.1.1 Penjelasan kerangka konseptual

Pemberantasan larva Aedes aegypti dapat dilakukan melalui

beberapa cara, seperti metode mekanis, biologis dan kimiawi. Semua

metode tersebut bertujuan untuk memberantas larva Aedes aegypt i L

instar III. Pemberantasan larva nyamuk secara kimiawi biasanya dapat

digunakan bubuk abate yang dijual secara bebas di pasaran, atau bisa

juga menggunakan alternatif lain yaitu beberapa jenis tanaman yang

memiliki kandungan yang bersifat larvasidal (seperti Vachellia nilotica,

Solanum nigrum, Plumbago zeylanica, Artemisia annua), dalam penelitian

ini akan digunakan daun kamboja merah (Plumeria rubra L).

Kamboja merah akan diberikan dalam bentuk air perasan dengan

konsentrasi 20%, 30%, 40%, 50%, 60%, 70%, 80% dan 90%. Jadi pada

penelitian ini akan didapatkan 8 kelompok perlakuan dan 2 kelompok

kontrol (yaitu kontrol positif dan kontrol negatif), sehingga total terdapat 10

kelompok.

Selain mengetahui efek larvasida dari kamboja merah, penelitian ini

juga bertujuan untuk menentukan median lethal concentration (), atau

berapa konsentrasi yang dibutuhkan untuk mematikan 50% dari jumlah

larva Aedes aegypti L instar III pada satu kelompok dengan perlakuan

dalam waktu 24 jam.

3.2 Hipotesis Penelitian

H0: Tidak ada pengaruh pemberian air perasan daun kamboja merah

(Plumeria rubra L) terhadap kematian larva Aedes aegypti L.

: Ada pengaruh pemberian air perasan daun kamboja merah (Plumeria

rubra L) terhadap kematian larva Aedes aegypti L.

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

44/82

27

BAB 4

METODE PENELITIAN

4.1 Rancangan Penelitian

Penelitian ini merupakan penelitian eksperimental laboratoris.

Desain pada penelitian ini adalah post-test only group design.

4.2 Populasi, Sampel, Unit eksperimen dan Teknik Pengambilan

Sampel

4.2.1 Populasi

Populasi yang dipakai pada penelitian ini adalah larva nyamuk

Aedes aegypti instar III yang dibeli dari ITD (Institute of Tropical Disease)

Universitas Airlangga, Surabaya. Besar sampel yang akan digunakan

pada penelitian ini adalah 10 ekor larva uji pada masing-masing kelompok

percobaan dan replikasinya. (Malathi, 2015).

4.2.2 Sampel

a) Kriteria inklusi sampel

1. Larva Aedes aegypti instar III

2. Larva masih bergerak aktif, cepat dan spontanb) Kriteria eksklusi sampel

1. Larva Aedes aegypti yang mencapai instar III tetapi

ukurannya belum mencapai standart.

2. Larva yang telah berubah menjadi pupa atau dewasa.

3. Larva yang tidak bergerak aktif / bergerak setelah

diberikan rangsangan (disentuh dengan lidi)

4. Larva yang mati sebelum diberi perlakuan.4.2.3 Unit eksperimen

Percobaan ini menggunakan 8 kelompok perlakuan, 1 kontrol

positif dan 1 kontrol negatif. Total terdapat 10 kelompok.

Pada penelitian ini besar sampel yang digunakan adalah 10

ekor larva pada masing-masing kelompok, didapatkan dari

penelitian sebelumnya (Malathi, 2015).

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

45/82

28

Untuk memperkecil kemungkinan adanya bias pada

penelitian ini, maka harus diakukan pengulangan (replikasi).

Rumus yang digunakan untuk perhitungan banyaknya

replikasi pada penelitian ini adalah rumus Federer (Susanto,

2014).

Keterangan :

t adalah jumlah kelompok perlakuan

r adalah jumlah replikasi

(t-1) (r-1) ≥ 15 (10-1) (r-1) ≥ 15

(9) (r-1) ≥ 15

9r – 9 ≥ 15

9r ≥ 15 + 9

9r ≥ 24

r ≥ 24 / 9

r ≥ 2.6 (dibulatkan menjadi)

r ≥ 3

Dari perhitungan didapatkan bahwa pengulangan akan dilakukan

sebanyak 3 kali, maka total larva Aedes aegypti yang diperlukan dalam

penelitian ini adalah: 10 larva x 10 kelompok x 3 kali pengulangan = 300

larva Aedes aegypti L instar III.

4.2.4 Teknik pengambilan sampel

Teknik pengambilan sampel yang digunakan adalah simple random

sampling , tentunya dengan menyertakan kriteria inklusi dan eksklusi

(Notoadmodjo, 2012).

4.3 Variabel Penelitian

4.3.1 Klasifikasi Variabel

1. Variabel bebas / independent : larutan air perasan daun kamboja

merah (Plumeria rubra L) yang dibagi menjadi beberapa dosis.

2. Variabel terikat / dependent : jumlah kematian larva Aedes

aegypti L instar III.

(t-1)(r-1) ≥ 15

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

46/82

29

4.3.1 Definisi operasional variabel

1. Variabel bebas (independent ) adalah variabel yang

mempengaruhi atau menjadi sebab adanya perubahan atau

timbulnya variabel dependent (terikat). Pada penelitian ini adalah

air perasan daun kamboja merah (Plumeria rubra L) yang terbagi

menjadi beberapa dosis konsentrasi 20%, 30%, 20%, 30%, 40%,

50%, 60%, 70%, 80%, 90%.

2. Variabel terikat (dependent ) adalah variabel yang dipengaruhi atau

yang menjadi akibat dari adanya variabel bebas. Pada penelitian ini

adalah jumlah kematian larva Aedes aegypti L instar III yang

dihitung kemudian akan diubah dalam bentuk persentase kematian

sehingga LC50 dapat ditentukan.

4.4 Alat dan Bahan Penelitian

4.4.1 Bahan penelitian

a) Larva Aedes aegypti

Larva Aedes aegypti L instar III didapatkan dari ITD (Institute of

Tropical Disease) Universitas Airlangga, Surabaya.

b) Air perasan daun kamboja merah (Plumeria rubra L) Perhitungan persen yang dipakai didapatkan dari 100 persen

adalah berat per volume (b/v) yang menyatakan berat 100 mg

zat dalam 100 ml larutan, pelarut yang digunakan adalah air

(aqua).

Pembuatan air perasan daun kamboja merah (Plumeria

rubra L)

i. Alat dan bahan o Bahan

Daun kamboja merah

Aqua

o Alat

Blender, pisau, gunting

Wadah (baskom kecil)

Filter mat

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

47/82

30

Kasa

Pipet

Timbangan

Botol

Cara pembuatan air perasan daun kamboja merah

(Plumeria rubra L) dengan konsentrasi 100% (Susanto,

2014).

i. Membersihkan daun kamboja merah dengan air

mengalir dari kotoran, serangga, tanah dan

sebagainya kemudian keringkan dengan angin dan

tidak boleh terkena sinar matahari.

ii. Siapkan 500 gr daun kamboja merah yang sudah

dibersihkan kemudian potong hingga berukuran

sekitar 0,5 cm – 1 cm.

iii. Kumpulkan hasilnya pada satu wadah, kemudian

tambahkan 500ml aqua.

iv. Tutupi permukaan wadah dengan kasa untuk

mencegah adanya kontaminasi.

v. Diamkan selama 24 jam.

vi. Saringlah dengan menggunakan saringan besi dan

filter mat , serta kain yang bersih.

vii. Pisahkan cairan yang sudah disaring dan

masukkan ke dalam wadah yang tertutup.

viii. Ulangi proses ini sampai didapatkan jumlah yang

dibutuhkan. Pada uji kali ini dibutuhkan 440 ml peruji. Karena ada 3 kali replikasi, maka untuk uji

sesungguhnya, total yang dibutuhkan adalah 440 x

3 = 1.320 ml. Pada proses pembuatan peneliti

membuat air perasan sebanyak 2 L.

i. Air hasil proses ini dianggap sebagai konsentrasi

100%, dan disimpan di dalam botol tertutup rapat

untuk mencegah adanya kontaminasi.

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

48/82

31

Cara pembuatan air perasan daun kamboja merah

(Plumeria rubra L) dengan konsentrasi 20%, 30%, 40%,

50%, 60%, 70%, 80% dan 90%

i. Air perasan konsentrasi 20% didapatkan dari 20 ml

air perasan daun kamboja merah (konsentrasi

100%) + aqua 80 ml.

ii. Air perasan konsentrasi 30% didapatkan dari 30 ml


100%) + aqua 70 ml.

iii. Air perasan konsentrasi 40% didapatkan dari 40 ml


100%) + aqua 60 ml.

iv. Air perasan konsentrasi 50% didapatkan dari 50 ml


100%) + aqua 50 ml.

v. Air perasan konsentrasi 60% didapatkan dari 60 ml


100%) + aqua 40 ml.

vi. Air perasan konsentrasi 70% didapatkan dari 70 ml


100%) + aqua 30 ml.

vii. Air perasan konsentrasi 80% didapatkan dari 80 ml


100%) + aqua 20 ml.

viii. Air perasan konsentrasi 90% didapatkan dari 90 mlair perasan daun kamboja merah (konsentrasi

100%) + aqua 10 ml.

c) Pembuatan larutan kontrol positif

Pembuatan larutan kontrol positif adalah dengan cara

mencampur bubuk abate (temephos 1%) dengan aqua

sesuai dosis yang tertera di sachet (10 gr abate / 100 lt

air).

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

49/82

32

d) Pembuatan larutan kontrol negatif

Kelompok kontrol negatif hanya menggunakan aqua saja.

4.4.1 Alat-alat penelitian

1. Gelas kecil plastik ukuran 150 ml sebanyak 10 buah untuk sekali

uji (8 kelompok perlakuan + 1 kelompok kontrol negatif + 1

kelompok kontrol positif), berarti total membutuhkan 8 x 3

pengulangan = 24 buah gelas.

2. Wadah untuk menghitung larva nyamuk yang mati

3. Label

4. Alat tulis

5. Pipet dan Spuit 10cc

6. Sendok bebek untuk mengambil larva dari wadahnya

7. Kasa

8. Botol berisi air perasan dengan konsentrasi 100%

9. Gelas ukur / cylinder , dengan ukuran 50 ml, 100 ml, 150 ml

4.5 Lokasi dan Waktu Penelitian

Penelitian dilakukan di Laboratorium Biokimia, Universitas Hang

Tuah, yang berlokasi di Jl. Gadung No 1, Surabaya. Jadwal penelitian

dilakukan pada awal bulan Desember 2015 dan berlangsung selama 24

jam.

4.6 Prosedur Penelitian

Prosedur penelitian dibagi menjadi 4 tahap, yaitu :

4.6.1 Persiapan alat dan bahan

4.6.1.1 Koleksi larva Aedes aegypt i L instar III

Larva Aedes aegypti L instar III dikoleksi dari hasil kolonisasi ITD(Institute of Tropical Disease) Universitas Airlangga, Surabaya.

4.6.1.2 Koleksi kamboja merah

Koleksi kamboja merah didapatkan dari rumah peneliti di

Perumahan Persada Asri blok G-8, Kediri. Kemudian diambil sampel

tanaman dan dilakukan tes taksonomi di Kebun Raya Purwodadi – LIPI,

yang berada di jl. Raya Surabaya Malang Km. 65, Purwodadi, Pasuruan,

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

50/82

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

51/82

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

52/82

35

4.6.3 Alur penelitian

Membuat

larutan kontrol

Aqua +

Abate

Aqua

K- K+

K1

K2

K5

K6 K8

K7K3

K4

Menyiapkan air perasan daun Kamboja Merah sesuaidengan variasi yang sudah ditentukan pada

kelompok perlakuan (K1-K8)

Pembuatan air perasan daun Kamboja Merah(Plumeria rubra L) dengan konsentrasi 100%

Memasukkan 10 ekor larva Aedes aegypti L instar III padasetiap kelompok

Amati jumlah larva yang mati setelah 24 jam

Pengolahan dan analisis data

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

53/82

36

Keterangan :

1. Kelompok K1: air perasan daun kamboja merah dengan

konsentrasi 20%.


konsentrasi 30%.


konsentrasi 40%.


konsentrasi 50%.


konsentrasi 60%.


konsentrasi 70%.


konsentrasi 80%.


konsentrasi 90%.

9. Kelompok K+: kelompok kontrol positif10. Kelompok K-: kelompok kontrol negatif

4.7 Pengumpulan Data

Data yang dikumpulkan merupakan data primer yang didapatkan

dari hasil penghitungan jumlah kematian dari larva nyamuk Aedes aegypti

L instar III yang terjadi selama penelitian. Setelah itu akan dilakukan

pengolahan data dengan beberapa tahap, yaitu:

i. Penyuntingan yaitu meneliti kembali data jumlah kematiannyamuk yang diperoleh selama penelitian, serta meneliti

kelengkapan data yang diperoleh.

ii. Tabulasi yaitu memasukkan data yang sudah diperoleh ke dalam

tabel, untuk mempermudah peneliti pada saat menganalisa data

yang sudah dikumpulkan.

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

54/82

37

4.8 Analisis Data

Secara deskriptif, data disajikan dalam bentuk tabel, persentase

dan grafik. Secara analitik, akan menggunakan uji statistik dengan

menggunakan program SPSS versi 16.0 untuk Windows dengan tingkat

signifikansi (α) 0,05 (p = 0,05).

Apabila hasil uji normalitas (menggunakan Saphiro-Wilk) data

berdistribusi normal maka akan dilanjutkan dengan uji parametrik (metode

One-way Anova), sedangkan bila hasil penelitian ini data tidak

berdistribusi normal analisis data akan dilanjutkan dengan uji non

parametrik (Kruskal – Wallis).

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

55/82

38

BAB 5

HASIL PENELITIAN DAN ANALISIS DATA

5.1 Hasil Penelitian

Dalam penelitian ini larva Aedes aegypti L instar III diamati

sebanyak 3 kali pengulangan, hal tersebut berdasarkan perhitungan uji

replikasi yang menggunakan rumus Federer, yaitu ≥2,67 dan dibulatkan

menjadi 3 kali (Federer, 1955).

Dalam setiap pengamatan peneliti memakai 10 larva Aedes aegypti

instar III. Konsentrasi perasan yang digunakan adalah 20% (K1), 30%

(K2), 40% (K3), 50% (K4), 60% (K5), 70% (K6), 80% (K7) dan 90% (K9)

berdasarkan penelitian sebelumnya (Susanto, 2014). Kematian larva yang

didapatkan pada penelitian ini dapat dilihat pada tabel berikut.

Tabel 5.1 Hasil Pemberian Air Perasan Daun Kamboja Merah terhadap

Larva Aedes aegypti L Instar III

KonsentrasiPerasanDaun

KambojaMerah

Replikasi 1 Replikasi 2 Replikasi 3 Rata-Rata

Jumlah

KematianLarva

Persentase Rata-

Rata

Kematian Larva(%)

Σ Larva

Hidup

Σ Larva

mati

Σ Larva

Hidup

Σ Larva

Mati

Σ Larva

Hidup

Σ Larva

mati

K1 10 0 10 0 10 0 0 0

K2 10 0 10 0 10 0 0 0

K3 9 1 10 0 10 0 0,33 3,3

K4 8 2 9 1 8 2 1,67 16,7

K5 8 2 8 2 8 2 2 20

K6 7 3 7 3 8 2 2,67 26,7

K7 5 5 4 6 4 6 5,67 56,7

K8 3 7 2 8 3 7 7,33 73,3

K + 0 10 0 10 0 10 10 100

K – 10 0 10 0 10 0 0 0

Catatan: Setiap kelompok menggunakan 10 larva Aedes aegypti instar III.

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

56/82

39

Gambar 5.1 Grafik jumlah kematian larva terhadap pemberian konsentrasi

air perasan daun Kamboja Merah

Dari grafik di atas dapat dilihat bahwa jumlah kematian larva paling

banyak terdapat pada K8 (konsentrasi 90%) dan jumlah kematian larva

paling sedikit pada K1 (konsentrasi 20%).

Gambar 5.2 Grafik persentase rata-rata kematian larva terhadap

pemberian konsentrasi air perasan daun Kamboja Merah

Persentase kematian larva yang disajikan dalam tabel 5.2

didapatkan dengan menggunakan formula sebagai berikut:

0

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

K1 K2 K3 K4 K5 K6 K7 K8 K+ K-

Replikasi 1

Replikasi 2

Replikasi 3

0

10

20

30

40

50

60

70

80

K1 K2 K3 K4 K5 K6 K7 K8

Rata-Rata Persentase Larva Mati

Rata-Rata Persentase

Larva Mati

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

57/82

40

Formula Abbot (WHO, 2005).

X = Persentase larva yang hidup pada kontrol negatifY = Persentase larva yang hidup pada perlakuan

Dari tabel 5.2 dapat dilihat bahwa kematian larva yang mencapai

50% terdapat diantara K6 - K7 yaitu pemberian konsentrasi air perasan

daun kamboja merah sebesar 70% - 80%.

5.2 Analisa Hasil Statistik

Dalam menganalisa hasil penelitian ini peneliti menggunakan

SPSS versi 23 dimana nilai signifikasi (α) sebesar 0,05. Analisa data

statistika ini bertujuan untuk mengambil kesimpulan atau

mendeskripsikan data. Uji yang ideal dilakukan dalam analisa statistik

ini adalah uji parametrik menggunakan metode One-way Anova dan

dilanjutkan dengan uji LSD. Untuk pengujian dengan menggunakan

metode anova, sebelumnya harus dipenuhi beberapa syarat, yaitu:

skala data minimal interval, data berdistribusi normal dan varians data

homogen.

5.2.1 Saphiro-Wilk

Uji normalitas Saphiro-Wilk akan dilakukan pada penelitian ini untuk

melihat normal atau tidaknya distribusi data penelitian dengan : data

berdistribusi normal, : data tidak berdistribusi normal. Jika nilai

signifikansi < α maka ditolak.

Setelah dilakukan uji Saphiro-Wilk didapatkan hasil nilai signifikansi

p=0,00 (p < α), yang artinya ditolak, dan dapat disimpulkan bahwa data

tidak berdistribusi secara normal. Sehingga Uji statistik One-way Anova

tidak dapat dilakukan. Maka langkah selanjutnya yaitu menggunakan uji

statistik non-parametrik yaitu Kruskal-Wallis dan dilanjutkan dengan

Wilcoxon Mann-Whitney.

5.2.2 Uji Kruskal-Wallis

Peneliti menggunakan uji statistik non parametrik Kruskal-Wallis

karena data hasil penelitian ini tidak memenuhi syarat untuk dilakukannya

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

58/82

41

uji parametrik. Hipotesis dari uji statistik Kruskal-Wallis adalah : tidak

ada perbedaan jumlah larva mati berdasarkan konsentrasi air perasan

daun kamboja merah. : ada perbedaan (minimal sepasang) jumlah larva

mati berdasarkan konsentrasi air perasan daun kamboja merah. Dimana

hasil signifikansi p < α menyatakan diterima.

Hasil yang didapatkan pada uji Kruskal-Wallis ini yaitu nilai

signifikansi sebesar 0,00 (p< α) yang berarti ditolak dan diterima.

Sehingga dapat disimpulkan bahwa pada penelitian ini ada perbedaan

jumlah larva mati berdasarkan konsentrasi air perasan daun kamboja

merah.

Untuk membandingkan pasangan yang berbeda maka akan

dilanjutkan dengan uji Wilcoxon Mann-Whitney.

5.2.3 Uji Wilcoxon Mann-Whitney

Uji ini merupakan lanjutan dari uji Kruskal-Wallis dimana uji ini

dilakukan untuk melihat ada atau tidaknya perbedaan yang bermakna

pada setiap kelompok konsentrasi yang akan dibandingkan. Di mana jika

nilai signifikansi α berarti tidak terdapat perbedaan yang bermakna dari

jumlah larva yang mati pada konsentrasi yang dibandingkan. Hasil dari uji

Mann-Whitney pada penelitian ini adalah sebagai berikut:

Tabel 5.2 Hasil Uji Wilcoxon Mann-Whitney

Kons 30% 40% 50% 60% 70% 80% 90% K+ K-

20% 1,00 ,317 ,034* ,025* ,034* ,034* ,034* ,025* 1,00

30% ,317 ,034* ,025* ,034* ,034* ,034* ,025* 1,0040% ,068 ,034* ,043* ,043* ,043* ,034* ,317

50% ,317 ,099 ,043* ,043* ,034* ,034*

60% ,114 ,034* ,034* ,025* ,025*

70% ,043* ,043* ,034* ,034*

80% ,043* ,034* ,034*

90% ,034* ,034*

K+ ,025*

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

59/82

42

Keterangan :

* : Kelompok yang mempunyai perbedaan bermakna (p α sehingga dapat disimpulkan

tidak terdapat perbedaan bermakna jumlah kematian larva.

Namun pada perbandingan konsentrasi 20% terhadap

konsentrasi 50%, 60%, 70%, 80% dan 90% didapatkan nilai

signifikansi < α sehingga dapat disimpulkan terdapat perbedaan

bermakna jumlah kematian larva.

2. Pada perbandingan konsentrasi 30% terhadap 40% didapatkan

nilai signifikansi > α sehingga dapat disimpulkan tidak terdapat

perbedaan bermakna jumlah kematian larva. Namun pada

perbandingan konsentrasi 30% terhadap konsentrasi 50%, 60%,

70%, 80% dan 90% didapatkan nilai signifikansi < α sehingga

dapat disimpulkan terdapat perbedaan bermakna jumlah

kematian larva.

3. Pada perbandingan konsentrasi 40% terhadap 50% didapatkannilai signifikansi > α sehingga dapat disimpulkan tidak terdapat


perbandingan konsentrasi 40% terhadap konsentrasi 60%, 70%,

80% dan 90% didapatkan nilai signifikansi < α sehingga dapat

disimpulkan terdapat perbedaan bermakna jumlah kematian

larva.

4. Pada perbandingan konsentrasi 50% terhadap 60% dan 70%didapatkan nilai signifikansi > α sehingga dapat disimpulkan

tidak terdapat perbedaan bermakna jumlah kematian larva.

Namun pada perbandingan konsentrasi 50% terhadap

konsentrasi 80% dan 90% didapatkan nilai signifikansi < α

sehingga dapat disimpulkan terdapat perbedaan bermakna

jumlah kematian larva.

8/19/2019 Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

60/82

43


nilai signifikansi > α sehingga dapat disimpulkan tidak terdapat


perbandingan konsentrasi 60% terhadap konsentrasi 80% dan

90% didapatkan nilai signifikansi < α sehingga dapat disimpulkan

terdapat perbedaan bermakna jumlah kematian larva.

6. Pada perbandingan konsentrasi 70% terhadap 80% dan 90%

didapatkan nilai signifikansi < α sehingga dapat disimpulkan

terdapat perbedaan bermakna jumlah kematian larva.


nilai signifikansi < α sehingga dapat disimpulkan terdapat

perbedaan bermakna jumlah kematian larva.

Hal tersebut memperlihatkan bahwa meskipun secara matematis

terdapat perbedaan pada jumlah kematian larva, namun secara statistik,

kelompok konsentrasi 20% terhadap 30% dan 40% tidak memiliki

perbedaan yang bermakna jumlah kematian larva, begitu pula dengan

kelompok konsentrasi 30% terhadap 40%, kelompok konsentrasi 40%terhadap 50%, kelompok konsentrasi 50% terhadap 60% dan 70%, serta

kelompok konsentrasi 60% terhadap 70%.

Selain uji perbandingan antar kelompok konsetrasi, juga perlu

dilakukan uji perbandingan antar kelompok konsentrasi dengan kelompok

kontrol. Hal tersebut bertujuan untuk mengetahui apakah sampel

mempunyai nilai rata-rata yang berbeda dengan nilai rata-rata acuan,

dimana acuan tersebut merupakan kontrol negatif. Jika nilai rata-ratasampel sama dengan nilai rata-rata acuan maka secara statistik data itu

tidak memiliki perbedaan yang bermakna. Artinya pada konsentrasi

tersebut diberikan atau tidak berikan air perasan hasilnya akan sama saja.

Pada uji ini hipotesis yang berlaku sebagai berikut:

: Jumlah larva hidup pada konsentrasi sama dengan nilai 10

: Jumlah larva hidup pada konsentrasi tidak sama dengan nilai 10

8/19/201

Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054

Documents

Transcript of Angeline Rosa H - 2012.04.0.0054