V i t d lVaneamiento del arroz en PanamáPanamá

Myriam Patricia Guzmán G.

La estructura del modelo de negocio en Panamá es de producción concentrada y elevado consumo 

PRODUCCION DE ARROZ

80% Secano20% RiegoARROZ 20% Riego

12%

6%4%

57%14%

1%

6%

DEMANDA DE ARROZ

72Kg/persona320 mil qq/mes

Productores y Hectáreas sembradas de ArrozProductores y Hectáreas sembradas de Arroz 

2,500

80,000

90,000ProductoresHectáreas.

1,500

2,000

50,000

60,000

70,000

500

1,000

20,000

30,000

40,000

00

10,000

00‐01, 01‐02, 02‐03, 03‐04, 04‐05, 05‐06, 06‐07, 07‐08, 08‐09,AÑO

Productores Ha. Sembradas Ha. Cosechadas

Producción Nacional a través del tiempop

2003 2004Área Ha 76,699Producción Kg/Ha 4,4992003 ‐ 2004

2004 ‐2005Área Ha 77,209Producción Kg/Ha 3,201

Producción Kg/Ha 4,499

28.85%

2005‐2006Área Ha 68,354Producción Kg/Ha 4,072

2006‐2007 Área Ha 59,613Producción Kg/Ha 4,138

2007‐2008 Área Ha 59,603Producción Kg/Ha 4,511

2008‐2009Área Ha 60,778Producción Kg/Ha 4,725

Nuestro Grupo

CALESAProducción, Procesamiento 

Nuestro Grupo

CEGRACOProducción, Procesamientoy comercialización de arroz

y comercialización de azúcar

CAMACOProducción y Procesamiento 

de camarones

SECOSAProducción de semillas 

de arrozINASA

Producción de alimentosbalanceados

CASA GANACODistribuidora de agroquímicos

y veterinariaProducción de Ganado

de carne

La diferenciación en calidad nos ha permitido obtener una ventaja en ti i ió d d d l d bl t l i i l tidparticipación de mercado del doble con respecto a los principales competidores

%%

Fuente: Analmo 2008

Hectáreas de Arroz CEGRACO S AHectáreas de Arroz. CEGRACO S.A.

4,500

5,000

3,500

4,000

2 500

3,000

2,000

2,500

2003 ‐ 2004 ‐ 2005 ‐ 2006 ‐ 2007 ‐ 2008 ‐2003 2004

2004 2005

2005 2006

2006 2007

2007 2008

2008 2009

Los resultados de rendimiento en el área de campo han evolucionado positivamente durante los últimos años

4,500

5,000

3 000

3,500

4,000

2,000

2,500

3,000

,

2003 ‐2004

2004 ‐2005

2005 ‐2006

2006 ‐2007

2007 ‐2008

2008 ‐2009

CEGRACO NACIONAL

Fuente: Cegraco, Mida

CEGRACO NACIONAL

En Busca De La Solución Del VaneamientoEn Busca De  La Solución Del Vaneamiento

Acaro 

No hay una identificación única es Sarocladium

una mezcla de todos estos factores 

Bacterias 

ClimaClima 

LO MAS IMPORTANTE ES REALIZAR UN BUEN 

DIAGNOSTICO

N.A.Hummel et. Al./Crop Protection (2009). Fotos E.Erbe USDA-ARS-EMU

Monitoreo secuencialMonitoreo secuencialGANACO,S.A.

MONITOREO DE ACAROS, 2009‐2010.CAMPO ÁREA 38 42 46 50 54 58 62 66 70 74 78 82 86 90 94 98CAMPO ÁREA 38 42 46 50 54 58 62 66 70 74 78 82 86 90 94 98981‐TEMP. 22.75 0.00 0.00 0.00 1.47 0.00 1.47 1.47 8.82 0.00 1.47 1.47 1.47 0.00 1.47 1.47

923‐F‐2000 30.00 1.10 0.00 1.10 0.00 4.40 0.00 1.10 6.60 15.50 11.10 37.90 24.40 33.30 31.10 31.10 38.80

935‐F‐2000 22.00 3.03 3.03 6.06 3.03 10.60 7.57 15.10 3.00 1.50 1.50 16.60 22.70 27.20 43.90 57.50 50.00

908‐F‐2000 24.49 0.00 1.30 2.60 5.30 2.60 6.60 6.60 21.30 1.30 1.30 0.00 0.00 1.30 1.30 4.00 10.60

973‐I‐5405 6.71 4.76 4.76 0.00 0.00 4.76 9.52 19.04 23.80 19.04 0.00 0.00 0.00 0.00 0.00 0.00 4.76

973‐F‐473 19.29 3.40 1.72 1.72 1.72 5.17 15.50 13.70 29.30 15.50 0.00 0.00 0.00 0.00 3.40 3.40 5.17

903‐F‐2000 20.74 3.17 4.76 4.76 7.90 14.20 36.50 34.90 19.04 47.60 0.00 3.17 0.00 6.30 15.80 23.80 25.30

924‐F‐2000 7.02 0.00 0.00 0.00 9.52 14.20 14.20 14.20 14.20 0.00 0.00 0.00 0.00 0.00 9.52 19.04 19.04

984‐F‐2000 23.80 2.80 1.40 5.63 9.85 16.90 33.80 23.90 36.60 39.40 5.60 1.40 5.60 12.60 11.20 11.20 14.08

989‐E‐71 49.50 2.00 0.66 6.60 3.30 10.00 12.00 17.30 13.30 0.60 0.00 2.00 0.60 3.30 3.30 4.60

983‐E‐71 34.08 1.90 1.90 0.95 4.76 7.61 9.52 9.52 11.40 13.30 0.00 0.00 1.90 0.00 0.95 0.95 2.85

988‐F‐2000 35.92 0.92 0.92 0.92 5.55 3.70 10.10 10.10 19.40 20.30 0.00 0.00 0.00 1.85 0.92 1.85 5.50

982‐F‐2000 30.00 3.30 2.20 1.10 4.44 8.80 11.10 17.70 17.70 18.80 0.00 0.00 1.10 4.40 4.40 6.60 5.50

987‐E‐71 32.00 1.02 2.04 1.02 2.04 6.12 11.20 17.30 19.30 18.30 0.00 2.04 1.02 0.00 0.00 1.02 6.12

986‐F‐2000 48.75 2.05 2.05 10.90 6.16 14.38 17.10 18.40 31.50 39.04 2.05 2.05 4.79 3.42 4.10 13.01 22.60

907‐F‐9738 13.50 7.14 9.52 0.00 7.14 0.00 16.60 14.20 14.20 16.60 42.80 2.30 0.00 0.00 9.50 11.90 16.60

909‐E‐71 17.99 7.40 14.80 22.20 18.50 0.00 1.80 0.00 7.40 22.20 14.80 3.70 7.40 0.00 1.85 5.50 7.40

943‐TEMP 12.00 10.00 2.50 2.50 10.00 7.50 2.50 5.00 5.00 0.00 0.00 2.50 5.00 0.00 17.50 22.50 7.50

911‐E‐71 27.46 7.30 1.20 1.20 6.09 10.90 13.40 12.10 3.60 3.60 0.00 0.00 0.00 12.10 10.90 18.20 7.40

981‐E‐71 22.75 25.00 13.20 1.40 2.94 2.94 1.47 0.00 0.00 1.47 1.40 1.40 2.94 14.70 14.70

922‐E‐71 26.00 0.00 1.28 1.28 3.84 6.41 14.10 20.50 15.30 2.50 7.69 5.50 16.60 11.10 16.60 15.00 19.20

986‐F‐2000 48.75 8.90 7.60 16.60 16.60 26.90 32.05 33.30 0.00 0.00 1.28 3.84 3.84 6.40 11.50 12.80

982‐F‐2000 30.00 4.40 11.10 14.40 17.70 18.80 22.20 21.10 5.50 2.20 1.10 1.10 7.70 13.30 20.00 23.30 8.8

983‐F‐2000 18.41 5.40 9.09 9.09 14.50 21.80 45.40 3.60 1.80 3.63 1.81 1.81 0.00 10.90 12.70 20.00

903‐E‐71 20.74 7.93 14.28 25.30 28.50 0.00 0.00 4.76 0.00 4.76 11.10 19.04 26.70 3.10 14.28

987‐E‐71 32.00 17.50 19.50 5.15 13.40 26.80 4.12 0.00 3.09 5.15 3.09 5.15 8.24 5.15 8.24

973‐F‐473 6.71 0.00 5.00 15.00 5.00 25.00 25.00 10.00 25.00 0.00 0.00 0.00 0.00 20.00 10.00 40.00

973‐E‐71 19.29 12.60 12.06 8.62 8.60 32.70 20.60 5.17 29.30 3.44 3.44 1.72 0.00 5.17 10.30 25.80

Umbrales para ÁcaroUmbrales para Ácaro

6%6% 6%6%--10%10%

30 5535 40 5045 60 7065 8075 11590I i i dI i i d P i diP i diInicio de Inicio de PrimordioPrimordio--PrimordioPrimordio EmbuchamientoEmbuchamiento

1  =   1 a 5 acaros2  =   6 a 10 acaros3  =  11 a 15 acaros4  =  16 a 20 acaros5  =  mayor a 20 acaros

Cada Época, Cada Finca, Cada Campo, Es DiferenteCada Época, Cada Finca, Cada Campo, Es Diferente

18

20

30

34

12

14

1634

38

42

46

50

6

8

10 54

58

62

66

30

50

70

0

2

4 70

74

78

82

Sarocladium oryzaeSarocladium oryzae

Sarocladium oryzaeSarocladium oryzae

•Tratamiento de Semillas•Evitar Estrés de herbicidas•Nutrición de plantas•Protección de la Panícula

BacteriasBacterias

Sintomatología similarSintomatología similar

Rush, 2003 Panamá, desde 2004

1er PROYECTO SENACYT – CEGRACO – F C A

Localidades y Patógenos Evaluados

1er. PROYECTO SENACYT – CEGRACO – F.C.A.

•Bayano (Chepo) Panamá•La Cabezona (Alanje) Chiriquí •Ganaco (Natá) Coclé•Sierra (El Roble) Coclé

Localidades y Patógenos Evaluados

Sierra (El Roble) Coclé •Santa Rita (Santa María) Herrera

PCR

Burkholderia glumae 620Burkholderia gladioli 670P d 290

Patógeno # muestras (campo)PCR

T t lPseudomonas avenae 290 Pseudomonas fuscovaginae 430Pseudomonas syringae 373Xanthomonas oryzae pv. oryzae 370 X th i l 330

Total: 3494

Xanthomonas oryzae pv. oryzicola 330

Nested-PCR RHBV 411

MuestreoMuestreo- Recolección al azar de plantas sintomáticas y asintomáticas.

C t d fl ió

MuestreoMuestreo

- Campos en etapa de floración- Época lluviosa

Diferentes partes de la planta : Espiga hoja bandera vaina de la hoja bandera espiguilla raíz semillaEspiga, hoja bandera, vaina de la hoja bandera, espiguilla, raíz, semilla.

Evaluación de las metodologías para laextracción de ácidos nucleicos (ADN ARN)extracción de ácidos nucleicos (ADN, ARN)

A partir de diferentes tejidos de planta(Raíces, tallos, hojas, vainas, espigas)A partir de cultivos puros de bacteriasEvaluación de las metodologías para la extracción de ácidos nucleicosSelección de primers y condiciones deSelección de primers y condiciones de amplificación.

Selección de primers y amplificación por PCRBurkholderiaBurkholderia glumaeglumae

Primer 1 amplicon de 227 pbPrimer 2 amplicon de 528 pb

Pruebas de sensibilidad:Diluciones del ADN (desde 10-1 hasta 10-6 )( )

C- 10-1 10-2 10-3 10-4 10-5 10-6 C+ Primer 1

10¯1 10¯2 10¯3 10-4 10-5 10-6 C+

Primer 2Primer 2

El juego de primers 2 ha sido seleccionado por ser el más sensible de los demás, tanto a partir de bacterias crecidas en agua de peptona como en LB.

Selección de primers y amplificación por PCR

Confirmación de las secuencias detectadasLa comparación entre la secuencia del producto de amplificación y secuencias publicadas en

Burkholderia glumae

La comparación entre la secuencia del producto de amplificación y secuencias publicadas en GenBank permite confirmar su pertenencia a Burkholderia glumae.

Burkholderia glumae

Amplificación por PCR de Otros PatógenosAmplificación por PCR de Otros Patógenos

Sondeo epidemiológico de la finca La Cabezona para B kh ld i l di liBurkholderia gladioli

Pseudomonas avenae

Tropismo TisularTropismo Tisular

P t l í T jidPatología TejidoBurkholderia glumae Espiga

Xanthomona oryzae pv oryzae VainaXanthomona oryzae pv. oryzae VainaRHBV Hoja y Vaina

Pseudomona avenae EspigaPseudomona avenae EspigaX. oryzae pv.oryzicola Vaina

B. gladioli Hoja, Vaina, Espigag j , , p gP. fuscovagine Espiga

P. syringae Espiga

Identificación y determinación de la frecuencia de b t i l fi d CEGRACO bacterias en las fincas de CEGRACO

%

25

30% 

15

20

5

10

0B. glumae B. gladioli P. fuscovagine P.avenae P. syringe X. oryzae X orizicola

BAYANO GANACO CABEZONA SIERRA STA RITA

2o PROYECTO SENACYT – CEGRACO – U P2o. PROYECTO SENACYT – CEGRACO – U.P.

Estudio Epidemiológico y Diagnóstico Molecular de Burkholderia glumae y B. gladioli en las principales zonas arroceras de Panamázonas arroceras de Panamá

Determinar los posibles Diagnosticar mediante Determinar los posibles agentes diseminadores de las bacterias Burkholderiaglumae y B gladioli

gbiología molecular las bacterias B. glumae y B. gladioli en las 16 etapas glumae y B. gladioli g pfenológicas del arroz.

Electroforesis para el diagnóstico de B. glumae y B. l di li ti d t jid d i igladioli a partir de tejidos de espiga y vaina.

M     v    E1   E2   E3   E4   E5   E6   E7   E8  E9  E10   v   V1  V2  V3   V4   V5  V6   V7  V8  V9   V10  v   P+

Determinación de B. glumae en espiga y vaina.

Determinación de B. gladioli en espiga y vaina

M    v    E1    E2   E3  E4   E5   E6  E7   E8  E9  E10   v   V1  V2  V3   V4   V5  V6   V7   V8  V9  V10  v  P+

Posibles agentes diseminadoresPosibles agentes diseminadores

Suelo

Posibles AgentesAguaSemillas

Posibles Agentes Diseminadores

ÁcarosMalezas

Actividades RealizadasActividades Realizadas

R l ió E t ió d PCR El t f iRecolección de muestras• Tomadas al azar

Extracción de ADN• Validación de 

PCR• Primers para B.glumae

Electroforesis• B. glumae: 528 pb

• 4 zonas• 3 Fincas• 5 diseminadores                                

protocolos para cada posible diseminador

• Primers para B. gladioli

• B. gladioli: 471 pb

diseminador

Extracción de ADN en posibles diseminadoresExtracción de ADN en posibles diseminadores

AGUA(1) Extracción con buffer de lisis y proteinasa K (AP) según Poutou et al., 2001(1) Extracción con buffer de lisis y proteinasa K (AP) según Poutou et al., 2001(2) Modificación del método anterior aplicando, pero utilizando filtración con membrana

(FM) de acetato de celulosa de 0.45 μm.

SUELO(1) Mét d d l d l i l i i l (SC1) l d id(1) Método de sucrosa con cloruro de calcio con volumen original (SC1) y volumen reducido

(modificación) (SC2) según Pillai et al., 1991( 2) Método de bead beating con cloruro de calcio precipitado con isopropanol (BC1) o

etanol y acetato de sodio (modificación) (BC2) según Sagova-Mareckova et al., 2008(3) Método de bead beating (B) según Yeates et al., 1998( ) g ( ) g ,(4) Método de lisis enzimática (K1) según Yeates et al., 1998

ACARO(1) Método de buffer de lisis con CTAB (BL) según Desloire et al., 2006(2) Mét d d l filt (F) ú D l i t l 2006(2) Método de papel filtro (F) según Desloire et al., 2006(3) Digestión enzimática con proteinasa K y sin PK(4) Extracción orgánica según Ausubel et al., 1992

MALEZAS Y SEMILLASMALEZAS Y SEMILLAS (1) Buffer de lisis con CTAB (BL2)(2) Utilizando el reactivo comercial Trizol de Invitrogen (T)

PCR a partir de ADN de muestras de á t íd t ét dA

M1 v P‐1 P‐2 P+1 P+2 v E‐1 1 2 3 4 5 v E‐2 6 7 8 9 10

BL1 F

ácaros extraídos por cuatro métodos

M1      v     P‐1   P‐2   P+1   P+2      v     E‐1      1       2        3       4       5      v      E‐2      6       7       8       9      10   

BK2 KP

M1     v     E‐1      1        2        3       4        5       v      E‐2       6        7        8        9       10

A. Amplificación de ADN de ácaros. Línea 1 – 5: Método de Buffer de Lisis con CTAB (BL1). Línea 6 – 10: Método de Papel Filtro (F). B. Amplificación de ADN de ácaros. Línea 1 – 5: Método de Proteinasa K crudo

á (K2) Lí 6 10 Mét d d P t i K F l Cl fpara ácaros (K2). Línea 6 – 10: Método de Proteinasa K con Fenol Cloroformo Alcohol Isoamílico (KP).E-1 y E-2 controles negativos de extracción para cada método P-1 y P-2 controles negativos de PCRy gP+1 y P+2, controles positivos de PCR (ADN de bacteria).

Frecuencia de B. glumae y B. gladioli en los posibles di i d d d ldiseminadores de acuerdo a la zona

60

70

80

30

40

50

60

10

20

30

0B.glumae B. gladioli B.glumae B. gladioli B.glumae B. gladioli

ACARO MALEZA SEMILLA

NATA STA MARIA ALANJE CHEPO

Frecuencia de B. glumae y B. gladioli en la evaluación d l ibl di i dde los posibles diseminadores

10

12

Fr%

6

8

0

2

4

0

B. glumae B. gladioli

Porcentaje de frecuencia de B. glumae y B. gladioli tomado del total de j g y gmuestras de los diseminadores evaluados

Frecuencia de B. glumae y B. gladioli en Malezasg y g

89

4567

recuen

cia

01234

% Fr

M    v     1      2      3      4      5      6      7      8      9     10   11    12    13   14    15   16   17    18   19  20 500 pb

0

B. glumae B. gladioli

500 pb

Electroforesis de productos de PCR de muestras malezas de la zona Chepo, PanamáEste para la detección de B. gladioli . Línea 1 – 20: Amplicones de ADN extraído a partirp g p pde distintas especies de malezas, entre las cuales destacan como positivas las especiesLeptochloa spp., Echinocloa spp., Ciperaceae spp. y el arroz rojo.

Frecuencia de B glumae y B gladioli en SemillasFrecuencia de B. glumae y B. gladioli en Semillas

7

4

5

6

ecue

ncia

0

1

2

3

% Fre

0

B. glumae B. gladioli

M      v      1      2      3      4      5       6       7      8       9     10     11    12     v     E‐ P‐ v       P+ 

Análisis molecular de semillas de la zona de Santa María, Herrera para la patología de B. gladioli

Electroforesis para el diagnóstico de B. glumae y B l di li 21 l t d S illB. gladioli en 21 lotes de Semillas

Determinación de B. gladioli mediante PCR en muestras de semillas. Línea 3-7: Lote 17 Línea 9-13: Lote 9, se observa barrido. Línea 15-19: Lote 16. Línea 21-25: Lote 21.

Determinación de B. glumae mediante PCR en muestras de semillas. Línea 3-7: Lote 17 Línea 9-13: Lote 9 Línea 15-19: Lote 16 Línea 21-25: Lote 21Línea 9-13: Lote 9. Línea 15-19: Lote 16. Línea 21-25: Lote 21.

Frecuencia de B. glumae y B. gladioli en 21 lotes de semilla 

% Fr.

Frecuencia de B glumae y B gladioli en AcarosFrecuencia de B. glumae y B. gladioli en Acaros

60

70

40

50

ecue

ncia

20

30

% Fre

0

10

B. glumae B. gladiolig g

Electroforesis para el diagnóstico de B. glumae y B. gladioli a partir de ácaros

M v 1 2 3 4 5 6 v E‐ P‐ v P+ v 1 2 3 4 5 6 v E‐ P‐ v P+B. glumae B. gladioli

Muestra de ácaros de varias fincas.

M    v    1   2    3    4    5    6    7    v    v    v     8    9   10   11  12  13  14  15   v   E­ P­ v   P+ 500 pb

Muestras de ácaros de las zonas de Natá, Coclé y Santa María, Herrera para la detección de B. gladioli Línea 1 – 7, muestras de la zona de Natá. Línea 8 – 15. zona de Santa María. E- control negativo de extracciónP- P+ control negativo y positivo de PCR (ADN de bacteria). Las bandas muy tenues se muestran encerradas en un círculo.

Etapas FenológicasEtapas Fenológicas

SemillaSemilla PrimordioFloralPrimordioFloral Inicio de Embuchamiento

Inicio de Embuchamiento Grano MaduroGrano Maduro

GerminaciónGerminación Inicio de Primordio Floral 

Inicio de Primordio Floral 

EmbuchamientoEmbuchamiento

EmbuchamientoEmbuchamiento Grano PastosoGrano Pastoso

Plántula Plántula  Máximo Macollamiento

Máximo Macollamiento

Máximo Embuchamiento

Máximo Embuchamiento Grano LechosoGrano Lechoso

Inicio de Macollamiento

Inicio de Macollamiento MacollamientoMacollamiento Inicio de 

Floración Inicio de Floración  FloraciónFloración

Actividades RealizadasActividades Realizadas

Recolecta de Muestras Extracción de Muestras

ADN PCRElectroforesis

60 muestras por etapa

Electroforesis para el diagnóstico de B. glumaeB l di li dif t t f ló iy B. gladioli en diferentes etapas fenológicas

Detección, mediante PCR de B. gladioli en 60 muestras de la etapa de máximo macollamiento del campo 922. Línea 1 – 18: Muestras de ADN en la etapa de macollamiento. La letra E- indica el control negativo de extracción. La letra P- corresponde al control negativo de PCR; y P+, al control positivo de PCR (ADN de bacteria). La letra M g ; y , p ( )corresponde al marcador de ADN de 100 pb. La letra “v” señala los pocillos vacíos

Frecuencia de B. glumae en las diferentes etapas f ló ifenológicas

25

20

a

10

15

% Frecuen

cia

5

%

0

SEMILLA

ERMINACION

PLANTU

LA

OLLAMIENTO

OLLAMIENTO

OLLAMIENTO

. PRIMORD

IO

PRIM

ORD

IO

UCH

AMIENTO

UCH

AMIENTO

UCH

AMIENTO

I. FLORA

CION

FLORA

CION

ANO LEC

HOSO

NO PASTOSO

NO M

ADURO

GE

I. MACO

MACO

MAX. M

ACO I.

I. EM

BU

EMBU

MAX.EM

BU

I

GRA

GRA

GRA

N

CAMPO 907 CAMPO 922 CAMPO 943 TENDENCIA

Frecuencia de B. gladioli en las diferentes etapas f ló ifenológicas

25

30

a

15

20

% Frecuen

cia

0

5

10

%

0

SEMILLA

GER

MINACION

PLANTU

LA

ACO

LLAMIENTO

ACO

LLAMIENTO

ACO

LLAMIENTO

I. PR

IMORD

IO

PRIM

ORD

IO

BUCH

AMIENTO

BUCH

AMIENTO

BUCH

AMIENTO

I. FLORA

CION

FLORA

CION

RANO LEC

HOSO

RANO PASTOSO

RANO M

ADURO

I. MA

MA

MAX. M

A

I. EM EM

MAX.EM G

R

GR

GR

907 922 943 TENDENCIA

Acaro, B. glumae y B. gladioli B. gladioli en las dif t t f ló idiferentes etapas fenológicas

20

25C- 9073,673 Kg/Ha

5

10

15

20 g

% Fr.

0

5

r.% Fr

C-9434,443 Kg/Ha

ClimaClima

Temperaturas Mínimas La EstrellaTemperaturas Mínimas. La Estrella

25

22

23

24

25

Temperaturas mínimas Grados Centígrados

19

20

21

ENE FEB MAR ABR MAY JUN JUL AGO SEP OCT NOV DIC

g

2009 2008

80

100

Frecuencia de días con

20

40

60Frecuencia de días con temperatura mínima mayor a 23 Grados Centígrados

0ENE FEB MARZ ABR MAY JUN JUL AGO SEP OCT NOV DIC

2009 2008

Factores Climáticos. Finca La CabezonaFactores Climáticos. Finca La Cabezona

800 Precipitación Anual

200

400

600mm

0ENE FEB MARZ ABR MAY JUN JUL AGO SEP OCT NOV DIC

2009 2008

50

60

70

80

24

25

Temperaturas mínimas Fr. Temp. mínima mayor a 23 C

10

20

30

40

50

21

22

23

0ENE FEB MARZ ABR MAY JUN JUL AGO SEP OCT NOV DIC

2009 2008

20ENE FEB MARZ ABR MAY JUN JUL AGO SEP OCT NOV DIC

2009 2008

Prácticas de Manejo del CultivoPrácticas de Manejo del Cultivo

• Mantener períodos libres de arroz el campo, como períodos de vedaperíodos de veda.

• Eliminar por completo los restos de cosecha y derestos de cosecha y de malezas

• Sembrar los camposSembrar los campos cercanos en un período de tiempo definido.

Estrategia de SiembraEstrategia de Siembra

500

Radiación 20 Años.Canal. Panamá

450

500

350

400

m2/día

300

350

JUL AGO SEP OCT NOV DIC ENE FEB MAR ABR MAY JUN

cal/cm

•Semilla CertificadaS ill T t d•Semilla Tratada

Manejo del cultivo de Acuerdo a las Etapas FenológicasManejo del cultivo de Acuerdo a las Etapas Fenológicas

Control de Malezas, Fertilización, Riego

La clave en la disminución del vaneamiento es el Manejo Integrado del Cultivo

Destrucción Época de Monitoreo  Control deNutrición de plantasDestrucción 

de Residuos de cosecha.

Vedas

Época de Siembra.

Siembra en bloque

Escoger la Variedad

Semilla Certificada

de Plagas , Enfermeda

des y  Ácaro

Control de malezas y limpieza de bordes

de plantas  de 

acuerdo  análisis de 

suelo

Protección de Espiga

Muchas Gracias Sus Preguntas Son Bienvenidas!!g