Tutorial BioBricks

Tutorial BioBricks

Jan MertensElke Van Assche

BioBrick: definitie

Het part zelf begint met eerste letter (A, C, T, G) die volgt op de prefix cloning site van het plasmide en eindigt met de laatste letter voor de suffix cloning site van het plasmide Part sequentie in de registry: start met de eerste base van het part en

eindigt met de laatste base Vb. Start met ATG en eindigt met TAATAA Exclusief prefix en suffix

Prefix en suffix liggen op plasmide waarin het part zit Prefix en suffix hebben knipplaatsen voor EcoRI, XbaI, SpeI,

PstI BioBrick heeft dus geen knipplaatsen voor restrictie-enzymen

Prefix en suffix BioBrick Prefix

Als het part dat volgt een coderende sequentie is of een ander part dat start met "ATG", dan is de BioBrick prefix :

gaattcgcggccgcttctag Anders is de BioBrick prefix :

gaattcgcggccgcttctagag BioBrick Suffix

De standaard BioBrick suffix is :tactagtagcggccgctgcag

BioBrick Scar Als BioBricks met deze prefix and suffix sequenties geassembleerd

worden is er een "scar“ tussen de parts. Als het tweede part met "AT“ begint, is de scar

tactag Anders is de scar

tactagag

Soorten Biobricks

Basic Parts Basic Parts zijn atomische eenheden van DNA De oorsprong is de-novo synthese, genbank, primer extension en PCR,

of andere technieken Zoals alle parts wordt ook een Basic part gehouden in een plasmide In het plasmide is het omgeven door een restrictie-enzym cloning

region, maar de cloning region is geen onderdeel van de sequentie

Composite Parts Composite Parts zijn functionele eenheden gevormd door een

geordende serie Basic of Composite parts De sequentie zit niet in de registry Functie en design worden wel gedocumenteerd

Soorten BioBricks (vervolg)

Construction Intermediates Construction Intermediates hebben geen specifieke functie Resultaat van de assembly van twee parts Geen documentatie nodig Naam van part is dan: 'BBa_Snnnnn‘, automatisch toegewezen door

registry software

Biobrick nomenclature

Zoeken van BioBrick per type

Voorbeeld inverters

Tabellen met parts

Letter code definities

Plasmiden Plasmide backbone

Plasmide backbone: elk part wordt gezet op een plasmide

Dit bevat de prefix en suffix en een antibioticumresistentiegen voor selectie

Construction plasmide Het ccdB toxic gen verzekert dat

cellen getransformeerd met niet geknipte of gereligeerde plasmiden niet groeien

Gevormde kolonies zijn waarschijnlijk juist geligeerd

Plasmiden (vervolg)

Plasmide met biobrick parts

Structuur van een plasmide: ori, ab-resistentie en cloningsite

Plasmiden: nomenclatuur

pSB#X#

plasmid Synthetic Biology

ori

Ab-resistentiemerker

versienummer

Number Replication origin Copy number Purpose

1 modified pMB1 derived from pUC19

500-700 Easy plasmid DNA purification

2 F and P1 lytic derived from pSCANS-1-BNL

1-2 inducible to high copy

Inducible copy number

3 p15A derived from pMR101 10-12 Multi-plasmid engineered systems

4 rep101, repA derived from pSC101

~5 Small cell to cell copy number variation

5 derived from F plasmid 1-2 Improved plasmid stability

6 pMB1 derived from pBR322 15-20 Multi-plasmid engineered systems

Code Antibiotic

A ampicillin

C chloramphenicol

E erythromycin

G gentamycin

K kanamycin

N neomycin

Na nalidixic acid

R rifampicin

S spectinomycin

St streptomycin

T tetracycline

Tm trimethoprim

Z zeocin

Zoeken naar plasmiden

Restrictie-enzymen en knipplaatsen Restrictie op herkenningssequentie

Enzyme EcoRI Herkent GAATTC en knipt tussen G en de A op

beide strengen. Sticky ends: AATT Gebruikt voor verplaatsing van stuk DNA van ene

plasmide naar andere Knippen uit ene plasmide Andere plasmide openknippen met zelfde enzyme Zuiveren (enzyme werkt niet optimaal,

steractiviteit) De sticky ends annealen via baseparing

(complementair). Na ligatie is de originele restrictiesite hersteld

Restrictie-enzymen en knipplaatsen (vervolg)

SpeI - XbaI (Mixed Sites) Deze twee enzymes hebben compatible sticky

ends maar incompatible recognition sequences Dezelfde sticky ends worden verkregen, CTAG Na ligation vormt de resulterende sequentie geen

knipplaats voor XbaI noch voor SpeI = mixed site.

4 restrictie-enzymen (XbaI, SpeI, EcoRI, PstI) zijn voldoende voor alle DNA manipulaties

Biobrick parts zelf mogen deze herkenningssequenties niet bevatten.

Biobrick assembly Standard assembly

EcoRI and XbaI knipplaatsen links and SpeI and PstI rechts

Knippen van het fragment (blauw) met EcoRI en SpeI

Knippen van plasmide met groen fragment met EcoRI en XbaI

Zuivering m.b.v. gelelektroforese

Ligatie: E-sticky ends met elkaar, S en X

Transformatie naar E.coli en expressie van het construct

Biobrick assembly (vervolg)

Parallel assembly Standard assembly duurt te lang als je

verschillende parts aan elkaar wilt lassen Oplossing: parallel

Rolling assembly Als assembly van 2 parts faalt, zal dit zich in een

later stadium oplossen

Ribosoombindingssites (RBS)

Verschillende RBS binden ribosomen met verschillende efficiëntie Opm. Hoewel dit de

globale efficiëntie niet direct bepaalt is dit toch een belangrijke variabele

Standaard assembly: De RBS zit fysisch nabij het startcodon (Bij BioBricks is dit altijd ATG.)

Protocol voor gebruik Biobricks

“The Spring 2008 Distribution binder” bevat alle parts uit de registry

Het DNA voor alle parts is geïsoleerd en gespot op een filterpapier

Extensieve kwaliteitscontrole

Kwaliteitscontrole Bekijken van platen

In de registry DNA repositories Spring 2008 Bevat alle platen van 2008 Spring DNA Distribution Bekijken van kwaliteitscontrole van elk part


Lokaliseren van een part in de distributie Nummer intikken in search box Klikken op Physical DNA Alle lokaties van een bepaald part Enkel Physical DNA voor parts die Available zijn


Paper Punches

Geschatte duur: 1 minuut per spot Nodige materialen:

TE (10:1, pH 8.0) = tris(hydroxymethyl)aminomethane en EDTA Desired spot location information Olfa cutting materiaal (back of binder) Punch tool 1.5ml PCR tubes


Paper Punches

Werkwijze Warm up 5 μl aliquots of TE buffer to 50ºC in 1.5 ml (PCR) Eppendorf tubes.

Warm a water bath to 42 degrees. Slide the cutting mat under the page in the binder containing the DNA of your

part. Using the punch tool, press down firmly on the spot you want to punch out

while rotating the punch tool BUT NOT while pressing the ejector plunger (see the instructions on the punch tool wrapper). The spot is large enough to allow several punches, so punch at the edge of the spot.

Eject the punched paper spot into the tube containing 5 µL of TE buffer by pressing down on the top part of the punch tool.

Spin the tubes containing filter paper spot and TE for ~3 minutes at 15,000 x g.

Be sure to clean the punch tool before punching out another spot, to prevent cross-contamination of parts.


Punch Tool Cleaning

Geschatte duur: 5 minuten per spot Nodige materialen:

Blotting paper (back of binder) 10% bleach diH2O 95% ethanol


Punch Tool Cleaning

Werkwijze Punch a blank sheet of blotting paper and remove the punched paper. Pull

the punch tool apart, so that the black rod is separated from the column. Dip both the rod and the column briefly into a series of solutions of 10%

bleach, distilled water, a second bath of distilled water, and a final bath of 95% ethanol. Opm: We have found that strong detergents tend to remain on the punch tool and can inhibit transformation of the DNA. Ethanol is preferred over isopropanol for the final cleaning bath, as it dries much faster.

Blot with a Kimwipe (= opkuisdoekje) and allow to dry for 5 minutes. Note that the ethanol can wick up inside the column of the punch tool. It is important that the punch tool be completely dry before punching out another DNA spot, as the ethanol will affect the transformation efficiency.


Transformatie

Geschatte duur: 3 uur (plus 12-14 uur incubation) Materials needed:

Spots soaked in TE 2.0ml conical bottom tubes (one per spot) Ice Competent cells 42º water bath / 37º incubator SOC (check for contamination!) Petri plates with appropriate antibiotic


Transformatie

Werkwijze Soak the spots in 5 µL of the warmed TE for 20 minutes. This allows the

maximum concentration of DNA in solution. Start thawing the competent cells on wet crushed ice.

Chill labeled 2 ml conical bottom tubes on wet ice. Add 2 µL of DNA in TE and 50 µL of thawed TOP10 competent cells to the tubes. In our experience, these volumes have the best transformation efficiency. The 2 ml tubes allow better liquid movement during incubation. Extra eluted DNA may be held at least several weeks frozen or at refrigerator temperature.

Hold the DNA and competent cells on ice for 30 minutes. This improves transformation efficiency by a significant amount.

Heat shock the cells by immersion in a pre-heated water bath at 42ºC for 60 seconds. A water bath is important to improve heat transfer to the cells.


Transformatie

Werkwijze (vervolg) Incubate the cells on ice for 2 minutes. Add 200 μl of SOC broth (check that this broth is not turbid, which would

indicate previous contamination and bacterial growth). This broth should contain no antibiotics.

Incubate the cells at 37ºC for 2 hours while the tubes are rotating or shaking. We have found that growth for 2 hours helps in transformation efficiency, especially for plasmids with antibiotic resistance other than ampicillin.

Label an LB agar plate containing the appropriate antibiotic(s) with the part number, plasmid, and antibiotic resistance. Plate 250 µl of the incubated cell culture on the plate.

Incubate the plate at 37ºC for 12-14 hours, making sure the agar side of the plate is up. If incubated for too long the antibiotics, especially ampicillin, start to break down and un-transformed cells will begin to grow.


Transformatie

Opmerkingen Bij problemen: testen competente cel efficiëntie

http://www.openwetware.org/wiki/TOP10_chemically_competent_cells Plasmide DNA verdunnen tot 10 pg/ul plasmide DNA in TE Efficientie van 108 cfu/ug is goed


Making your own Glycerol Stock

Geschatte duur: ~1 hour (after overnight incubation of single colony liquid culture)

Nodige materialen: Single E. coli colony of transformed part LB broth with appropriate antibiotic 15ml tubes Cryotubes (see below) 80% glycerol Label with appropriate information

Protocol voor gebruik Biobricks Making your own Glycerol Stock

Werkwijze Pick a single colony from the above plate into 10 ml of LB broth with appropriate

antibiotic and grow 12-14 hours to create an overnight liquid culture. Combine 1 ml of overnight culture and 150 μl of a sterile 80% glycerol solution in a

screw-top cryotube. Vortex briefly. Incubate at room temperature for 1/2 hour, and place directly into a –80 degree

freezer. Prior to freezing, label the tube with the Biobrick part number, plasmid, and antibiotic

resistance. Glycerol stocks may be used for future access to the part by scraping small amounts

of frozen culture from the tube without thawing. The culture can be plated or used directly to infect a liquid culture. Plates containing transformed parts may be held in plastic bags at refrigerator temperature for at least two weeks.

The overnight culture can be used to prepare plasmid DNA with any standard miniprep. We have had good luck with the Qiagen miniprep kits.


Antibiotica

Ampicillin: 100mg/ml stock solution (add 1ml/L medium) Kanamycin: 50mg/ml stock solution (add 1ml/L medium) Chloramphenicol: 35mg/ml stock solution (add 1ml/L medium) Tetracycline: 5mg/ml stock solution (add 3ml/L medium)

Opmerkingen Oplossingen in ethanol of 50% ethanol bevriezen niet bij –20

graden, wat handig is voor opslag en gebruik Antibiotica mogen niet toegevoegd worden aan heet medium, koel

het medium tot 55°C vooraleer antibiotica toe te voegen Tetracycline is lichtgevoelig, platen en medium uit het licht bewaren

Meten van promotoractiviteit

Testpromotor, GFP-reporter, backbone plasmide isoleren

Ligeren en cellen transformeren Selectie m.b.v. antibioticumresistentie Activiteit promotor vergelijken met standaardpromotor

(BBa_J23101). Uitgedrukt in Standard Promoter Units (SPUs) zo dat je “part”

vergelijkbaar is met andere in de registry.

Je kan eigen metingen laten omzetten naar SPUs door de online registry calculator te gebruiken

Meten van promotoractiviteit

Promotor- en ribosoomactiviteit in relatieve eenheden van Standard Promoting Units (SPU) of Standard Ribosome Units (SRU)

Karakterisatie Metingen van het populatiegemiddelde

Wanneer is het meten van het gedrag van de populatie of het gemiddelde voldoende?

Als we enkel geïnteresseerd zijn in het gedrag van de meerderheid van de cellen.

1 enkele populatie Tijdsafhankelijk gedrag kan weergegeven worden (via the plate reader)

DNA Plasmide copy nummer

RNA Northern-bloths RT-PCR

Proteins Quantitative westernblots Plate reader

Karakterisatie Population distributions

Wanneer ben je geïnteresseerd in de populatiedistributies van een groot aantal cellen?

Als er meerder populaties zijn Wanneer je duizenden cellen wil onderzoeken i.p.v. 10 of 100den Wanneer je enkel statisch gedrag nodig hebt

DNA Mogelijkheid tot DNAkleuring met DAPI of iets anders om de DNAinhoud

in levende E. coli cellen te karakteriseren? Plasmide copy number? RNA

Versmelt reporters van single cel metingen met flowcytometrie Ontwikkel een hight troughput microscopieversie van één van de single

cell technieken hieronder Proteins

Flow Cytometry gebruikmakende van fluorescent proteïne

Karakterisatie Single cell metingen

Wanneer willen we het gedrag weten in een enkele cel? Wanneer stochastische effecten belang hebben Single molecule resolutie Dynamisch gedrag(want time resolved behavior of each cell

lineage) DNA

Hoe meet je plasmide kopie nummer in een enkele cel? Misschien FCS gebruiken met een DNA-bindend proteïne specifiek

voor je plasmide geconjugeerd met GFP. Vereist veel werk omtrent de methode

Karakterisatie

Single cell measurements RNA

Endy: Journal Club: Le et al 2005 Ido Golding approach Beide benaderingen zijn gebaseerd op hetzelfde soort RNA-MS2

proteïne binding. Le et al. Gebruikt dan FCS om niveaus van gebonden proteïne aan RNA te meten terwijl Golding et al. Individueel RNA tracht te traceren via fluorescentie microscopie. Beide methodes zijn zeer gevoelig maar beiden verstoren waarschijnlijk het systeem dat gemeten wordt.

Protein Fluorescence correlation spectroscopy

Voorbeeld Part:BBa_F2620

Signaling part (want F)

Beschrijving: Een transcriptiefactor [LuxR] (BBa_C0062) die actief is in

aanwezigheid van cel-cel signaalmolecule 3OC6HSL gecontrolleerd door tetR reguleerbare operator (BBa_R0040). Device input is 3OC6HSL. Device output is PoPS van een LuxR-gereguleerde operator.

Voorbeeld: legende

BBa_C0062: luxR repressor/activator Als gecomplexeerd met HSL, bindt LuxR aan de Luxpromotor en activeert de transcriptie van

Pr BBa_R0062, 3OC6HSL

Afkomstig van V. fischeri, bindt met het LuxRgenproduct van het Lux operon. Het resulterende complex kan binden met de lux box en regelt transcriptie van de luxpromotors.

Part:BBa_R0040 Sequenties voor pTet inverting regulator. De promotor staat constitiutief aan en wordt

gerepressed door Tet R. TetR repressie wordt geïnhibeerd door toevoeging van tetracycline en of zijn analoog aTc.

Polymerase Per Second: Polymerase Per Second (PoPS) ; aantal keren dat een RNA polymerase molecule een specifieke locatie (bvb. Promotor, RBS) op het DNA passeert per tijdseenheid. PoPS wordt indirect gemeten door een test gen te introduceren met dezelfde regulatorische regio, maar met een CFP proteïne coderend gen. De fluorescentie wordt hiervan gemeten.

Voorbeeld: transferfunctie De transferfunctie beschrijft het evenwicht tussen input (exogene HSL

concentratie) en output (PoPS) signaal. Een fluorescent reporter device werd hiervoor gebruikt om de output te meten bij verschillende exogene concentraties HSL.

Voorbeeld transferfunctie (2)

Voorbeeld: specificiteit Specificiteit: onderscheid moet gemaakt kunnen worden tussen de echte

input en andere gelijkende inputs (veel AHL molecules met een gelijkende structuur aan 3OC6HSL ). Karakterisatie van de respons van BBa_F2620 op andere AHL molecules is nodig.

Transferfuncties voor 8 verschillende AHL molecules als input

Voorbeeld: responstijd

Responstijd meet de tijd voor de respons van de output op de input. In dit voorbeeld: respons van BBa_F2620 gemeten d.m.v. stijging van het

inputsignaal (AHL concentratie van 0 tot 100 nM )stap voor stap

Voorbeeld: stabiliteit

“Device” stabiliteit beschrijft hoe de transferfunctie van het device verandert na verschillende rondes van celdeling en in cultuur brengen.

reporter device, BBa_E0240 to indirectly measure the output from BBa_F2620

Performantie van het device werd gemeten onder hoge en lage inputcondities over 92 generaties. Performantie

constantPerformantie daalt snel na 74 generaties

Voorbeeld stabiliteit (2)

Oorzaak van dalende performantie na 74 generaties: Deletiemutant mutant die in het begin al in een fractie

van de cellen aanwezig was (die na 74 generaties de cultuur overheerst bij hoge input)

Voorbeeld Part:BBa_F2620

Compatibiliteit Bacteriële stam:

transcriptie hangt af van de gebruikte stam (juiste sigmafactoren, RNApolymerases)

Plasmiden Device werkt niet op alle plasmiden

Devices Mogelijke interferentie met andere devices

Cel signalisatie Crosstalk tussen verschillende quorum sensing systemen

Let’s start building!

Tutorial BioBricks

Documents

Transcript of Tutorial BioBricks