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MOHAMMED V DE RABAT

FACULTE DE MEDECINE ET DE PHARMACIE - RABAT

DOYENS HONORAIRES :

1962 – 1969 : Professeur Abdelmalek FARAJ

1969 – 1974 : Professeur Abdellatif BERBICH

1974 – 1981 : Professeur Bachir LAZRAK

1981 – 1989 : Professeur Taieb CHKILI

1989 – 1997 : Professeur Mohamed Tahar ALAOUI

1997 – 2003 : Professeur Abdelmajid BELMAHI

2003 - 2013 : Professeur Najia HAJJAJ – HASSOUNI

ADMINISTRATION :

Doyen

Professeur Mohamed ADNAOUI

Vice-Doyen chargé des Affaires Académiques et estudiantines

Professeur Brahim LEKEHAL

Vice-Doyen chargé de la Recherche et de la Coopération

Professeur Toufiq DAKKA

Vice-Doyen chargé des Affaires Spécifiques à la Pharmacie

Professeur Jamal TAOUFIK

Secrétaire Général

Mr. Mohamed KARRA

1 - ENSEIGNANTS-CHERCHEURS MEDECINS ET PHARMACIENS

PROFESSEURS :

DECEMBRE 1984

Pr. MAAOUNI Abdelaziz Médecine Interne – Clinique Royale

Pr. MAAZOUZI Ahmed Wajdi Anesthésie -Réanimation

Pr. SETTAF Abdellatif Pathologie Chirurgicale

NOVEMBRE ET DECEMBRE 1985

Pr. BENSAID Younes Pathologie Chirurgicale

JANVIER, FEVRIER ET DECEMBRE 1987

Pr. LACHKAR Hassan Médecine Interne

Pr. YAHYAOUI Mohamed Neurologie

DECEMBRE 1989

Pr. ADNAOUI Mohamed Médecine Interne –Doyen de la FMPR

Pr. OUAZZANI Taïbi Mohamed Réda Neurologie

JANVIER ET NOVEMBRE 1990

Pr. HACHIM Mohammed* Médecine-Interne

Pr. KHARBACH Aîcha Gynécologie -Obstétrique

Pr. TAZI Saoud Anas Anesthésie Réanimation

FEVRIER AVRIL JUILLET ET DECEMBRE 1991

Pr. AZZOUZI Abderrahim Anesthésie Réanimation- Doyen de FMPO

Pr. BAYAHIA Rabéa Néphrologie

Pr. BELKOUCHI Abdelkader Chirurgie Générale

Pr. BENCHEKROUN Belabbes Abdellatif Chirurgie Générale

Pr. BENSOUDA Yahia Pharmacie galénique

Pr. BERRAHO Amina Ophtalmologie

Pr. BEZAD Rachid Gynécologie Obstétrique Méd. Chef Maternité des

Orangers

Pr. CHERRAH Yahia Pharmacologie

Pr. CHOKAIRI Omar Histologie Embryologie

Pr. KHATTAB Mohamed Pédiatrie

Pr. SOULAYMANI Rachida Pharmacologie- Dir. du Centre National PV Rabat

Pr. TAOUFIK Jamal Chimie thérapeutique V.D à la pharmacie+Dir. du CEDOC +

Directeur du Médicament

DECEMBRE 1992

Pr. AHALLAT Mohamed Chirurgie Générale Doyen de FMPT

Pr. BENSOUDA Adil Anesthésie Réanimation

Pr. CHAHED OUAZZANI Laaziza Gastro-Entérologie

Pr. CHRAIBI Chafiq Gynécologie Obstétrique

Pr. EL OUAHABI Abdessamad Neurochirurgie

Pr. FELLAT Rokaya Cardiologie

Pr. GHAFIR Driss* Médecine Interne

Pr. JIDDANE Mohamed Anatomie

Pr. TAGHY Ahmed Chirurgie Générale

Pr. ZOUHDI Mimoun Microbiologie

MARS 1994

Pr. BENJAAFAR Noureddine Radiothérapie

Pr. BEN RAIS Nozha Biophysique

Pr. CAOUI Malika Biophysique

Pr. CHRAIBI Abdelmjid

Endocrinologie et Maladies Métaboliques Doyen de la

FMPA

Pr. EL AMRANI Sabah Gynécologie Obstétrique

Pr. EL BARDOUNI Ahmed Traumato-Orthopédie

Pr. EL HASSANI My Rachid Radiologie

Pr. ERROUGANI Abdelkader Chirurgie Générale – Directeur du CHIS-Rabat

Pr. ESSAKALI Malika Immunologie

Pr. ETTAYEBI Fouad Chirurgie Pédiatrique

Pr. HASSAM Badredine Dermatologie

Pr. IFRINE Lahssan Chirurgie Générale

Pr. MAHFOUD Mustapha Traumatologie – Orthopédie

Pr. RHRAB Brahim Gynécologie –Obstétrique

Pr. SENOUCI Karima Dermatologie

MARS 1994

Pr. ABBAR Mohamed* Urologie Directeur Hôpital My Ismail Meknès

Pr. ABDELHAK M‘barek Chirurgie – Pédiatrique

Pr. BENTAHILA Abdelali Pédiatrie

Pr. BENYAHIA Mohammed Ali Gynécologie – Obstétrique

Pr. BERRADA Mohamed Saleh Traumatologie – Orthopédie

Pr. CHERKAOUI Lalla Ouafae Ophtalmologie

Pr. LAKHDAR Amina Gynécologie Obstétrique

Pr. MOUANE Nezha Pédiatrie

MARS 1995

Pr. ABOUQUAL Redouane Réanimation Médicale

Pr. AMRAOUI Mohamed Chirurgie Générale

Pr. BAIDADA Abdelaziz Gynécologie Obstétrique

Pr. BARGACH Samir Gynécologie Obstétrique

Pr. DRISSI KAMILI Med Nordine* Anesthésie Réanimation

Pr. EL MESNAOUI Abbes Chirurgie Générale

Pr. ESSAKALI HOUSSYNI Leila Oto-Rhino-Laryngologie

Pr. HDA Abdelhamid* Cardiologie Inspecteur du Service de Santé des FAR

Pr. IBEN ATTYA ANDALOUSSI Ahmed Urologie

Pr. OUAZZANI CHAHDI Bahia Ophtalmologie

Pr. SEFIANI Abdelaziz Génétique

Pr. ZEGGWAGH Amine Ali Réanimation Médicale

DECEMBRE 1996

Pr. AMIL Touriya* Radiologie

Pr. BELKACEM Rachid Chirurgie Pédiatrie

Pr. BOULANOUAR Abdelkrim Ophtalmologie

Pr. EL ALAMI EL FARICHA EL Hassan Chirurgie Générale

Pr. GAOUZI Ahmed Pédiatrie

Pr. MAHFOUDI M‘barek* Radiologie

Pr. OUZEDDOUN Naima Néphrologie

Pr. ZBIR EL Mehdi* Cardiologie DirecteurHôp.Mil. d’Instruction Med V Rabat

NOVEMBRE 1997

Pr. ALAMI Mohamed Hassan Gynécologie-Obstétrique

Pr. BEN SLIMANE Lounis Urologie

Pr. BIROUK Nazha Neurologie

Pr. ERREIMI Naima Pédiatrie

Pr. FELLAT Nadia Cardiologie

Pr. KADDOURI Noureddine Chirurgie Pédiatrique

Pr. KOUTANI Abdellatif Urologie

Pr. LAHLOU Mohamed Khalid Chirurgie Générale

Pr. MAHRAOUI CHAFIQ Pédiatrie

Pr. TOUFIQ Jallal Psychiatrie Directeur Hôp.Ar-razi Salé

Pr. YOUSFI MALKI Mounia Gynécologie Obstétrique

NOVEMBRE 1998

Pr. BENOMAR ALI Neurologie Doyen de la FMP Abulcassis

Pr. BOUGTAB Abdesslam Chirurgie Générale

Pr. ER RIHANI Hassan Oncologie Médicale

Pr. BENKIRANE Majid* Hématologie

JANVIER 2000

Pr. ABID Ahmed* Pneumo-phtisiologie

Pr. AIT OUAMAR Hassan Pédiatrie

Pr. BENJELLOUN Dakhama Badr.Sououd Pédiatrie

Pr. BOURKADI Jamal-Eddine Pneumo-phtisiologie Directeur Hôp. My Youssef

Pr. CHARIF CHEFCHAOUNI Al Montacer Chirurgie Générale

Pr. ECHARRAB El Mahjoub Chirurgie Générale

Pr. EL FTOUH Mustapha Pneumo-phtisiologie

Pr. EL MOSTARCHID Brahim* Neurochirurgie

Pr. MAHMOUDI Abdelkrim* Anesthésie-Réanimation

Pr. TACHINANTE Rajae Anesthésie-Réanimation

Pr. TAZI MEZALEK Zoubida Médecine Interne

NOVEMBRE 2000

Pr. AIDI Saadia Neurologie

Pr. AJANA Fatima Zohra Gastro-Entérologie

Pr. BENAMR Said Chirurgie Générale

Pr. CHERTI Mohammed Cardiologie

Pr. ECH-CHERIF EL KETTANI Selma Anesthésie-Réanimation

Pr. EL HASSANI Amine Pédiatrie - Directeur Hôp.Cheikh Zaid

Pr. EL KHADER Khalid Urologie

Pr. EL MAGHRAOUI Abdellah* Rhumatologie

Pr. GHARBI Mohamed El Hassan Endocrinologie et Maladies Métaboliques

Pr. MDAGHRI ALAOUI Asmae Pédiatrie

Pr. ROUIMI Abdelhadi* Neurologie

DECEMBRE 2000

Pr.ZOHAIR ABDELLAH * ORL

Pr. BALKHI Hicham* Anesthésie-Réanimation

Pr. BENABDELJLIL Maria Neurologie

Pr. BENAMAR Loubna Néphrologie

Pr. BENAMOR Jouda Pneumo-phtisiologie

Pr. BENELBARHDADI Imane Gastro-Entérologie

Pr. BENNANI Rajae Cardiologie

Pr. BENOUACHANE Thami Pédiatrie

Pr. BEZZA Ahmed* Rhumatologie

Pr. BOUCHIKHI IDRISSI Med Larbi Anatomie

Pr. BOUMDIN El Hassane* Radiologie

Pr. CHAT Latifa Radiologie

Pr. DAALI Mustapha* Chirurgie Générale

Pr. DRISSI Sidi Mourad* Radiologie

Pr. EL HIJRI Ahmed Anesthésie-Réanimation

Pr. EL MAAQILI Moulay Rachid Neuro-Chirurgie

Pr. EL MADHI Tarik Chirurgie-Pédiatrique

Pr. EL OUNANI Mohamed Chirurgie Générale

Pr. ETTAIR Said Pédiatrie - Directeur Hôp. d’EnfantsRabat

Pr. GAZZAZ Miloudi* Neuro-Chirurgie

Pr. HRORA Abdelmalek Chirurgie Générale

Pr. KABBAJ Saad Anesthésie-Réanimation

Pr. KABIRI EL Hassane* Chirurgie Thoracique

Pr. LAMRANI Moulay Omar Traumatologie Orthopédie

Pr. LEKEHAL Brahim Chirurgie Vasculaire Périphérique

Pr. MAHASSIN Fattouma* Médecine Interne

Pr. MEDARHRI Jalil Chirurgie Générale

Pr. MIKDAME Mohammed* Hématologie Clinique

Pr. MOHSINE Raouf Chirurgie Générale

Pr. NOUINI Yassine Urologie - Directeur Hôpital Ibn Sina

Pr. SABBAH Farid Chirurgie Générale

Pr. SEFIANI Yasser Chirurgie Vasculaire Périphérique

Pr. TAOUFIQ BENCHEKROUN Soumia Pédiatrie

DECEMBRE 2002

Pr. AL BOUZIDI Abderrahmane* Anatomie Pathologique

Pr. AMEUR Ahmed * Urologie

Pr. AMRI Rachida Cardiologie

Pr. AOURARH Aziz* Gastro-Entérologie

Pr. BAMOU Youssef * Biochimie-Chimie

Pr. BELMEJDOUB Ghizlene* Endocrinologie et Maladies Métaboliques

Pr. BENZEKRI Laila Dermatologie

Pr. BENZZOUBEIR Nadia Gastro-Entérologie

Pr. BERNOUSSI Zakiya Anatomie Pathologique

Pr. BICHRA Mohamed Zakariya* Psychiatrie

Pr. CHOHO Abdelkrim * Chirurgie Générale

Pr. CHKIRATE Bouchra Pédiatrie

Pr. EL ALAMI EL Fellous Sidi Zouhair Chirurgie Pédiatrique

Pr. EL HAOURI Mohamed * Dermatologie

Pr. FILALI ADIB Abdelhai Gynécologie Obstétrique

Pr. HAJJI Zakia Ophtalmologie

Pr. IKEN Ali Urologie

Pr. JAAFAR Abdeloihab* Traumatologie Orthopédie

Pr. KRIOUILE Yamina Pédiatrie

Pr. MABROUK Hfid* Traumatologie Orthopédie

Pr. MOUSSAOUI RAHALI Driss* Gynécologie Obstétrique

Pr. OUJILAL Abdelilah Oto-Rhino-Laryngologie

Pr. RACHID Khalid * Traumatologie Orthopédie

Pr. RAISS Mohamed Chirurgie Générale

Pr. RGUIBI IDRISSI Sidi Mustapha* Pneumo-phtisiologie

Pr. RHOU Hakima Néphrologie

Pr. SIAH Samir * Anesthésie Réanimation

Pr. THIMOU Amal Pédiatrie

Pr. ZENTAR Aziz* Chirurgie Générale

JANVIER 2004

Pr. ABDELLAH El Hassan Ophtalmologie

Pr. AMRANI Mariam Anatomie Pathologique

Pr. BENBOUZID Mohammed Anas Oto-Rhino-Laryngologie

Pr. BENKIRANE Ahmed* Gastro-Entérologie

Pr. BOULAADAS Malik Stomatologie et Chirurgie Maxillo-faciale

Pr. BOURAZZA Ahmed* Neurologie

Pr. CHAGAR Belkacem* Traumatologie Orthopédie

Pr. CHERRADI Nadia Anatomie Pathologique

Pr. EL FENNI Jamal* Radiologie

Pr. EL HANCHI ZAKI Gynécologie Obstétrique

Pr. EL KHORASSANI Mohamed Pédiatrie

Pr. EL YOUNASSI Badreddine* Cardiologie

Pr. HACHI Hafid Chirurgie Générale

Pr. JABOUIRIK Fatima Pédiatrie

Pr. KHARMAZ Mohamed Traumatologie Orthopédie

Pr. MOUGHIL Said Chirurgie Cardio-Vasculaire

Pr. OUBAAZ Abdelbarre * Ophtalmologie

Pr. TARIB Abdelilah* Pharmacie Clinique

Pr. TIJAMI Fouad Chirurgie Générale

Pr. ZARZUR Jamila Cardiologie

JANVIER 2005

Pr. ABBASSI Abdellah Chirurgie Réparatrice et Plastique

Pr. AL KANDRY Sif Eddine* Chirurgie Générale

Pr. ALLALI Fadoua Rhumatologie

Pr. AMAZOUZI Abdellah Ophtalmologie

Pr. AZIZ Noureddine* Radiologie

Pr. BAHIRI Rachid Rhumatologie Directeur Hôp. Al Ayachi Salé

Pr. BARKAT Amina Pédiatrie

Pr. BENYASS Aatif Cardiologie

Pr. DOUDOUH Abderrahim* Biophysique

Pr. EL HAMZAOUI Sakina * Microbiologie

Pr. HAJJI Leila Cardiologie (mise en disponibilité

Pr. HESSISSEN Leila Pédiatrie

Pr. JIDAL Mohamed* Radiologie

Pr. LAAROUSSI Mohamed Chirurgie Cardio-vasculaire

Pr. LYAGOUBI Mohammed Parasitologie

Pr. RAGALA Abdelhak Gynécologie Obstétrique

Pr. SBIHI Souad Histo-Embryologie Cytogénétique

Pr. ZERAIDI Najia Gynécologie Obstétrique

AVRIL 2006

Pr. ACHEMLAL Lahsen* Rhumatologie

Pr. AKJOUJ Said* Radiologie

Pr. BELMEKKI Abdelkader* Hématologie

Pr. BENCHEIKH Razika O.R.L

Pr. BIYI Abdelhamid* Biophysique

Pr. BOUHAFS Mohamed El Amine Chirurgie - Pédiatrique

Pr. BOULAHYA Abdellatif* Chirurgie Cardio – Vasculaire.

Pr. CHENGUETI ANSARI Anas Gynécologie Obstétrique

Pr. DOGHMI Nawal Cardiologie

Pr. FELLAT Ibtissam Cardiologie

Pr. FAROUDY Mamoun Anesthésie Réanimation

Pr. HARMOUCHE Hicham Médecine Interne

Pr. HANAFI Sidi Mohamed* Anesthésie Réanimation

Pr. IDRISS LAHLOU Amine* Microbiologie

Pr. JROUNDI Laila Radiologie

Pr. KARMOUNI Tariq Urologie

Pr. KILI Amina Pédiatrie

Pr. KISRA Hassan Psychiatrie

Pr. KISRA Mounir Chirurgie – Pédiatrique

Pr. LAATIRIS Abdelkader* Pharmacie Galénique

Pr. LMIMOUNI Badreddine* Parasitologie

Pr. MANSOURI Hamid* Radiothérapie

Pr. OUANASS Abderrazzak Psychiatrie

Pr. SAFI Soumaya* Endocrinologie

Pr. SEKKAT Fatima Zahra Psychiatrie

Pr. SOUALHI Mouna Pneumo – Phtisiologie

Pr. TELLAL Saida* Biochimie

Pr. ZAHRAOUI Rachida Pneumo – Phtisiologie

DECEMBRE 2006

Pr SAIR Khalid Chirurgie générale Dir. Hôp.Av.Marrakech

OCTOBRE 2007

Pr. ABIDI Khalid Réanimation médicale

Pr. ACHACHI Leila Pneumo phtisiologie

Pr. ACHOUR Abdessamad* Chirurgie générale

Pr. AIT HOUSSA Mahdi * Chirurgie cardio vasculaire

Pr. AMHAJJI Larbi * Traumatologie orthopédie

Pr. AOUFI Sarra Parasitologie

Pr. BAITE Abdelouahed * Anesthésie réanimation Directeur ERSSM

Pr. BALOUCH Lhousaine * Biochimie-chimie

Pr. BENZIANE Hamid * Pharmacie clinique

Pr. BOUTIMZINE Nourdine Ophtalmologie

Pr. CHERKAOUI Naoual * Pharmacie galénique

Pr. EHIRCHIOU Abdelkader * Chirurgie générale

Pr. EL BEKKALI Youssef * Chirurgie cardio-vasculaire

Pr. EL ABSI Mohamed Chirurgie générale

Pr. EL MOUSSAOUI Rachid Anesthésie réanimation

Pr. EL OMARI Fatima Psychiatrie

Pr. GHARIB Noureddine Chirurgie plastique et réparatrice

Pr. HADADI Khalid * Radiothérapie

Pr. ICHOU Mohamed * Oncologie médicale

Pr. ISMAILI Nadia Dermatologie

Pr. KEBDANI Tayeb Radiothérapie

Pr. LALAOUI SALIM Jaafar * Anesthésie réanimation

Pr. LOUZI Lhoussain * Microbiologie

Pr. MADANI Naoufel Réanimation médicale

Pr. MAHI Mohamed * Radiologie

Pr. MARC Karima Pneumo phtisiologie

Pr. MASRAR Azlarab Hématologie biologique

Pr. MRANI Saad * Virologie

Pr. OUZZIF Ez zohra * Biochimie-chimie

Pr. RABHI Monsef * Médecine interne

Pr. RADOUANE Bouchaib* Radiologie

Pr. SEFFAR Myriame Microbiologie

Pr. SEKHSOKH Yessine * Microbiologie

Pr. SIFAT Hassan * Radiothérapie

Pr. TABERKANET Mustafa * Chirurgie vasculaire périphérique

Pr. TACHFOUTI Samira Ophtalmologie

Pr. TAJDINE Mohammed Tariq* Chirurgie générale

Pr. TANANE Mansour * Traumatologie-orthopédie

Pr. TLIGUI Houssain Parasitologie

Pr. TOUATI Zakia Cardiologie

DECEMBRE 2008

Pr TAHIRI My El Hassan* Chirurgie Générale

MARS 2009

Pr. ABOUZAHIR Ali * Médecine interne

Pr. AGADR Aomar * Pédiatrie

Pr. AIT ALI Abdelmounaim * Chirurgie Générale

Pr. AIT BENHADDOU El Hachmia Neurologie

Pr. AKHADDAR Ali * Neuro-chirurgie

Pr. ALLALI Nazik Radiologie

Pr. AMINE Bouchra Rhumatologie

Pr. ARKHA Yassir Neuro-chirurgie Directeur Hôp.des Spécialités

Pr. BELYAMANI Lahcen* Anesthésie Réanimation

Pr. BJIJOU Younes Anatomie

Pr. BOUHSAIN Sanae * Biochimie-chimie

Pr. BOUI Mohammed * Dermatologie

Pr. BOUNAIM Ahmed * Chirurgie Générale

Pr. BOUSSOUGA Mostapha * Traumatologie-orthopédie

Pr. CHTATA Hassan Toufik * Chirurgie Vasculaire Périphérique

Pr. DOGHMI Kamal * Hématologie clinique

Pr. EL MALKI Hadj Omar Chirurgie Générale

Pr. EL OUENNASS Mostapha* Microbiologie

Pr. ENNIBI Khalid * Médecine interne

Pr. FATHI Khalid Gynécologie obstétrique

Pr. HASSIKOU Hasna * Rhumatologie

Pr. KABBAJ Nawal Gastro-entérologie

Pr. KABIRI Meryem Pédiatrie

Pr. KARBOUBI Lamya Pédiatrie

Pr. LAMSAOURI Jamal * Chimie Thérapeutique

Pr. MARMADE Lahcen Chirurgie Cardio-vasculaire

Pr. MESKINI Toufik Pédiatrie

Pr. MESSAOUDI Nezha * Hématologie biologique

Pr. MSSROURI Rahal Chirurgie Générale

Pr. NASSAR Ittimade Radiologie

Pr. OUKERRAJ Latifa Cardiologie

Pr. RHORFI Ismail Abderrahmani * Pneumo-Phtisiologie

OCTOBRE 2010

Pr. ALILOU Mustapha Anesthésie réanimation

Pr. AMEZIANE Taoufiq* Médecine Interne

Pr. BELAGUID Abdelaziz Physiologie

Pr. CHADLI Mariama* Microbiologie

Pr. CHEMSI Mohamed* Médecine Aéronautique

Pr. DAMI Abdellah* Biochimie- Chimie

Pr. DARBI Abdellatif* Radiologie

Pr. DENDANE Mohammed Anouar Chirurgie Pédiatrique

Pr. EL HAFIDI Naima Pédiatrie

Pr. EL KHARRAS Abdennasser* Radiologie

Pr. EL MAZOUZ Samir Chirurgie Plastique et Réparatrice

Pr. EL SAYEGH Hachem Urologie

Pr. ERRABIH Ikram Gastro-Entérologie

Pr. LAMALMI Najat Anatomie Pathologique

Pr. MOSADIK Ahlam Anesthésie Réanimation

Pr. MOUJAHID Mountassir* Chirurgie Générale

Pr. NAZIH Mouna* Hématologie

Pr. ZOUAIDIA Fouad Anatomie Pathologique

DECEMBRE 2010

Pr.ZNATI Kaoutar Anatomie Pathologique

MAI 2012

Pr. AMRANI Abdelouahed Chirurgie pédiatrique

Pr. ABOUELALAA Khalil * Anesthésie Réanimation

Pr. BENCHEBBA Driss * Traumatologie-orthopédie

Pr. DRISSI Mohamed * Anesthésie Réanimation

Pr. EL ALAOUI MHAMDI Mouna Chirurgie Générale

Pr. EL KHATTABI Abdessadek * Médecine Interne

Pr. EL OUAZZANI Hanane * Pneumophtisiologie

Pr. ER-RAJI Mounir Chirurgie Pédiatrique

Pr. JAHID Ahmed Anatomie Pathologique

Pr. MEHSSANI Jamal * Psychiatrie

Pr. RAISSOUNI Maha * Cardiologie

* Enseignants Militaires

FEVRIER 2013

Pr.AHID Samir Pharmacologie

Pr.AIT EL CADI Mina Toxicologie

Pr.AMRANI HANCHI Laila Gastro-Entérologie

Pr.AMOR Mourad Anesthésie Réanimation

Pr.AWAB Almahdi Anesthésie Réanimation

Pr.BELAYACHI Jihane Réanimation Médicale

Pr.BELKHADIR Zakaria Houssain Anesthésie Réanimation

Pr.BENCHEKROUN Laila Biochimie-Chimie

Pr.BENKIRANE Souad Hématologie

Pr.BENNANA Ahmed* Informatique Pharmaceutique

Pr.BENSGHIR Mustapha * Anesthésie Réanimation

Pr.BENYAHIA Mohammed * Néphrologie

Pr.BOUATIA Mustapha Chimie Analytique et Bromatologie

Pr.BOUABID Ahmed Salim* Traumatologie orthopédie

Pr BOUTARBOUCH Mahjouba Anatomie

Pr.CHAIB Ali * Cardiologie

Pr.DENDANE Tarek Réanimation Médicale

Pr.DINI Nouzha * Pédiatrie

Pr.ECH-CHERIF EL KETTANI Mohamed Ali Anesthésie Réanimation

Pr.ECH-CHERIF EL KETTANI Najwa Radiologie

Pr.EL FATEMI NIZARE Neuro-chirurgie

Pr.EL GUERROUJ Hasnae Médecine Nucléaire

Pr.EL HARTI Jaouad Chimie Thérapeutique

Pr.EL JAOUDI Rachid * Toxicologie

Pr.EL KABABRI Maria Pédiatrie

Pr.EL KHANNOUSSI Basma Anatomie Pathologique

Pr.EL KHLOUFI Samir Anatomie

Pr.EL KORAICHI Alae Anesthésie Réanimation

Pr.EN-NOUALI Hassane * Radiologie

Pr.ERRGUIG Laila Physiologie

Pr.FIKRI Meryem Radiologie

Pr.GHFIR Imade Médecine Nucléaire

Pr.IMANE Zineb Pédiatrie

Pr.IRAQI Hind Endocrinologie et maladies métaboliques

Pr.KABBAJ Hakima Microbiologie

Pr.KADIRI Mohamed * Psychiatrie

Pr.MAAMAR Mouna Fatima Zahra Médecine Interne

Pr.MEDDAH Bouchra Pharmacologie

Pr.MELHAOUI Adyl Neuro-chirurgie

Pr.MRABTI Hind Oncologie Médicale

Pr.NEJJARI Rachid Pharmacognosie

Pr.OUBEJJA Houda Chirugie Pédiatrique

Pr.OUKABLI Mohamed * Anatomie Pathologique

Pr.RAHALI Younes Pharmacie Galénique

Pr.RATBI Ilham Génétique

Pr.RAHMANI Mounia Neurologie

Pr.REDA Karim * Ophtalmologie

Pr.REGRAGUI Wafa Neurologie

Pr.RKAIN Hanan Physiologie

Pr.ROSTOM Samira Rhumatologie

Pr.ROUAS Lamiaa Anatomie Pathologique

Pr.ROUIBAA Fedoua * Gastro-Entérologie

Pr SALIHOUN Mouna Gastro-Entérologie

Pr.SAYAH Rochde Chirurgie Cardio-Vasculaire

Pr.SEDDIK Hassan * Gastro-Entérologie

Pr.ZERHOUNI Hicham Chirurgie Pédiatrique

Pr.ZINE Ali* Traumatologie Orthopédie

AVRIL 2013

Pr.EL KHATIB MOHAMED KARIM * Stomatologie et Chirurgie Maxillo-faciale

MAI 2013

Pr.BOUSLIMAN Yassir Toxicologie

MARS 2014

Pr. ACHIR Abdellah Chirurgie Thoracique

Pr.BENCHAKROUN Mohammed * Traumatologie- Orthopédie

Pr.BOUCHIKH Mohammed Chirurgie Thoracique

Pr. EL KABBAJ Driss * Néphrologie

Pr. EL MACHTANI IDRISSI Samira * Biochimie-Chimie

Pr. HARDIZI Houyam Histologie- Embryologie-Cytogénétique

Pr. HASSANI Amale * Pédiatrie

Pr. HERRAK Laila Pneumologie

Pr. JANANE Abdellah * Urologie

Pr. JEAIDI Anass * Hématologie Biologique

Pr. KOUACH Jaouad* Génycologie-Obstétrique

Pr. LEMNOUER Abdelhay* Microbiologie

Pr. MAKRAM Sanaa * Pharmacologie

Pr. OULAHYANE Rachid* Chirurgie Pédiatrique

Pr. RHISSASSI Mohamed Jaafar CCV

Pr. SABRY Mohamed* Cardiologie

Pr. SEKKACH Youssef* Médecine Interne

Pr. TAZI MOUKHA Zakia Génécologie-Obstétrique

AVRIL 2014

Pr.ZALAGH Mohammed ORL

PROFESSEURS AGREGES :

DECEMBRE 2014

Pr. ABILKASSEM Rachid* Pédiatrie

Pr. AIT BOUGHIMA Fadila Médecine Légale

Pr. BEKKALI Hicham * Anesthésie-Réanimation

Pr. BENAZZOU Salma Chirurgie Maxillo-Faciale

Pr. BOUABDELLAH Mounya Biochimie-Chimie

Pr. BOUCHRIK Mourad* Parasitologie

Pr. DERRAJI Soufiane* Pharmacie Clinique

Pr. DOBLALI Taoufik* Microbiologie

Pr. EL AYOUBI EL IDRISSI Ali Anatomie

Pr. EL GHADBANE Abdedaim Hatim* Anesthésie-Réanimation

Pr. EL MARJANY Mohammed* Radiothérapie

Pr. FEJJAL Nawfal Chirurgie Réparatrice et Plastique

Pr. JAHIDI Mohamed* O.R.L

Pr. LAKHAL Zouhair* Cardiologie

Pr. OUDGHIRI NEZHA Anesthésie-Réanimation

Pr. RAMI Mohamed Chirurgie Pédiatrique

Pr. SABIR Maria Psychiatrie

Pr. SBAI IDRISSI Karim* Médecine préventive, santé publique et Hyg.

AOUT 2015

Pr. MEZIANE Meryem Dermatologie

Pr. TAHRI Latifa Rhumatologie

JANVIER 2016

Pr. BENKABBOU Amine Chirurgie Générale

Pr. EL ASRI Fouad* Ophtalmologie

Pr. ERRAMI Noureddine* O.R.L

Pr. NITASSI Sophia O.R.L

JUIN 2017

Pr. ABI Rachid* Microbiologie

Pr. ASFALOU Ilyasse* Cardiologie

Pr. BOUAYTI El Arbi* Médecine préventive, santé publique et Hyg.

Pr. BOUTAYEB Saber Oncologie Médicale

Pr. EL GHISSASSI Ibrahim Oncologie Médicale

Pr. OURAINI Saloua* O.R.L

Pr. RAZINE Rachid Médecine préventive, santé publique et Hyg.

Pr. ZRARA Abdelhamid* Immunologie

* Enseignants Militaires

2 - ENSEIGNANTS-CHERCHEURS SCIENTIFIQUES

PROFESSEURS/Prs. HABILITES

Pr. ABOUDRAR Saadia Physiologie

Pr. ALAMI OUHABI Naima Biochimie-chimie

Pr. ALAOUI KATIM Pharmacologie

Pr. ALAOUI SLIMANI Lalla Naïma Histologie-Embryologie

Pr. ANSAR M‘hammed Chimie Organique et Pharmacie Chimique

Pr .BARKIYOU Malika Histologie-Embryologie

Pr. BOUHOUCHE Ahmed Génétique Humaine

Pr. BOUKLOUZE Abdelaziz Applications Pharmaceutiques

Pr. CHAHED OUAZZANI Lalla Chadia Biochimie-chimie

Pr. DAKKA Taoufiq Physiologie

Pr. FAOUZI Moulay El Abbes Pharmacologie

Pr. IBRAHIMI Azeddine Biologie moléculaire/Biotechnologie

Pr. KHANFRI Jamal Eddine Biologie

Pr. OULAD BOUYAHYA IDRISSI Med Chimie Organique

Pr. REDHA Ahlam Chimie

Pr. TOUATI Driss Pharmacognosie

Pr. ZAHIDI Ahmed Pharmacologie

Mise à jour le 10/10/2018

Khaled Abdellah

Chef du Service des Ressources Humaines

Dédicaces

Après avoir rendu grâce à ALLAH

Le tout Puissant, le Miséricordieux ; ainsi qu’à

son prophète Mohamed, paix et salut sur lui.

Par la grâce et la bonté de Dieu qui a toujours

guidé nos pas et qui nous a donné la chance et la

force d’étudier et d’en arriver là.

Je dédie cette thèse…

A mes très chers Parents

Mr Mimoun LAABOUB

et Mme Meryem KETTABI

A qui je dois tout, et pour qui aucune dédicace ne saurait exprimer mon profond

amour, ma gratitude, ni mon infinie reconnaissance.

Merci pour l’ampleur des sacrifices et des souffrances que vous avez enduré pour

mon éducation et pour mon bien être. Vous n’avez jamais cessé de lutter.

Vos prières et votre présence à mes côtés ont été pour moi d’un grand soutien

moral tout au long de ma vie.

Puisse Dieu le tout Puissant vous préserve, vous accorde santé, bonheur,

quiétude d’esprit et vous protège de tout malafin que je puisse vous rendre un

minimum de ce que je vous dois.

A mon très cher frère Ismail, et à Ma très chère sœur Zineb

Je ne peux exprimer à travers ces lignes tous mes sentiments d’amour et de

tendresse envers vous.

Jevous aime et je vous souhaite tout le bonheur et le succès du monde.

Que Dieu vous protège et vous réserve le meilleur avenir, et puisse l’amour et la

fraternité nous unir à jamais.

A ma très chère sœur Khadija et son mari Marzouk et mes

petites nièces Sophia et Maria

A ceux qui m’ont toujours aidé, écouté, soutenuet encouragé tout au long de mon

parcours.

Les mots ne suffisent guère pour exprimer l’attachement, l’amour

etl’affectionque je porte pour vous.

A chaque moment important vous étiez à mes côtés.

Votre sincérité, la bonté de vos cœurs et vos conseils avisés m’ont toujours

guidé dans ma vie.

Je vous dédie ce travail avec tous mes vœux de bonheur, de santé et de

réussite.

A la mémoire de mes très chers grands-parents

Que Dieu les accueille en Sa sainte miséricorde.

J’aurai tant aimé que vous soyez à mes côtés ce jour. Vous êtes dans mon cœur.

A toute la grande famille, à mes oncles, mes tantes, mes cousines

et mes cousins

J’aurais aimé vous rendre hommage un par un.

Veuillez trouver dans ce travail l’expression de mon affection la plus sincère.

Que Dieu tout puissant vous protège et vous procure bonheur et prospérité.

A mon très cher Soufiane ZAROUK

En témoignage de toute l’affection et de l’attachement qui nous unit.

Pour ta présence à chaque fois que j’en ai besoin, ta gentillesse, tes conseils

judicieux et tes encouragements, je te dédie ce travail en l’expression des

sentiments profonds que je te porte.

A mes très chers amis Rachida CHEHRASTANE, Khaoula

DADOU, Atimad CHAKOURI, Ikram El HEYYANI,

Asmae LAIT

En souvenir de notre sincère et profonde amitié, et des moments que nous avons

passé ensemble.

Votre soutien a été pour moi une source de courage et de confiance.

Je vous dédie cette thèse tout en vous souhaitant une longue vie pleine de

réussite, de sante et de bonheur.

A tous ceux qui me sont chers et que j’ai omis involontairement

de citer.

A tous ceux qui ont participé de près ou de loin à l’élaboration

de ce travail.

A tous ceux qui ont pour mission cette pénible tâche de soulager

l’être humain et d’essayer de lui procurer le bien-être physique,

psychique et social.

Remerciements

A

Notre maître et Président de thèse,

Monseiur AZIZ ZENTAR

Professeur de Chirurgie Générale

Nous sommes profondément reconnaissants de l’honneur que vous nous faites en

acceptant de présider ce travail.

Votre grand savoir, votre dynamisme et votre amabilité ont toujours suscité en

nous grand estime.

Veuillez trouver ici, le témoignage de notre vive gratitude et haute considération.

A

Notre maître et Rapporteur de thèse,

Monsieur BADRE EDDINE LMIMOUNI

Professeur de Parasitologie Mycologie

Nous vous remercions pour la gentillesse et la spontanéité avec lesquelles vous

avez bien voulu diriger ce travail.

Nous avons eu un grand plaisir à travailler sous votre direction. Nous avons eu

auprès de vous le conseiller et le guide qui nous a reçus en toute circonstance avec

sympathie, sourire et bienveillance.

Votre amabilité, votre compétence pratique, vos qualités humaines et

professionnelles nous inspirent une admiration et un grand respect.

Nous voudrions être dignes de la confiance que vous nous avez accordée et vous

prions, cher Maître, de trouver ici le témoignage de notre sincère reconnaissance

et profonde gratitude.

A

Notre maître et juge de thèse

Monsieur AZIZ AOURAGH

Professeur de Gastro-entérologie

Vous nous avez accordé un immense honneur en acceptant de siéger parmi notre

jury de thèse.

Veuillez accepter, cher Maître, ce travail en témoignagede toute notre estime et

de notre haute considération.

A

Notre maître et juge de thèse,

Monsieur YOussef SEKKACH

Professeur de Médecine Interne

L'honneur que vous nous accordez en acceptant de juger ce travail, n'a d'égal que

notre profonde gratitude et reconnaissance.

Veuillez trouver ici, Monsieur, l'expression de notre haute estime et notre grand

respect.

A

Notre maître et juge de thèse

Professeur HAKIMA KABBAJ

pr.agrégé de Microbiologie

C’est pour nous un immense privilège de vous voir accepter de juger ce travail.

Veuillez, cher Maître, trouvé dans ce modeste travail le témoignage de notre

sincère respect et de notre profonde reconnaissance.

Liste

des abréviations

ADN : Acide désoxyribonucléique

AGCC : Acides gras à chaines courtes

AIEC : Adherent-invasive Escherichia coli

AINS : Anti Inflammatoire Non Stéroïdien

ANSM : Agence Nationale de Sécurité du médicament et des produits de santé

ARN : Acide ribonucléique

C.difficile : Infection à Clostridium difficile

CD-8 : Cluster of differentiation 8

CMV : Cytomégalovirus

CSP : Code de Santé Publique

DAA : Diarrhée associée aux antibiotiques

EBV : Epstein-Bar virus

GABA : Gamma-aminobutyrique

HIV : Virus de l‘immuno-déficience humain

HLA : Humain Leukocyte Antigen

HVB-HVC : virus des hépatites B-C

ICD : Infection à Clostridium difficile

IFN : Interféron

Ig A : Immunigolbuline de type A

IL : Interleukine

IMC : Indice de masse corporelle (BMI= Bodys mass index)

IRCD : Récidives d‘infection à Clostridium difficile

LPL : Lipoprotéine lipase

LPS : Lipopolysaccharides

MC : Maladie de Crhon

METAHIT : Metagenomics of the Human Intestinal Tract

MICI : Maladies Inflammatoires Chroniques de l‘Intestin

MSI : Microsatellites Instables

OMS : Organisation Mondiale de la Santé

PH : Potentiel hydrogène

PUI : Pharmacie a usage intérieur

RCH : Rectocolite hémorragique

SIBO : Small intestinal bacterial over growth

SII : Syndrome de l‘intestin irritable

SNC : Système nerveux central

TGF : Transforming growth factor

TH1, TH2, TH17 : Lymphocytes T effecteurs de type 1, 2, 17

TLR : Toll Like Receptor

TMF : Transplantation de Microbiote Fécale

TREG : Lymphocyte T régulateur

UFC : Unité Formant Colonie

Liste

des illustrations

Liste des Figures

Figure 1 : Concentration en bactéries le long du tube digestif .................................................. 9

Figure 2: Arbre phylogénétique représentant les différents sous-ensembles (phyla) des

groupes bactériens composant le microbiote intestinal ............................................................ 11

Figure 3: Les trois entérotypes du microbiote : L‘abondance des 3 grandes familles dont 2 du

phylum des Bacteroïdetes et une du phylum des Firmicutes dans chacun des 3 entérotypes. . 13

Figure 4 : Influence de l‘accouchement sur la composition du microbiote ............................ 16

Figure 5 : Evolution du microbiote intestinal au cours des deux premières années de vie ..... 17

Figure 6 : Les trois grandes fonctions du microbiote .............................................................. 25

Figure 7 : Dialogue entre microbiote et système immunitaire ................................................ 27

Figure 8 : Chaîne trophique de la fermentation des glucides .................................................. 29

Figure 9: Métabolisme microbien des protéines dans le côlon humain : relation entre

protéolyse et protéosynhèse bacterienne .................................................................................. 31

Figure 10: Voies directes et indrectes pour la conversion du cholestérol en coprostanol par le

microbiote intestinal. ................................................................................................................ 32

Figure 11: Analyse en composante principale du microbiote fécal de sujets sains et de sujets

atteints de MICI en rémission .................................................................................................. 37

Figure 12: Physiopathologie de l‘infection à Clostridium difficile ......................................... 40

Figure 13: Abondance relative des phyla bactériens dominants dans les échantillons fécaux

de sujets témoins en bonne santé, chez les patients présentant un épisode initial d‘ICD et chez

les patients atteints d‘une forme récurrente d‘ICD. ................................................................. 41

Figure 14: Elimination des bactéries sensibles et sélection de bactéries résistantes dans le

microbiote intestinal lors de l‘administration d‘un antibiotique. ............................................. 42

Figure 15: Dysbiose du microbiote intestinal en cas de diabète ............................................. 56

Figure 16: Résumé schématique des mécanismes d‘action des probiotiques ......................... 67

Figure 17: Chronologie (versant"donneur") de la transplantation fécale (en l'absence de

congélation) .............................................................................................................................. 83

Figure 18: Une transplantation en pratique ............................................................................. 85

Liste des Tableaux

Tableau 1: Comparaison des différentes techniques d'études ................................................... 8

Tableau 2 : Classification des espèces du microbiote intestinal ............................................. 12

Tableau 3: Synthèse vitaminique du microbiote ..................................................................... 33

Tableau 4: Mise en évidence d'un enrichissement ou d'une déplétion en espèces bactéries au

cours du cancer colorectal ........................................................................................................ 50

Tableau 5: Questionnaire de présélection (ANSM) ................................................................ 80

Tableau 6 : Liste des agents infectieux à dépister chez les donneurs (ANSM) ...................... 81

Tableau 7 : Questionnaire de sélection (ANSM) .................................................................... 82

Sommaire

INTRODUCTION ............................................................................................... 1

CHAPITRE 1 : Physiologie du microbiote intestinal ...................................... 4

I. Définition............................................................................................................................ 5

II. Méthodes d’études du microbiote intestinal ................................................................. 6

III. Composition .................................................................................................................... 9

IV. Origines et développement du microbiote intestinal................................................. 14

1. Origine du micobiote intestinal ..................................................................................... 14

2. Facteurs influençant la composition du micorbiote ...................................................... 15

2.1. Facteurs propres à l‘individu .................................................................................. 15

2.2. Le mode d‘accouchement ....................................................................................... 15

2.3. L‘environnement .................................................................................................... 16

2.4. L‘Allaitement etl‘alimentation ............................................................................... 17

2.5. L‘usage de l‘antibiothérapie ................................................................................... 18

3. Evolution au cours de la vie .......................................................................................... 18

4. Stabilité et résilience ..................................................................................................... 19

CHAPITRE 2 : Le microbiote intestinal impliqué dans la santé de l’hôte . 22

I. Les fonctions du microbiote intestinal .......................................................................... 23

1. Fonction de barrière et de protection ............................................................................ 23

2. Fonction immunitaire .................................................................................................... 25

3. Fonction métabolique.................................................................................................... 28

3.1. Métabolisme des glucides ...................................................................................... 28

3.2. Métabolisme de gaz ................................................................................................ 30

3.3. Métabolisme des protéines ..................................................................................... 30

3.4. Métabolisme des lipides ......................................................................................... 31

3.5. Synthèse des vitamines ........................................................................................... 32

II. Normobiose et dysbiose du microbiote intestinal ....................................................... 34

III. Pathologies en relation avec la dysbiose..................................................................... 35

1. Les maladies inflammatoires chroniques de l‘intestin .................................................. 35

2. Les infections à Clostridium difficile ............................................................................ 38

2.1. Physiopathologie .................................................................................................... 39

2.2. Les sources de dysbiose ......................................................................................... 41

3. Le syndrome de l‘intestin irritable (SII) ....................................................................... 44

4. Le cancer colorectal ...................................................................................................... 48

4.1. La dysbiose et cancer colorectal ............................................................................. 48

4.2. Physiopathologie : rôle du microbiote intestinal dans le cancer colorectal ........... 51

5. Les maladies métaboliques ........................................................................................... 52

5.1. Le microbiote intestinal dans l‘obésité ................................................................... 53

5.2. Le microbiote intestinal dans le diabète type 2 ...................................................... 54

6. Les troubles psychiatriques ........................................................................................... 57

6.1. La dysbiose et ses conséquences sur le fonctionnement du système nerveux central

(SNC) ............................................................................................................................ 57

6.2. La dysbiose et autisme ........................................................................................... 59

6.3. Le microbiote dans les troubles de l‘humeur et les troubles psychotiques ............ 60

CHAPITRE 3 : Approches thérapeutiques .................................................... 62

I. Les probiotiques .............................................................................................................. 63

1. Historique ...................................................................................................................... 63

2. Définition ...................................................................................................................... 64

3. Les mécanismes d‘action des probiotiques ................................................................... 65

4. Effets secondaires et contre-indication ......................................................................... 68

5. L‘intérêt clinique des probiotiques ............................................................................... 70

5.1. Les probiotiques dans les maladies intestinales ..................................................... 70

5.2. Les probiotiques dans les maladies atopiques ........................................................ 73

5.3. Les probiotiques dans les maladies psychiatriques ................................................ 74

II. Transplantation de microbiote fécal ............................................................................ 76

1. Historique et définition ................................................................................................. 76

2. Réglementation ............................................................................................................. 77

3. La transplantation.......................................................................................................... 79

4. Indication et résultats actuels ........................................................................................ 85

4.1. L‘infection à Clostridium difficile .......................................................................... 86

4.2. Les maladies métaboliques : obésité et diabète type 2 ........................................... 88

5. Autre indication potentielles ......................................................................................... 90

CONCLUSION .................................................................................................. 92

RESUMES .......................................................................................................... 95

RÉFÉRENCES BIBLIOGRAPHIQUE ET EBOGRAPHIQUE ................ 99

1

INTRODUCTION

2

Historiquement, les microorganismes étaient vus comme des éléments

étrangers déclenchant des maladies lorsqu‘ils colonisaient le corps humain.

Avec les progrès de la recherche, les scientifiques ont montré que non seulement

tous les microorganismes ne sont pas des pathogènes mais qu‘en plus notre

propre corps coexiste en permanence avec bon nombre d‘entre eux.

Les chercheurs ont mis en évidence que notre organisme vis en symbiose

avec plusieurs milliards de bactéries, bien implantées à différents endroits du

corps comme la peau, la sphère ORL, le vagin et le tractus digestif en formant

de véritables écosystèmes. La compréhension de cette relation étroite, dont les

deux partis tirent profit, est devenue un véritable axe de recherche. Cet ensemble

de microorganismes peuplant une partie du corps, anciennement appelé flore, est

dorénavant appelé microbiote. Le microbiote intestinal est de loin le plus

important du corps humain et est donc une piste de recherche particulièrement

intéressante.

La première partie de cette thèse sera centrée sur la présentation du

microbiote intestinal : Qu‘est-ce que le microbiote intestinal ? De quoi est-il

constitué ? Quel est son origine et quels sont les facteurs le déterminant ?

Les nombreuses données bibliographiques ont permis de résoudre, du

moins en parti, ces interrogations. L‘objectif principal de ces études sur le

microbiote intestinal est de comprendre ses implications sur la santé de l‘hôte.

En effet, il a été montré que le microbiote intestinal exerce des effets bénéfiques

sur l‘organisme, notamment par ses fonctions protectrice, métabolique et

immunologique. Ces trois fonctions principales sont possibles lorsque le

microbiote intestinal est équilibré, on parle d‘eubiose. Toutefois, toute rupture

de cet équilibre, on parle alors de dysbiose, est susceptible de modifier les

3

fonctionnalités du microbiote et de conduire à une situation pathologique.

La deuxième partie de cette thèse présentera les fonctions bénéfiques du

microbiote intestinal sur l‘hôte et nous étudierons comment une dysbiose peut

être impliquée dans plusieurs pathologies.

Comprendre le fonctionnement et l‘interaction entre le microbiote et l‘hôte

nous emmène au troisième point capital : la modulation thérapeutique du

microbiote intestinal.

Deux grandes techniques de modulation font l‘objet de recherches

actuelles, l‘utilisation des probiotiques d‘une part, et d‘autre part la greffe fécale.

Ce nouveau type de transplantation est en passe de marquer l‘histoire médicale.

Cette technique est aussi connue sous le nom de fécalothérapie consiste en

l‘introduction des selles d‘un donneur sain dans le tube digestif d‘un patient

receveur afin de rééquilibrer la flore intestinale altérée de l‘hôte.

Ces différents moyens de modifier la composition du microbiote font

l‘objet de nombreuses recherches cliniques et constitueraient une révolution

dans l‘approche thérapeutique conventionnelle.

4

CHAPITRE 1 : Physiologie du microbiote

intestinal

5

I. Définition

Le microbiote intestinal est un ensemble important de bactéries (cent mille

milliards) réparties le long du tractus intestinal et dont la composition globale est

variable selon la localisation, les individus, l‘âge, les périodes de la vie d‘un

même individu [1].

Le nombre de bactéries augmente progressivement depuis l‘estomac

(moins de 104 par gramme de contenu) jusqu‘au côlon (10

11 à 10

12 par gramme)

en passant par le duodénum (103 à 10

4 par gramme), le jéjunum (10

5 à 10

6 par

gramme) et l‘iléon (107 à 10

9 par gramme). Le passage de la valvule iléo-cæcale

permet l‘entrée dans le côlon qui, compte tenu du nombre de bactéries présentes,

est une véritable chambre de fermentation.

L‘ensemble constitue un écosystème qui fonctionne comme un organe à

part entière en étroite symbiose avec notre organisme et forme avec lui un supra-

organisme. Certains auteurs lui donnent le nom d‘espace métabolique

intégré [2]. C‘est, en effet, une usine biochimique indispensable pour la

digestion des aliments non assimilés par l‘organisme et pour diverses fonctions

physiologiques chez l‘Homme : maturation du système immunitaire, effet

barrière contre des pathogènes extérieurs, production de vitamines, collecte

d‘énergie, accessibilité aux micronutriments, métabolisation des

xénobiotiques [3].

Ce fonctionnement est extrêmement dynamique grâce à un dialogue

permanent entre les différentes espèces de bactéries constituant le microbiote et

entre le microbiote et l‘hôte, à l‘origine de l‘homéostasie de l‘écosystème [4].

6

II. Méthodes d’études du microbiote intestinal

Plusieurs méthodes se confrontent pour analyser le microbiote intestinal, et

chacune présente avantages comme inconvénients. Pendant longtemps, la mise

en culture pure au laboratoire a longtemps été considérée comme l‘unique

moyen d‘étudier la population microbienne. Il s‘agit d‘une culture de selles sur

différents milieux, dans des atmosphères variées, permettant une analyse simple,

peu coûteuse, et avec une bonne sensibilité (102UFC/g de selles). Néanmoins,

cette méthode n‘est pas appropriée pour la culture des bactéries anaérobies

strictes, rendant difficile la caractérisation du microbiote intestinal, puisque 80%

des espèces deviennent non cultivable.

La technique de la « culturomique » consiste à cultiver des échantillons de

selles dans un large panel de conditions différentes, en faisant varier les milieux,

les atmosphères. Elle identifie ensuite toutes les colonies isolées par

spectrométrie de masse. Ceci permet d‘identifier plus d‘espèces, et donc de

mieux apprécier la diversité des niches écologiques. Cette technique possède

également une bonne sensibilité, avec un seuil de détection estimé à 102UFC/g

de selles. Toutefois, les bactéries anaérobies strictes restent incultivables, et le

travail de culture est non négligeable, de par l‘utilisation de centaines de milieux

de cultures différents, et par l‘identification de milliers de colonies isolées.

Le « 16S Profiling » se caractérise par l‘amplification par PCR et

séquençage du gène de l‘ADNr 16S obtenu d‘un extrait d‘ADN total sur

échantillon de selles. C‘est une technique à coût modéré permettant une

meilleure identification de la composition du microbiote intestinal, si l‘on

compare aux deux techniques précédemment décrites. Les inconvénients sont

cependant nombreux : l‘existence de biais liés à l‘amplification, l‘identification

7

est souvent limitée au genre, et la sensibilité est médiocre (106 UFC/g de selles).

La métagénomique par séquençage direct ou métagénomique « shotgun »

est un séquençage direct de l‘ensemble de l‘ADN obtenu sur échantillon de

selles, Contrairement à l'étude de l'ARN 16S, la métagénomique ne nécessite pas

d'amplification de gêne. Cette méthode présente également des limites puisque

bien que l'on puisse déterminer quels gènes sont présents, on ne peut savoir si

ceux-ci sont exprimés ou non et quelle est leur fonction [35].

La métatranscriptomique est une technique qui permet l‘analyse directe des

ARN de l‘ensemble des microorganismes contenus dans un échantillon. Cela

permet de contourner l‘obstacle de la métagénomie, c'est-à-dire que cette

technique permet d‘analyser l‘expression des gènes pour déterminer l‘activité

des bactéries. Toutefois, l‘instabilité de l‘ARNM rend cette technique difficile.

D‘autres méthodes comme la métaprotéomique (étude des protéines) et

métabolomique (étude des métabolites) peuvent également être employées.

Le tableau ci-dessous résume les avantages et limites des techniques citées:

8

Tableau 1: Comparaison des différentes techniques d'études [35].

Technique Avantages Limites

Culture Ne prend en compte que les

bactéries vivantes

-Peu de bactéries cultivables

-Méthode de comptage -

Conditions de conservation

des échantillons

Séquençage ARNr 16S Permet d‘identifier des

espèces bactériennes

Technique faiblement

quantitative

Métagénomique

-Permet d‘observer la

composition microbienne

sans amplification

-Détecte les gènes présents

dans un échantillon

-Permet de comparer des

profils génomiques entres

échantillons

Ne donne pas d‘information

sur l‘expression des gènes

Métatranscriptomique

-Détecte l‘expression des

gènes -Compare l‘expression

des gènes entre deux

échantillons

Difficulté de mise en œuvre,

stabilité de l‘ARNm

Métaprotéomique

-Détecte des profils

protéiques -Permet de

comparer la production de

protéines entre deux

échantillons

Difficulté de mise en oeuvre

Métabolomique

- Détecte des profils

métaboliques

- Permet de comparer les

métabolites entre deux

échantillons

Métabolites de l‘hôte et du

microbiote mélangés

9

III. Composition

Chaque individu abrite dans son tube digestif 1014

micro-organismes qui

composent son microbiote intestinal, ce qui est 10 fois plus important que le

nombre total de cellules eucaryotes dans le corps humain [5].

Des variations qualitatives et quantitatives de la flore intestinale sont

observées tout au long du tube digestif, de la bouche à l‘anus. La flore buccale

est très diversifiée et comprend des bactéries aérobies et anaérobies, la flore

gastrique est en revanche limitée quantitativement et qualitativement. Les

concentrations varient de manière croissante. En effet, au niveau de l‘estomac, il

y a quelques centaines de bactéries par gramme de contenu alors qu‘au niveau

du côlon distal on retrouve 1011

bactéries par gramme de contenu [6].

Duodénum : 103-4 UFC/g Firmicutes (Lactobacillus, Streptococcus) Actinobacteria

Bacteroidetes(Bacteroides)

Estomac : 103-4 UFC/g Firmicutes (Lactobacillus, Enterococcus, Streptococcus) Actinobacteria, Bacteroidetes

Proteobacteria (Helicobacter pylori)

Côlon : 1010-12 UFC/g

Bacteroidetes (Bacteroides)

Firmicutes (Clostridium,

Enterococcus, Lactinobacillus,

Sreptococcus)

Actinobacteria (Bifidobacterium)

Proteobacteria

Verrumicrobia

Jéjunum : 105-6 UFC/g

Firmicutes (Lactobacillus,

Streptococcus)

Actinobacteria

Bacteroidetes (Bacteroides)

Iléon : 105-8UFC/g

Firmicutes (Lactobacillus,

Enterococcus, Streptococcus)

Actinobacteria

Bacteroidetes (Bacteroides)

Iléon proximal : 106-7 UFC/g

Firmicutes (Lactobacillus,

Streptococcus)

Actinobacteria

Bacteroidetes (Bacteroides)

Figure 1 : Concentration en bactéries le long du tube digestif [6].

10

Le microbiote intestinal est propre à chaque individu, d‘un point de vue

qualitatif et quantitatif. Les micro-organismes majoritairement retrouvés sont les

bactéries. On estime que chez chaque individu on retrouve près de 400 espèces

bactériennes différentes de type anaérobie strict ou anaérobie facultatives.

Certaines espèces dominantes, qui sont présentes chez la majorité des individus,

restent stables et permettent d‘effectuer les fonctions essentielles du microbiote,

elles sont associées à des populations minoritaires qui sont propres à chacun

d'entre nous.

Les bactéries dominantes du microbiote peuvent être réparties en 3 phyla

bactériens majeurs [8] :

Le phylum des Firmicutes :

Les Firmicutes sont des bactéries à gram positif. Elles représentent

habituellement plus de la moitié des micro-organismes de la flore. Ce phylum

comporte 3 classes de bactéries :

la classe I des Clostridia qui contient les genres Clostridium, Ruminococcus et

Faecalibacterium.

la classe II des Mollicutes contenant les bactéries du genre Mycoplasma.

la classe III des Bacilli contenant les genres Listeria, Staphylococcus,

Lactobacillus, Enterococcus et Streptococcus.

Le phylum des Bacteroidetes :

Ce phylum représente jusqu‘à 30% de la population bactérienne. On y

retrouve notamment les bactéries du genre Bacteroides qui sont des bactéries

sous forme de bacille gram négatif anaérobie et le genre Prevotella.

11

Le phylum des Actinobacteria :

Les Actinobacteria représentent en général moins de 10% de la population

du microbiote. Ce sont des bactéries gram positif, notamment des genres

Actinomyces, Mycobacterium ou Bifidobacterium.

Figure 2: Arbre phylogénétique représentant les différents sous-ensembles (phyla) des

groupes bactériens composant le microbiote intestinal (10)

On trouve également des bactéries du phylum des Proteobacteria,

contenant l‘ordre des Entérobacteriales qui sont des bactéries anaérobies

facultatives que l‘on retrouve en faible quantité.

De façon minoritaire, on retrouve des bactéries des phyla Fusobacteria,

Verrucomicrobia et Spirochaetes.

12

Tableau 2 : Classification des espèces du microbiote intestinal [8]

La composante fongique est constituée de champignons et de levures.

Des archées sont également retrouvées : ce sont des micro-organismes

unicellulaires procaryotes. Elles ont longtemps été considérées comme des

bactéries mais les analyses génétiques et les méthodes de classification

phylogénétiques ont permis de justifier la création d‘un groupe à part entière.

Phylum Classe Ordre famille Genre Espèces

Firmicutes

Clostridia Clostridiales

Clostridiacées Clostridium C.difficile

Ruminococcacés Ruminococcs R. obeum

Bacilli Lactobacillales

Lactobacillacées Lactobacillus

L.acidophilus,

L.helveticus, L.casei

Enterococcacées Enterococcus

E. faecalis, E.

faecium

Streptococcacées Streptococcus

S.salivarius, S.mitis,

S.pyrogenes,

S.pneumoniae

Bacteroïdetes Bacteroïdia Bacteroïdales

Bacteroïdacées Bacteroïdes B.fragilis

B.thetaiotaomicron

Prevotellacées Prevotella P.multisaccharivorax

Actinobacteria Actinobacteria Bifidobacteriales Bifidobacteriacés Bifidobacterm B.longum, B.lactis,

B.bifidum

Proteobacteria

Gamma

proteobacteria Enterobacteriales Enterobacteriacés

Escherichia E. coli

Proteus P.mirabilis

Epsilon

proteobacteria Campylobacterals Helicobacteracés Helicobacter H.pylori

13

Dans le tractus digestif humain, ces archées sont en grande majorité

méthanogènes. Les virus sont des agents infectieux qui nécessitent un hôte. Ils

utilisent le métabolisme et les constituants de son hôte pour se répliquer. On

retrouve une importante quantité de virus bactériophages, archaephages ou

prophages, insérés dans certains génomes bactériens. Les phages, en infectant et

en lisant certaines bactéries sont impliquées dans le maintien de la diversité des

espèces microbiennes.

Toutefois, les microbiotes des individus se répartissent en 3 groupes

appelés «entérotypes », chacun étant caractérisé par l‘existence de nombreuses

espèces dominées par les genres bactériens Bacteroides (phylum des

Bacteroïdetes), Prevotella (phylum des Bacteroïdetes) et Ruminococcus (ordre

des clostridiales phylum des Firmicutes) [10]. Un entérotype représente une «

signature » bactérienne et chaque individu appartient à un entérotype de même

qu‘il appartient à un groupe sanguin.

Figure 3: Les trois entérotypes du microbiote : L’abondance des 3 grandes familles dont

2 du phylum des Bacteroïdetes et une du phylum des Firmicutes dans chacun des 3

entérotypes [10].

Bacteroides Prevotella

Ruminococcus

Entérotype Entérotype

Entérotype

Ab

on

da

nce

14

IV. Origines et développement du microbiote intestinal

1. Origine du micobiote intestinal

Le nouveau-né est stérile in utero et la colonisation bactérienne débute dès

l‘accouchement avec une flore simple à partir des flores de sa mère et de

l'environnement proche. Sa mise en place va commencer selon l‘exposition aux

micro-organismes d‘origine maternelle, avec un contact beaucoup plus élevé

lors d‘un accouchement par voie basse que lors d‘une césarienne, ainsi que

d‘origine environnementale selon le lieu de naissance et le contact avec l‘équipe

médicale [11].

Chez l'enfant à terme, les premières bactéries implantées sont des

organismes aérobies-anaérobies facultatifs : les entérobactéries (principalement

l'espèce E. coli), les entérocoques et les staphylocoques. Ces premières bactéries

vont rapidement consommer l'oxygène contenu dans la lumière intestinale,

permettant l'implantation des genres anaérobies stricts (Bifidobacterium,

Clostridium, Bacteroides) ainsi que celle des Lactobacilles, microaérophiles. Par

la suite, le nouveau-né est continuellement exposé à de nouvelles bactéries

provenant de l'environnement, de la nourriture et des bactéries cutanées des

adultes.

Une flore complexe et stable, qui se rapproche de celle de l'adulte, propre à

chaque individu, semble être obtenue entre les âges de 2 à 4 ans.

15

2. Facteurs influençant la composition du micorbiote

2.1. Facteurs propres à l’individu

La composition du microbiote serait en partie due à notre génétique. Cela a

été étudié sur des jumeaux monozygotes, en effet, ces derniers vivant dans des

conditions de vie semblables présentaient un microbiote similaire tandis que des

personnes partageant le même environnement mais moins proche génétiquement

(frères et sœurs par exemples) présentaient un microbiote plus distinct [12].

2.2. Le mode d’accouchement

Les chercheurs ont identifiés des différences de composition du microbiote

intestinal chez les nourrissons selon qu‘ils soient nés par césarienne ou par voie

naturelle.

En effet, les enfants nés par voie vaginale présente un microbiote proche du

microbiote vaginal et fécal de leur mère tandis que ceux nés par césarienne sont

exposés à l‘environnement hospitalier et au microbiote cutané de la mère [13].

Ces études ont montré que les enfants nés par voie basse ont une forte

proportion de Lactobacillus et de Prevotella. Les enfants nés par césarienne

présentaient une plus faible proportion de Bifidobactéries et Bacteroïdes fragilis

comparé aux autres et étaient par contre d‘avantage colonisés par Clostridium

difficile [14].

Le terme de la grossesse semble également jouer un rôle dans la mise en

place du microbiote intestinal. Chez les nouveau-nés prématurés, il a été observé

un retard de colonisation important par rapport aux enfants nés à terme ainsi

qu‘une colonisation par un nombre plus réduit d'espèces bactériennes. Le retard

de colonisation est surtout marqué pour la flore anaérobie (Bifidobacterium et

16

Bacteroides) alors que la flore aérobie (Entérobactéries, Entérocoques,

Staphylocoques) colonise assez rapidement le prématuré [15].

On peut expliquer en partie ce retard d'implantation par le fait que ces

enfants sont plus fréquemment nés par césarienne, sont rapidement séparés de

leur mère et placés dans un environnement de soins intensifs très aseptisé et

souvent soumis à une antibiothérapie à large spectre.

Figure 4 : Influence de l’accouchement sur la composition du microbiote

2.3. L’environnement

L‘environnement de l‘enfant joue un rôle dans le développement de son

microbiote, en effet il détermine l‘exposition aux bactéries. Les procédures

d‘hygiène strictes dans les maternités pourraient être à l‘origine d‘une exposition

diminuée de l‘enfant aux microorganismes et entrainerait une colonisation

retardée par les Bacteroïdetes et Bifiobacterium [16].

Une étude a également mis en évidence qu‘un nouveau-né ayant des frères

et sœurs plus âgés présentait une abondance de Bifidobactéries plus élevée que

les enfants uniques [13].

Une enfance dans un environnement de type ferme, avec présence

d‘animaux permettrait d‘enrichir le microbiote et favoriserait la diversité [13].

Césarienne

Bifidobactéries

Bacteroïdes fragilis

Clostridium difficile

17

2.4. L’Allaitement etl’alimentation

La complexité de la composition du lait maternel favorise l‘implantation

des genres Bifidobacterium et Lactobacillus. Les bactéries comme Clostridium

et Bacteroides, quant à elles, s‘installent plus tardivement. Chez un enfant nourri

au lait infantile, la flore sera plus diversifiée, incluant des Bacteroides, des

clostridies et des entérobactéries (Figure 5).

En effet, bien que le lait maternel fût longtemps considéré comme stérile,

nous savons aujourd‘hui qu‘il participe activement à l‘élaboration de la flore

microbienne post-natale grâce à son profil dynamique de nutriments et de

composants bioactifs. Il se compose d‘une part d‘oligosaccharides qui agissent

comme prébiotiques, et d‘autre part d‘un ensemble de bactéries formant une

niche écologique qui lui est propre. Celle-ci comprend les Lactobacillus spp et

les Bifidobacterium spp, qui seraient issues de l‘intestin maternel, par le biais

d‘un cycle entéro-mammaire [17].

Figure 5 : Evolution du microbiote intestinal au cours des deux premières années de vie

[17].

18

2.5. L’usage de l’antibiothérapie

Une antibiothérapie supérieure à trois jours est un facteur de risque de

colonisation par des entérobactéries résistantes. Ce risque est d‘autant plus élevé

si l‘antibiotique a un spectre large. Une antibiothérapie précoce diminuerait la

diversité microbiotale avec une diminution de la proportion des genres

Bifidobacterium et Lactobacillus.

L‘utilisation d‘antibiothérapie per-partum, initialement prévue pour la

prophylaxie de l‘infection néo-natale à streptocoque B, a démontré une

augmentation des infections néonatales à germes résistants aux

aminopénicillines [18].

3. Evolution au cours de la vie

On considère que dès trois ans, l‘enfant acquiert un microbiote intestinal

stable [19]. Il continuera d‘évoluer au cours de la vie sous l‘influence de facteurs

physiologiques et pathologiques. Plusieurs études ont démontré la variabilité du

microbiote intestinal au fil du temps, notamment durant les périodes de

changements hormonaux importants [20]. Pendant la puberté, l‘évolution du

microbiote semble dépendante du taux d‘androgènes, car en effet, la castration

des mâles montre une stabilité de la flore intestinale semblable à celle des

femelles. Au cours de la grossesse, principalement au troisième trimestre, on

peut observer une diminution de la proportion de Firmicutes et une

augmentation de bactéries issues de phyla minoritaires, Actinobacteriae et

Proteobacteriae [21]. A la ménopause, l‘influence œstrogènique implique une

modulation des proportions des Clostridia et des Ruminococcaceae [22].

19

Chez la personne âgée, de nombreux facteurs modulent la flore intestinale :

les changements physiologiques liés à l‘âge, la malnutrition, la polymédication

avec l‘utilisation d‘antibiotiques, les hospitalisations… Dès 65 ans, le rapport

Firmicutes/Bacteroidetes diminue, avec une augmentation de Bacteroides et une

diminution de bifidobactéries dans les fèces [23]. Ces perturbations entrainent

des modifications fonctionnelles du microbiote, pouvant amener à

l‘accumulation de produits génotoxiques comme les phénols ou le sulfure

d‘hydrogène, qui sont des facteurs de risque de cancer du côlon.

4. Stabilité et résilience

4.1. Stabilité

La composition globale de la communauté microbienne intestinale

dominante semble constante entre individus et dans le temps. Les mêmes

phylums majeurs sont présents, avec des proportions qui varient entre individus

mais, le plus probablement, demeurent au sein du même équivalent d‘unités

logarithmiques en termes de population. La diversité des espèces dominantes

apparaît remarquablement stable dans le temps pour un individu donné d‘un jour

à l‘autre comme à travers les années [24, 25,26], tandis qu‘une large fraction des

espèces dominantes apparaît spécifique du sujet.

La stabilité du microbiote a longtemps été considérée comme à l‘origine de

l‘effet barrière. En effet, le microbiote protège contre l‘installation de

microorganismes exogènes par compétition pour l‘espace et les substrats [27],

cette stabilité ne doit toutefois pas être considérée comme une simple barrière

inerte mais plutôt un équilibre dynamique [28,29].

20

En ce qui concerne les souches, la stabilité est nettement moins claire et

dépendra du sujet [30, 31]. Par conséquent, la stabilité observée dans les groupes

et les espèces dissimulerait un taux important de renouvellement au niveau des

souches. La plasticité génomique pourrait en réalité entrer en jeu.

Il a également été montré que la diversité des espèces dans les groupes

subdominants, par exemple Lactobacillus, est nettement moins stable dans le

temps que celle des groupes dominants [26] et que la stabilité des communautés

est supérieure dans le côlon comparativement à l‘iléon.

A l‘inverse des flores dominantes (ex. Bacteroides), la stabilité des

phylums faiblement représentés (tels que les Lactobacillus) est nettement moins

grande dans le temps [32]. Ainsi, la possibilité pour les bactéries lactiques

apportées par l‘ingestion d‘aliments fermentés de survivre pendant le transit doit

également être envisagée, conduisant à leur passage transitoire dominant dans

l‘intestin grêle et le colon.

4.2. Résilience

Par définition, un microorganisme qui colonise une niche donnée persistera

et se multipliera sans nécessiter de ré inoculation.

Pour un individu, des modifications du microbiote intestinal pourraient

venir soit de la colonisation par des microorganismes exogènes, soit d‘une

modulation des niveaux de population des bactéries commensales. Dans la

plupart des cas, elles seront essentiellement la conséquence de relais de

dominance en réponse à des facteurs modulant les niches écologiques.

21

De nombreux facteurs peuvent avoir une incidence sur la stabilité des

communautés microbiennes, parmi lesquels le temps de transit, le pH, la qualité

et la quantité de substrats exogènes et de mucines endogènes. Bien que les

communautés microbiennes semblent prêtes à faire face aux modifications du

contexte écologique, il semble difficile d‘induire des altérations durables des

populations dominantes établies, du moins en termes de composition.

De nombreuses observations illustrent par conséquent la capacité du

microbiote intestinal dominant à résister aux modifications. L‘administration

d‘une souche allochtone comme un probiotique ou d‘un substrat exogène non

absorbable comme un prébiotique conduit souvent à des modifications

transitoires de l‘équilibre microbien. Même un stress majeur, comme

l‘administration d‘un antibiotique, peut être suivi du retour de la communauté à

son profil initial d‘espèces dominantes en un mois environ [33, 34].

Cette capacité à récupérer sa constitution initiale après un stress, connue

sous le nom de résilience, suggère une adaptation finement réglée du microbiote

à l‘intestin et même au génotype de l‘hôte qui l‘héberge.

22

CHAPITRE 2 : Le microbiote intestinal

impliqué dans la santé de l’hôte

23

I. Les fonctions du microbiote intestinal

Par certaines de ses fonctions, la flore intestinale joue notamment un rôle

de support pour l‘épithélium intestinal. En effet, elle assiste l‘épithélium

intestinal dans ses fonctions de digestion et d‘absorption des nutriments, en

permettant la digestion des nutriments qui ne sont pas pris en charge par les

enzymes humaines. Le microbiote va avoir un rôle de fermentation et la

putréfaction des résidus alimentaires non digestibles, en produisant des acides

gras à courtes chaines (AGCC), sources d‘énergie. La flore participe également

au rôle de barrière, pour maintenir un équilibre stable au sein de la muqueuse

intestinale et constituer une ligne de défense face aux agressions de

l‘environnement.

Le microbiote participe à la synthèse vitaminique, les bactéries de la flore

peuvent notamment produire de la biotine (vit B8), des folates (vit B9) et de la

vitamine B12. Elles participent également à la production de vitamine K,

vitamine essentielle de la coagulation. Le microbiote peut de plus intervenir

dans le métabolisme des xénobiotiques.

Pour finir la flore a un rôle majeur dans le développement du système

immunitaire intestinal, mais aussi général et dans sa maturation.

1. Fonction de barrière et de protection

La surface de la muqueuse intestinale se compose d‘entérocytes, cellules

pourvues de villosités et liées les unes aux autres par des jonctions serrées .Les

jonctions serrées sont des jonctions étanches entre les cellules épithéliales qui

déterminent une barrière physiologique entre les compartiments extérieur et

intérieur de l‘organisme. Elles bloquent la circulation de fluides entre les

24

cellules et assurent ainsi l'étanchéité entre les deux compartiments tissulaires.

A la surface de cette muqueuse viennent se fixer les bactéries de la flore

intestinale s‘opposant à la colonisation de la muqueuse par les bactéries

pathogènes par un phénomène de compétition sur les sites d‘adhérence. Les

bactéries commensales étant plus adaptées à l‘écosystème intestinal que les

pathogènes. Cela forme un film protecteur à la surface de l‘épithélium intestinal.

Lorsqu‘elles détectent des bactéries pathogènes, les bactéries de la flore

intestinale peuvent stimuler la synthèse de peptides antimicrobiens par les

cellules de l‘épithélium intestinal, telles que des bactériocines. Ces peptides

possèdent une activité de type antibiotique par effet bactéricide ou

bactériostatique. Le microbiote peut également stimuler la production par le

système immunitaire d‘IgA sécrétoires. [36]

Lorsque cette barrière est altérée, dû à une flore trop pauvre par exemple,

les antigènes présents dans la lumière intestinale se retrouvent directement en

contact avec les villosités des entérocytes, qui peuvent se rétracter et entrainer

une hyperperméabilité. La muqueuse intestinale n‘est plus suffisamment étanche

et peut laisser passer des macronutriments qui peuvent s‘avérer être des

allergènes, des toxines, des virus ou des bactéries. (Figure 6)

25

²

Figure 6 : Les trois grandes fonctions du microbiote [42].

2. Fonction immunitaire

Outre ses propriétés de barrière, le microbiote intestinal joue un rôle

fondamental dans le développement et la maturation du système immunitaire. La

découverte de cette fonction essentielle vient de l‘observation des différences

entre souris axéniques (élevés en milieu stériles et donc dépourvues de

microbiote) et souris conventionnelles (élevées en animalerie classique) [37].

Les souris axéniques présentaient de nombreuses anomalies au niveau du

Fonctions protectrices Fonctions immunes

Fonctions métaboliques

-Déplacement des agents

pathogènes

-Fortification de la barrière

intestinale

-Action sur les jonctions

serrées au niveau apicale

-Compétition vis-à-vis des

nutriments et des récepteurs

-Production de facteurs

antimicrobiens (acide lactique,

bactériocines…)

-Induction de la production

d‘IgA

- Stimulation du

développement et de la

maturation du système

immunitaire

-Contrôle de la différenciation et de la

prolifération des cellules épithéliales

intestinales

-Métabolisme des carcinogènes

alimentaires

-Synthèse de vitamines (biotine,folate…)

-Fermentation des résidus alimentaire non

digestibles

-Récupération de l‘énergie.

Bactérie commensale

IgA

Acides gras

à chaines

courtes

26

système immunitaire intestinal : hypoplasie des plaques de Peyer, diminution

des lymphocytes intra-épithéliaux, déficit en certaines populations

lymphocytaires T, diminution de la sécrétion intestinale d‘IgA, de la

concentration d‘immunoglobulines sériques et de la production de cytokines.

Mais le plus intéressant est que ces anomalies ne se cantonnaient pas au système

immunitaire intestinal, puisqu‘on observait dans la rate et les ganglions

lymphatiques des zones lymphocytaires atrophiées. Par ailleurs, quelques

semaines après l‘inoculation du microbiote de souris conventionnelles à ces

souris axéniques, l‘ensemble de ces anomalies disparaissaient.

Le bon fonctionnement de l‘immunité réside dans la collaboration étroite

entre les bactéries du microbiote intestinal et les cellules immunitaires.

Lorsqu‘un antigène arrive à la muqueuse intestinale, il est capté par des

récepteurs TLR présents à la surface des cellules épithéliales. Certaines bactéries

sont capables d‘empêcher cette interaction par la production de mucus. La

barrière physico-chimique constitue donc un premier niveau de protection,

tandis que les immunités innée et acquise agissent à un second niveau.

Le microbiote intestinal régule le nombre de cellules dendritiques locales,

et stimule le développement de macrophages et monocytes. Les acides gras à

chaîne courte comme le butyrate inhibent la production de cytokines pro-

inflammatoires, tandis que l‘acétate joue un rôle dans le recrutement de

neutrophiles. L‘interaction entre les bactéries commensales et les cellules

dendritiques amène à la production d‘IgA par les lymphocytes B, limitant la

pénétration de pathogènes dans la muqueuse intestinale. La population de

lymphocytes T CD8+ dans l‘espace intra-épithélial se maintient grâce aux

signaux émis par le microbiote intestinal. De même, le maintien de la population

27

de lymphocytes T régulateurs, ou Treg, est dû en parti au microbiote. Si

certaines bactéries stimulent les populations Th17 intestinales, d‘autres agissent

sur les Treg.

Par ces multiples interactions, on constate que le microbiote intestinal joue

un rôle majeur sur l‘homéostasie du système immunitaire, et inversement [38].

(Figure 7).

Figure 7 : Dialogue entre microbiote et système immunitaire [38].

28

3. Fonction métabolique

Les principales sources d‘énergie du microbiote intestinal sont les glucides

et les protéines contenues dans les fibres alimentaires non digérées par l‘hôte

dans le tractus digestif supérieur et qui parviennent dans le côlon. La nature et la

quantité des substrats disponibles dépendent donc des individus et de leur

régime alimentaire qui constitue un facteur environnemental susceptible

d‘influencer l‘équilibre du microbiote. La biotransformation de ces différents

substrats par le microbiote colique, d‘une part, permet aux bactéries d‘obtenir

l‘énergie nécessaire à leur croissance et d‘autre part, génère la production d‘une

diversité de métabolites qui sont pour la plupart absorbés et utilisés par l‘hôte.

3.1. Métabolisme des glucides

Le processus de fermentation va conduire à la formation d‘acides

organiques et de gaz à partir des sucres complexes non digérés.

Les polysaccharides, que l‘on trouve dans les fruits, les légumes, les

céréales, sont constitués de longues chaines de sucres complexes. Ils vont être

pris en charge au niveau du côlon par différents groupes bactériens du

microbiote qui s‘associent pour former une chaîne de dégradation anaérobie des

polymères glucidiques en métabolites fermentaires.

Dans un premier temps, les polymères sont dégradés en fragments plus

petits par des hydrolases produites par des bactéries fibrolytiques (Bacteroides,

Bifidobacterium). Ces fragments de sucres vont par l‘intermédiaire des bactéries

glycolytiques, être utilisés dans la voie de la glycolyse et ainsi former du

pyruvate. Le pyruvate va être métabolisé en acides gras à chaines courtes

(AGCC) et gaz (hydrogène, dioxyde de carbone et méthane). La majorité des

29

espèces du microbiote va produire à partir des AGCC de l‘acétate (Bacteroides,

Clostridium), mais on trouve également du propionate (Bacteroides) ou du

butyrate (Eubacterium), selon les espèces rencontrées. Ces AGCC, produits par

les bactéries de la flore vont avoir de nombreux rôles dans l‘homéostasie

intestinale. Dans un premier temps ce sont des substrats énergétiques pour

l‘épithélium colique, ils ont un rôle immuno-modulateur, et semblent être

impliqués dans le maintien d‘un état anti-inflammatoire au niveau intestinal

(Figure8) [39].

Figure 8 : Chaîne trophique de la fermentation des glucides [39]

30

3.2. Métabolisme de gaz

Les processus fermentaires produisent de grandes quantités d‘hydrogène

dans le côlon. L‘efficacité de la fermentation dépend de la capacité de

l‘écosystème à éliminer cet hydrogène. Pour cela différentes voies vont être

utilisées.

Une partie de l‘hydrogène est éliminée par voie pulmonaire et par les gaz

rectaux, mais la majorité est métabolisée par les micro-organismes du

microbiote dits hydrogénotrophes.

Ils sont de 3 types qui utilisent chacun une voie métabolique différente : les

archées méthanogènes (présentes chez 40% des adultes) produisent du méthane,

les bactéries acétogènes produisent de l‘acétate et les bactéries sulfatoréductrices

produisent des sulfures qui sont potentiellement délétères pour le côlonocyte.

3.3. Métabolisme des protéines

Le phénomène de putréfaction va également produire des AGCC, mais

aussi des corps aromatiques, potentiellement toxiques pour l‘hôte.

La biodégradation des protéines va faire intervenir plusieurs espèces

bactériennes aux activités complémentaires. Dans un premier temps, les

bactéries dites protéolytiques (Bacteriodes, Clostridium, Streptococcus,

Lactobacillus) vont hydrolyser les protéines en petits peptides grâce à leur

activité protéasique. Certaines espèces vont assimiler ces peptides et les

transformer en acides aminés libres.

La fermentation des acides aminés par des réactions d‘oxydation et de

réduction aboutit à la production d‘AGCC : acétate, propionate et butyrate

(comme la fermentation des glucides), mais aussi d‘ammoniaque et d‘autres

31

composés potentiellement toxiques pour l‘hôte qui vont être absorbés et

détoxifiés dans la muqueuse colique puis excrétés dans les urines.

L‘ammoniaque quant à elle est absorbée dans le côlon et rejoint le foie par

la circulation portale où elle est convertie en urée, qui est éliminée par voie

urinaire. Elle est également utilisée comme source d‘azote par des bactéries

pourvues d‘activité aminotransférase qui l‘utilisent pour la synthèse d‘acides

aminés (Figure 9).

Figure 9: Métabolisme microbien des protéines dans le côlon humain : relation entre

protéolyse et protéosynhèse bacterienne [39].

3.4. Métabolisme des lipides

Dans la lumière colique, les lipides proviennent de trois origines : les

lipides arrivants du tractus intestinal en amont, les lipides provenant de la

desquamation des cellules épithéliales coliques et les lipides bactériens.

32

Les acides gras non absorbés dans l‘intestin grêle sont transformés dans le

côlon par les bactéries du microbiote par des phénomènes d‘hydrolyse,

d‘oxydation, de réduction et d‘hydroxylation.

Le cholestérol colique est transformé en coprostanol par le microbiote, il

n‘est pas absorbé et est donc éliminé dans les fèces [40]. Les acides biliaires

sont un produit de transformation du cholestérol par le foie. Ils sont également

conjugués, et vont être réabsorbés dans l‘iléon terminal puis retournent au foie

via le système porte, avant d‘être à nouveau sécrétés dans la bile (cycle

entérohépatique des acides biliaires). Seuls 5 % des acides biliaires secrétés dans

la bile parviennent au côlon et y sont métabolisés par les bactéries du microbiote

en acides biliaires secondaires selon des réactions de déconjugaison, oxydation

et épimérisation [41].

Figure 10: Voies directes et indirectes pour la conversion du cholestérol en coprostanol

par le microbiote intestinal [40].

33

3.5. Synthèse des vitamines

Le microbiote intestinal participe à l‘apport indispensable d‘acides aminés

et à la synthèse des vitamines. Le tableau 3 résume ci-dessous les vitamines

synthétisées par le microbiote ainsi que leur rôle dans la physiologie cellulaire et

à l‘échelle des tissus.

Tableau 3: Synthèse vitaminique du microbiote

Vitamine Implication

K Coagulation sanguine, métabolisme des os.

B12 Synthèse de neuromédiateurs, synthèse de l‘ADN, synthèse des acides gras

B9 Synthèse de l‘ADN, synthèse de certains acides aminés

B6 Métabolisme des acides aminés, réaction d‘hydrolyse du glycogène en glucose

B8 Métabolisme des acides gras, des glucides et des acides aminés, ainsi qu‘à la

biosynthèse des vitamines B9 et B12.

B2 Transformation des aliments simples (glucides, lipides et protéines en énergie,

métabolisme de réparation des muscles

Nous venons de voir que le microbiote intestinal possède des fonctions

protectrices, immunologiques et métaboliques essentielles pour la santé. Nous

verrons en suivant qu‘un dérèglement de ces fonctions est retrouvée dans

diverses pathologies chroniques.

34

II. Normobiose et dysbiose du microbiote intestinal

Nous désignerons l‘état normal du microbiote intestinal humain par le

terme « normobiose ». Sur la base d‘évaluations moléculaires indépendante des

cultures, il semble possible de définir des critères qualifiant la normobiose. Bien

entendu, l‘accent a été mis, pour des raisons techniques, sur l‘évaluation

phylogénétique de la composition, de la diversité, des espèces centrales et de la

dynamique de celles-ci dans le temps et l‘espace, et il est évident que la

définition de la normobiose tirera profit de l‘ajout de paramètres fonctionnels.

Ce contexte permet en outre d‘identifier les écarts spécifiques par rapport à la

normobiose, c‘est-à-dire la dysbiose, qui peut être spécifiquement explorée dans

les maladies immunitaires, métaboliques ou dégénératives.

L‘exploration de la dysbiose pourrait être vue comme une première étape

fournissant des informations clés pour la mise au point de stratégies visant à

restaurer ou maintenir l‘homéostasie et la normobiose.

La dysbiose peut être définie comme une anomalie de la composition de la

flore commensale pouvant occasionner des effets néfastes sur l‘hôte. Elle peut

être due à un excès de pathobiontes (micro-organisme potentiellement délétère),

et/ou un manque d‘espèces bénéfiques souvent des Firmicutes dominants, et/ou

une faible biodiversité de la niche écologique.

Ces déséquilibres de la niche écologique sont retrouvés dans certains

troubles intestinaux (diarrhées infectieuses, diarrhées dues aux antibiotiques,

troubles fonctionnels intestinaux voire MICI) et extra-intestinaux.

35

III. Pathologies en relation avec la dysbiose

1. Les maladies inflammatoires chroniques de l’intestin

Les Maladies Inflammatoires Chroniques de l‘Intestin (MICI) se

caractérisent par une inflammation de la paroi d‘une partie du tube digestif [43],

liée à une hyperactivité du système immunitaire digestif.

Dans la maladie de Crohn, l‘inflammation peut toucher tous les niveaux du

tube digestif de la bouche à l‘anus, mais est principalement retrouvée au niveau

de l‘intestin.

Dans la rectocolite hémorragique, l‘inflammation est localisée au niveau du

côlon et du rectum. Ce sont des maladies chroniques qui évoluent par une

alternance de phases de poussées et de phases de rémissions plus ou moins

complètes. Lors des poussées inflammatoires, les symptômes vont se présenter

sous la forme de douleurs abdominales avec des diarrhées fréquentes, parfois

sanglantes.

La prévalence des MICI est en constante augmentation ces dernières

années. Ils sont des maladies d‘origine inconnue mais qui semblent

multifactorielles, plusieurs facteurs peuvent étre impliqués : des facteurs

génétiques, immunologiques, environnementeux tels que le tabac ou

l‘appendicectomie et des facteurs liés à la composition du microbiote.

L‘hypothèse actuelle serait que les MICI résulteraient d‘une réponse

immunitaire inadaptée vis-à-vis d‘une modification du microbiote intestinal ou

dysbiose chez des patients génétiquement prédisposés.

36

Des études moléculaires, indépendantes de la culture, basées pour la

plupart sur le séquençage du gène codant l‘ARN ribosomal 16S, ont permis de

mettre en évidence certaines anomalies du microbiote intestinal au cours des

MICI. Ces anomalies sont :

une forte instabilité du microbiote au cours du temps,

la présence d‘environ 30 % de bactéries inhabituelles,

une restriction de la biodiversité généralement aux dépens du phylum des

Firmicutes,

une augmentation de la concentration bactérienne muqueuse [44].

Une analyse de type «analyse en composante principale» prenant en

compte la composition du microbiote fécal pour un individu montre bien que les

sujets atteints de MICI, même en rémission, ont un profil de flore différent de

celui des sujets sains (Figure11).

La dysbiose pourrait participer à l‘activation chronique et inappropriée du

système immunitaire intestinal et conduire au phénomène inflammatoire. Cette

dysbiose est caractérisée par un déficit en certaines bactéries, telles que

Faecelibacterium prausnitzii, du groupe Clostridium leptum, mais aussi par une

augmentation de certains pathogènes tels qu’Escherichia coli AIEC ou

Mycobacterium avium paratuberculosis [45]. La perte de F. prausnitzii associé

au développement d‘une MICI a suggéré le rôle anti-inflammatoire de cette

bactérie.

37

Figure 11: Analyse en composante principale du microbiote fécal de sujets sains et de

sujets atteints de MICI en rémission [45].

L‘impact de la dysbiose sur la physiologie de l‘épithélium intestinal peut

être médié par la biotransformation et la modulation de molécules présentes

dans la lumière intestinale. Parmi ces molécules d‘intérêt on peut citer les

peptides antimicrobiens, les acides biliaires, ou encore aux molécules

impliquées dans la communication bactérienne.

La dysbiose paraît être un élément clé dans la physiopathologie des MICI.

En comparant le profil du microbiote intestinal des MICI en rémissions aux

sujets en poussée par qPCR sur les selles des patients, la dysbiose, et

particulièrement le déficit en F. prausnitzii, est plus prononcée [46].

Ce résultat nous incite à penser qu‘une dysbiose plus marquée pourrait être

prédictive de rechute. Récemment, une étude microbiologique, insérée dans la

cohorte STORI du GETAID, a permis de mettre en évidence la dysbiose

associée à la maladie de Crohn comme facteur prédictif de récidive clinique

après arrêt du traitement par infliximab au cours d‘une maladie de Crohn bien

contrôlée [47].

38

Ces travaux mettent en évidence une dysbiose au cours de la Maladie de

Crohn plus marquée chez les futurs rechuteurs avant même l‘arrêt du traitement

par infliximab. La quantité de bactéries appartenant aux groupes Clostridium

coccoides et Bacteroides (et apparentés) ainsi que la prévalence de l‘espèce F.

prausnitzii dans les selles permet de discriminer les patients qui resteront en

rémission des futurs rechuteurs.

En conclusion, des arguments convergent pour placer le microbiote

intestinal au cœur de la pathogénie des MICI. Ce microbiote est en interaction

directe et indirecte avec les cellules épithéliales, les composants secrétés de la

barrière intestinale (mucus, IgA, peptides antimicrobiens, lysozyme) et le

système immunitaire muqueux (cellules dendritiques, lymphocytes). Par ailleurs,

la dysbiose est un élément important puisqu‘elle permet d‘envisager une

approche thérapeutique qui viserait à restaurer une normobiose.

2. Les infections à Clostridium difficile

Clostridium difficile est un bacille Gram positif, anaérobie strict et

sporulant. Il appartient à la classe des Firmicutes et a été pour la première fois

identifié en 1935 par Hall et O‘Toole.

Il possède deux formes :

la forme végétative, infectieuse car capable de produire les toxines A et B à

l‘origine des manifestations cliniques digestives ;

la forme sporulée, très résistante aux conditions extrêmes de

l‘environnement et à la plupart des désinfectants. Elle constitue la forme de

contamination.

39

La gravité d‘une infection par C. difficile (ICD) peut être de différents

niveaux [48] allant d‘une colonisation asymptomatique ou une diarrhée légère,

jusqu‘à des stades plus sévères comme la colique pseudomembraneuse, le

mégacôlon toxique, la septicémie et peut entrainer la mort.

2.1. Physiopathologie

Le processus infectieux commence par La rupture de la diversité

commensale ou dysbiose entraîne une rupture de l‘effet barrière qui favorise la

contamination, endogène ou exogène, suivie d‘une germination des spores puis

d‘une étape de colonisation avec production de toxines. Les souches

toxinogènes de C. difficile produisent deux toxines différentes. Elles sont toutes

les deux constituées de quatre domaines (domaine catalytique glycosyl-

transférase, protéolytique, transmembranaire avec libération de toxines, liaison

aux cellules). Les différents domaines agissent en synergie pour se lier au

récepteur cellulaire, libérer dans le cytoplasme de la cellule le domaine

catalytique entraînant une altération du cytosquelette d‘actine avec effet

cytopathique (ouverture des jonctions serrées de l‘épithélium intestinal et perte

de l‘intégrité intestinale) [49].

Les toxines de C. difficile ont des effets inflammatoires sur les cellules

épithéliales, les cellules dendritiques et macrophages et sur les mastocytes,

l‘activation de toutes ces cellules aboutissant au recrutement massif de

polynucléaires neutrophiles et en l‘absence de contrôle à des lésions tissulaires.

La toxine B est par ailleurs directement responsable de nécrose tissulaire. La

toxine A a initialement été considérée comme le principal facteur de

pathogénicité mais à l‘heure actuelle différentes études cliniques permettent de

penser que les 2 toxines agissent en synergie avec un rôle prédominant de la

40

toxine B et qu‘elles sont toutes deux indispensables à l‘expression clinique du

pouvoir pathogène de C. difficile [50]

Figure 12: Physiopathologie de l’infection à Clostridium difficile [50]

41

2.2. Les sources de dysbiose

L‘étude (Chang et al. 2008) de la flore des selles de personnes atteintes de

formes récurrentes de l‘infection à C. difficile en comparaison à celle de sujets

sains ou atteints d‘un épisode initial a montré une diminution nette de la

diversité globale des micro-organismes et une modification des phyla

dominants.

Figure 13: Abondance relative des phyla bactériens dominants dans les échantillons

fécaux de sujets témoins en bonne santé, chez les patients présentant un épisode initial

d’ICD et chez les patients atteints d’une forme récurrente d’ICD. [50]

On observe chez les sujets atteints de formes récurrentes d‘ICD une

modification de l‘abondance des phyla retrouvés habituellement de manière

majoritaire chez les individus sains : Bacteroidetes et Firmicutes. De plus, cette

variation entraîne une perte de résistance à la colonisation, en effet chez certains

patients la bactérie C. difficile est devenue dominante de la communauté

microbienne.

42

Sources de dysbiose :

traitement antibiotique : L‘élément déclencheur de la contamination par

C. difficile est l‘utilisation d‘antibiotiques. En effet ceux-ci détruisent une partie

de la flore anaérobie commensale qui sert de barrière, et permet ainsi aux

souches de C. difficile qui sont résistantes aux antibiotiques de s‘implanter et de

se multiplier. On observe une équation entre le niveau de résistance de la souche

à l‘antibiotique, la concentration en antibiotique et la sensibilité des espèces

composant la flore commensale.

Figure 14: Elimination des bactéries sensibles et sélection de bactéries résistantes dans le

microbiote intestinal lors de l’administration d’un antibiotique [51].

43

Les antibiotiques les plus impliqués sont la clindamycine (lincosamide), les

céphalosporines de 3ème génération et l‘amoxicilline. Mais sont aussi

incriminés les macrolides, les céphalosporines de 2ème génération et les

fluoroquinolones.

le recours aux inhibiteurs de pompe à proton

les régimes sans fibre et l’alimentation par voie parentérale

les acides biliaires sont connus pour influencer la germination et la

croissance de C. difficile. L‘acide cholique (acide biliaire primaire) favorise

fortement la germination. L‘acide chenodesoxycholique (acide biliaire tertiaire)

inhibe efficacement la germination des spores ainsi que la croissance des formes

végétatives in vitro mais il n‘a pas été démontré son effet préventif de l‘ICD en

modèle animal. [52].

Clostridium scindeus est une espèce bactérienne pouvant s‘établir dans

le colon humain et qui pourrait être associée à la résistance à l‘infection à

C.difficile par la production d‘acides biliaires secondaires capables d‘inhiber la

croissance de C. difficile.

Les flagelles de C. difficile qui confèrent la mobilité et la chimiotaxie

pourraient jouer un rôle dans la pathogénèse en contribuant à la réponse

inflammatoire de l‘hôte et aux lésions de la muqueuse. En activant le récepteur

de l‘immunité innée TLR5 les flagelles peuvent provoquer l‘activation des

cascades de signalisation cellulaire conduisant à la sécrétion de cytokines pro-

inflammatoires. [53]

44

3. Le syndrome de l’intestin irritable (SII)

Syndrome de l‘intestin irritable (SII) aussi décrit comme colopathie

fonctionnelle est un trouble fonctionnel caractérisé par la coexistence de

douleurs abdominales chroniques, de troubles du transit et d‘autres signes

fonctionnels se majorant lors des poussées douloureuse.Ce désordre gastro-

intestinal a été longtemps considéré comme diagnostic d‘exclusion, et de

multiples examens complémentaires étaient pratiqués afin d‘exclure une

pathologie organique.

Des progrès récents sont intervenus dans la compréhension de la

physiopathologie des symptômes en soulignant le rôle potentiel de la flore et en

ouvrant, de ce fait, de nouvelles perspectives thérapeutiques [54].

Physiopathologie : implication de la flore intestinale :

Le SII est une affection multifactorielle. L‘accent a été mis successivement

sur les troubles de la motricité digestive, puis sur l‘hypersensibilité viscérale, les

perturbations des voies neuro-immuno-hormales bi-directionnelles qui

connectent le système nerveux central au système nerveux entérique, et le rôle

d‘un état « inflammatoire » intestinal a minima avec des perturbations de

l‘immunité digestive. Ces différents facteurs sont impliqués à des degrés divers

selon les malades dans la genèse de la symptomatologie. De façon plus récente,

l‘attention s‘est portée sur le rôle de l'écosystème intestinal dans les troubles du

transit (diarrhée, constipation ou alternance des deux) mais aussi dans le

déclenchement et l‘entretien de la douleur abdominale et la survenue d‘une

production locale de cytokines pro-inflammatoires sans lésion de la muqueuse.

45

Au cours de la SII, l'écosystème intestinal peut être quantitativement et/ou

qualitativement différent de celui de sujets témoins

modifications quantitatives :

L‘hypothèse d‘une pullulation bactérienne dans le grêle est avancée, sur la

base des résultats anormaux de tests respiratoires démontrant une production

importante et précoce d'hydrogène après charge en lactulose ou en glucose.

Cette production accrue d‘hydrogène et de méthane s‘explique par l‘extension

de la zone de fermentation des résidus glucidiques au-delà du côlon, dans l‘iléon

et même dans le jéjunum distal. Cette pullulation favorise l‘apparition d‘une

inflammation intestinale et déclenche des troubles moteurs grêliques.

Le gaz majoritairement produit influencerait le profil symptomatique des

malades avec une production accrue de méthane particulièrement fréquente chez

les patients décrivant une colopathie fonctionnelle avec constipation chez qui

une corrélation positive entre la quantité de méthane produite et la sévérité du

ralentissement du transit a été rapportée.

Cette hypothèse d'une colonisation bactérienne s'est trouvée renforcée par

la démonstration d'une amélioration symptomatique significative après un

traitement de dix jours par un antibiotique, essentiellement la néomycine ou la

rifaximine. La réduction de l‘inconfort abdominal et des troubles du transit

concernait surtout les malades très méthano-producteurs avant le traitement

antibiotique [55-56].

modifications qualitatives :

En l‘absence de toute colonisation bactérienne chronique du grêle, des

données font état, au cours de la colopathie fonctionnelle, de modifications de la

46

composition de la flore endoluminale mais aussi de celles présentes dans le

biofilm au contact de la muqueuse. L‘abandon des techniques de mise en culture

des selles (non satisfaisantes car 80% des espèces bactériennes ne sont pas

cultivables) pour des techniques de séquençage des génomes bactériens et

notamment la détection de la fraction 16S ribosomale, permettent dorénavant

d‘obtenir des données beaucoup plus fiables sur la composition du microbiote au

cours de la colopathie fonctionnelle.

Un excès de Firmicutes (comme Faecalibacterium) est l‘anomalie la plus

constamment rapportée, soit comme unique différence, soit en association avec

une réduction des Bactéroidetes.

Une augmentation du rapport Firmicutes/ Bactéroidetes a été notamment

décrite chez les malades souffrant d‘une colopathie fonctionnelle avec

constipation, en association avec un état dépressif. L‘étude de la flore au contact

de la muqueuse, menée avant tout chez les malades souffrant d‘un syndrome de

l‘intestin irritable (SII) diarrhéique, a révélé une augmentation des Bactéroides

et Desclostridia, associée à une réduction des Bifidobactéries.

Ces anomalies du microbiote pourraient être une explication à la

fermentation colique excessive qui existe au cours de la colopathie

fonctionnelle. [55-56]

L‘un des rôles de la flore colique est la transformation des résidus

glucidiques. Cette fermentation aboutit à la production de gaz, principalement

hydrogène et méthane. Lors d‘une diète standard, la production d‘hydrogène

était deux fois plus élevée au cours du syndrome de l‘intestin irritable (SII) que

dans une population contrôle avec une vitesse de production de ce gaz beaucoup

plus rapide après un repas.

47

Avec un régime excluant les céréales autres que le riz ainsi que les produits

laitiers, la production d‘hydrogène était significativement réduite chez les

mêmes sujets atteints de colopathie fonctionnelle mais pas chez les contrôles.

Cette réduction de la production entrainait une amélioration des symptômes

déclenchés habituellement par la prise alimentaire. Cette activité métabolique

différente du microbiote au cours du syndrome de l‘intestin irritable (SII) est une

explication à la fréquente mauvaise tolérance à une diète enrichie en fibres,

notamment insolubles [55-56].

Un travail vient de confirmer cette hypothèse en démontrant chez des

malades atteints de la colopathie fonctionnelle constipés, par rapport à une

population témoin, une production accrue en hydrogène et en sulfides et

moindre en acides gras après consommation d‘amidon, en rapport avec une

réduction de certaines espèces bactériennes produisant du butyrate. Cette

métabolomique est également une explication possible à la mauvaise tolérance à

certains saccharides fermentables (« FODMAPS ») comme le fructose, l‘inuline,

et peut-être le lactose.

Les arguments qui existent pour un rôle de la flore sont encore

actuellement essentiellement indirects. La confirmation du rôle délétère du

microbiote ne pourra être apportée que par des études interventionnelles bien

menées avec des probiotiques et/ou des prébiotiques, ou des antibiotiques,

démontrant que modifier la flore améliore les symptômes [55-56].

48

4. Le cancer colorectal

4.1. La dysbiose et cancer colorectal

Le lien entre microbiote intestinal et cancer colorectal apparaît naturel, en

raison de la localisation tumorale. Néanmoins les premières démonstrations de

l'existence d'un lien fonctionnel entre microbiote et cancer colorectal ne

remontent qu'à deux décennies. Des expériences menées sur un modèle de souris

hétérozygotes pour la mutation du gène suppresseur de tumeur Apc (Apcmin/+)

ont mis en évidence un risque plus faible de développer un adénome dans

l'intestin de souris exemptes de tous germes (axéniques) en comparaison à des

souris « contrôle ».

Des études récentes se sont intéressées à la composition des microbiotes

humains, comparant notamment le microbiote intestinal de sujets sains et de

patients atteints de cancer colorectal. D'importantes différences ont été mises en

évidence dans la répartition des différentes bactéries, aussi bien dans la

muqueuse colique que dans les selles. Ces différences semblent toucher un

certain nombre de taxons, désormais bien identifiés. Burns et al. ont ainsi

séquencé puis comparé les microbiomes de 44 patients sains et 44 patients

atteints de cancer colorectal, d'après des échantillons de tissus coliques, et ont

observé un enrichissement en Proteobacteria (Providencia notamment) ainsi

qu'une déplétion en Firmicutes et Bacteroidetes dans la population malade.

Un enrichissement dans le phylum des Fusobacteria (Fusobacterium

nucleatum notamment), ainsi qu'une déplétion en Lachnospiraceae,

Ruminococcaceae et F prausnitzii (appartenant au Firmicutes) ont également été

mis en évidence dans le microbiome tumoral. Il a été découvert que le

49

microbiome des patients atteints de cancer était enrichi en gènes de virulence,

corrélés à la présence notamment de Fusobacteria et de Providencia. Ces

découvertes suggèrent que le microbiote pourrait être un contributeur du cancer

colorectal, et ne serait pas uniquement le témoin passif de l'évolution de la

maladie. Il reste cependant à identifier clairement et à quantifier ces facteurs de

virulence, qui pourraient constituer une cible thérapeutique potentielle.

D'autres bactéries ont pu être identifiées comme associées à la

carcinogenèse colique (Parvimonas micra, Solobacterium moorei et

Peptostreptococcus stomatis) mais avec des signaux biologiques bien plus

faibles.

Des différences de composition des microbiotes ont également été mises en

évidence selon le stade évolutif de son néoplasie (absence de tumeur, adénome,

carcinome). Des taux élevés de Bacteroides, d'E coli et de Streptocoques ont été

observés au stade carcinome.

Z. Wei et al. Ont quant à eux étudié les compositions des microbiotes de

patients atteints de cancer à différents stades de la maladie (survie, récurrence,

décès). Dans chaque groupe, 4 phyla dominaient : Proteobacteria (33,8–49,4

%), Firmicutes (16,9–22,7 %), Bacteroidetes (21,1–27,9 %) et Fusobacterium

(3,38–10,8 %), confirmant les données de Burns et al. Un enrichissement en B

fragilis était observé chez les patients non-survivants en comparaison aux

survivants. Une plus grande abondance de F nucleatum était notée chez les

patients en récidive de leur cancer en comparaison aux survivants.

Parallèlement, l'abondance en F prausnitzii était plus importante chez les

survivants que chez les non-survivants. Des taux élevés de F nucleatum et B

fragilis ont également été associés à une diminution de la survie globale,

50

établissant l'hypothèse que des bactéries du microbiote pourraient constituer des

biomarqueurs prédictifs de la survie au cours du cancer colorectal, péjoratifs

dans le cas de F nucleatum et B fragilis, tandis que la présence de F prausnitzii

constituerait plutôt un marqueur de bon pronostic (Tableau 4) [57].

Tableau 4: Mise en évidence d'un enrichissement ou d'une déplétion en espèces bactéries

au cours du cancer colorectal [57].

Enrichissement en bactéries Déplétion en bactéries

Proteobarteria

Candidatus

Porteria

Providencia

Escherichia coli

Clostridiales

Foecalibacterium prousnitzii

Lachnospiraceae

Ruminococcaceae

Fusobacteria

Fusobacterium nucleatum Roseburia

Bacteroides fragilis

Lactobacillales

Streptococcus gallolyticus

Enterococcus foecalis

Prevotella

Parvimonas micra

Solobacterium moorei

Peptosreptococcus stomatis

51

4.2. Physiopathologie : rôle du microbiote intestinal dans le cancer

colorectal

Les bactéries du microbiote pourraient être impliquées dans la

carcinogenèse selon un modèle « driver-passenger ». La première étape

consistant en la colonisation de l'intestin par des bactéries pathogènes « driver »

à potentiel pro-inflammatoire et pro-carcinogène (B fragilis, E coli notamment)

qui contribueraient à l'initiation du cancer colorectal.

La progression tumorale entraînerait alors une modification dans le

microenvironnement tumoral, permettant une colonisation par des bactéries

opportunistes « passenger » (F nucleatum, Streptococcus gallolyticus

notamment) favorisant le développement de la tumeur.

Le cancer colorectal résulte le plus souvent de la transformation d'un

adénome en carcinome, on parle alors de « séquence adénome-carcinome ». À

l'échelle moléculaire, l'initiation et le développement de cette séquence

correspondent à l'accumulation de mutations génétiques, avec activation

d'oncogènes (KRAS, MYC, PI3KCA) et inactivation de gènes suppresseurs de

tumeurs (APC, TP53). Par ailleurs, 15 % des cancers colorectaux, dont une

majorité localisée au côlon droit, sont liés au phénotype microsatellites instables

(MSI), résultant d'une déficience du système de réparation de l'ADN. Bien que

le microbiote ne puisse être considéré par lui-même comme carcinogène, le

cancer étant d'origine multifactorielle, des études ont récemment montré en quoi

le microbiote pouvait générer des modifications génétiques et influencer

l'apoptose et l'inflammation, favorisant le développement du cancer colorectal.

52

Des expériences menées sur un modèle murin de cancer colorectal induit

par l'injection intrapéritonéale d'azoxyméthane, composé carcinogène, ont

montré qu'un traitement antibiotique induisait une diminution du nombre et de la

taille des tumeurs, suggérant le rôle de certaines bactéries du microbiote

intestinal dans la carcinogenèse et qu'une dysbiose constituerait un des facteurs

contribuant au développement de la tumeur. Cette dysbiose peut en outre être

influencée par l'âge, l'alimentation ou le mode de vie, qui sont autant de facteurs

de risques de cancer colorectal.

Les découvertes récentes sur la composition et les fonctions du microbiote

intestinal et son implication dans la survenue et le développement du cancer

colorectal permettent aujourd'hui d'envisager le microbiote comme outil

important dans la prise en charge du cancer colorectal. Les modifications

initiales de la composition du microbiote au cours de la carcinogenèse colique

en font un potentiel outil de dépistage précoce du cancer colorectal [57].

5. Les maladies métaboliques

Backhed et al. En 2004 ont démontré que le microbiote intestinale

contribuait à la digestibilité de nos aliments et étaient donc partie prenante de

l'homéostasie métabolique. Turnbaugh et al. En 2006 ont complété cette

démonstration en montrant le caractère transmissible par le microbiote de

l‘obésité. Il a observé que la transplantation de microbiote intestinal de souris

obèses à des souris axéniques (sans germe) entraînait une prise de poids plus

importante chez celles-ci qu'une transplantation de microbiote intestinal issue de

souris de poids normal. La pertinence de ces données a été confirmée chez

l'homme notamment dans le cadre d'étude cas–témoins rapportant des

différences de microbiote selon l'obésité ou la présence d'un diabète [58].

53

5.1. Le microbiote intestinal dans l’obésité

Une des premières découvertes a été de mettre en évidence des

modifications qualitatives du microbiote intestinal chez la souris obèse. Les

souris présentant une obésité d‘origine génétique (ob/ob) possédaient deux fois

moins de Bacteroïdetes et une augmentation proportionnelle de Firmicutes par

rapport à leurs congénères sauvages [59] . Ces mêmes auteurs ont réalisé une

étude sur 12 sujets humains obèses. Premièrement, à l‘instar des observations

réalisées chez l‘animal, les sujets obèses présentaient une augmentation du ratio

Firmicutes/Bacteroïdetes.

Deuxièmement, après 52 semaines de régime faible en calorie ce ratio

diminue pour s‘approcher de celui des individus mince.

Ces résultats obtenus à la fois chez l‘animal et chez l‘homme, suggèrent

que la composition de la flore intestinale est altérée dans l‘obésité.

Toutefois, ces modifications observées ne sont probablement pas une

simple conséquence de l‘obésité. En effet, dans une autre étude, les chercheurs

ont montré que la flore elle-même participerait à un changement de

comportement alimentaire et métabolique [60]. La colonisation de souris

axéniques par un microbiote intestinal provenant de souris conventionnelles

aboutit à la normalisation de leur poids et une augmentation de la masse grasse

malgré une réduction de la prise alimentaire de 30% ; la colonisation par une

flore provenant de souris obèses (ob/ob) a mené à une prise de poids

pathologique et ces souris axéniques sont devenues obèses. La colonisation par

un microbiote de type « obèse » a donc transmis le phénotype obèse, cela

indique donc que la population microbienne joue un rôle dans les mécanismes

de l‘obésité. A l‘instar de la poule et l‘œuf, les études ne permettent pas

54

d‘affirmer à ce jour si c‘est la modification de la flore intestinale qui déclenche

l‘obésité ou si c‘est l‘obésité qui provoque les altérations de la flore.

Le consortium international MetaHit a analysé le génome bactérien

intestinal de 292 adultes danois comprenant 123 personnes non-obèses et 169

obèses. Les résultats distinguent deux groupes d‘individus selon la diversité de

leur microbiome. Un quart des individus de la cohorte sont « pauvres » en

espèces bactériennes, tandis que les trois-quarts possèdent une flore intestinale «

riche » en bactéries (c‘est-à-dire plus diversifiée) [61].

Les résultats montrent que les individus avec une flore « pauvre »

présentent une adiposité plus importante, une résistance à l‘insuline, une

dyslipidémie ainsi qu‘un phénotype inflammatoire plus marqué que les

individus avec une flore « riche ». 80% des obèses de l‗étude étaient dans le

groupe avec une flore intestinale « pauvre ».

Les chercheurs ont montré que 46 genres différaient significativement entre

les deux groupes : Bacteroïdes, Parabacteroïdes, Ruminococcus (R. torques and

R. gnavus), Campylobacter, Dialister, Porphyromonas, Staphylococcus et

Anaerostipes étaient davantage présents chez les « flores pauvres », et

Faecalibacterium, Bifidobacterium, Lactobacillus, Butyrivibrio, Alistipes,

Akkermansia, Coprococcus et Methanobrevibacter, étaient significativement

associés aux « flores riches ».

5.2. Le microbiote intestinal dans le diabète type 2

Dans le diabète de type 2, des altérations structurelles et fonctionnelles du

microbiote de patients par rapport à des sujets sains ont été retrouvées. La

composition du microbiote est modifiée avec une prédominance de

55

Protéobactérie et une augmentation des gènes impliqués dans le stress oxydatif

et l'inflammation est observée. L'excès de production d'IL-6, IL-1 et TNFa induit

une insulinorésistance par un défaut d'interaction entre l'insuline et son

récepteur. Les acides biliaires secondaires, métabolites du microbiote intestinal,

sont également diminués dans le diabète de type 2 alors qu'ils sont connus

protecteurs contre l'inflammation et favorables à l'insulino-sensibilité.

L'hypothèse consensuelle uniciste "microbiote et maladies métaboliques''

est associée au fond physiopathologique d'inflammation chronique des maladies

telles que l'obésité, l'insulino-résistance et l'athérome. Le microbiote intestinal

constitue notamment un large réservoir naturel de LPS (Lipo-polysaccharides),

un composant de la paroi des bacilles gram négatif, et dont les taux circulants

chez l'homme sont associés au diabète de type 2 et à l'obésité.

Cette "inflammation métabolique'' est médiée par les Toll-Like Receptors

(TLR) (récepteurs de l'immunité innée dédiés à l'identification de pathogènes

par les macrophages). TLR4, récepteur spécifique du LPS, possède un rôle pro-

inflammatoire et athérogène. Chez l'homme, certains polymorphismes

génétiques de TLR4 sont associés à une réduction du risque d'athérosclérose,

confirmant les résultats chez l'animal montrant que les souris TLR-4 KO sont

protégées contre le développement de l'inflammation et l'insulinorésistance.

[62].

L'altération de la flore intestinale modifie la perméabilité épithéliale

induisant un passage de fragment microbien activant une inflammation

hépatique et systémique (y compris dans les tissus adipeux) chronique.

(figure15)

56

Chez le sujet diabétique, la barrière intestinale est altérée et le microbiote

est différent de celui du sujet non-diabétique. Les bactéries adhèrent et

traversent le mucus pour transloquer au travers de l‘épithélium intestinal jusque

dans le milieu intérieur. Là, chez les sujets sains, les quelques bactéries qui

transloquent physiologiquement sont prises en charge par les phagocytes qui,

activés par les lymphocytes, détruisent les bactéries. Chez le diabétique de type

2, le grand nombre de bactéries qui transloquent ne sont pas détruites dans la

lamina propria de l‘épithélium. Les phagocytes ne sont pas activés efficacement

par les lymphocytes et vice-versa. Ainsi, les phagocytes chargés de bactéries

migrent vers les tissus de l‘organisme afin d‘y établir un microbiote tissulaire

délétère responsable de l‘inflammation métabolique.

Figure 15: Dysbiose du microbiote intestinal en cas de diabète [63].

57

6. Les troubles psychiatriques

Les troubles de l'humeur et les troubles psychotiques apparaissent parmi les

premières maladies du système nerveux central qui représentent les coûts directs

et indirects les plus importants dans le monde [64]. Alors que les prévisions

annoncent une augmentation de la prévalence des troubles mentaux à travers le

monde, le taux de réponse aux traitements actuels peut encore être amélioré et

les cas de résistances aux traitements ne sont pas exceptionnels. Des facteurs

cliniques, pharmacologiques, pharmacocinétiques et pharmacodynamiques

pourraient expliquer cette résistance, mais ne semblent pas suffisants pour

expliquer l'ensemble des variations idiosyncrasiques. Le chaînon manquant pour

comprendre la variabilité de la réponse individuelle, en termes d'efficacité et de

tolérance (comme la prise de poids par exemple) pourrait provenir de l'influence

du microbiote sur le développement et le fonctionnement du système nerveux

central.

6.1. La dysbiose et ses conséquences sur le fonctionnement du

système nerveux central (SNC)

Quatre mécanismes entremêlés ont été invoqués pour décrire ce que l'on

appelle communément l'axe « microbiote-intestin-cerveau » :

La modification de la perméabilité intestinale, qui conduit à une

augmentation de la perfusion de certaines endotoxines comme le LPS dans la

circulation sanguine. Le LPS est un composé inflammatoire contenu dans les

parois des bactéries Gram négatif, il peut altérer le fonctionnement du système

limbique en augmentant l'activité amygdalienne, il peut également activer la

microglie, contribuant ainsi à une inflammation chronique du système nerveux

58

central de l'hôte dans des modèles animaux. Restaurer la perméabilité intestinale

initiale permettrait donc potentiellement de limiter le passage de produits

inflammatoires bactériens dans la circulation générale et ainsi de réduire

l'inflammation chronique du SNC. Il a été démontré chez l'animal que la pré-

exposition à un stress physique et psychologique potentialiserait les effets du

LPS sur l'inflammation du système nerveux central. Les endotoxines sécrétées

par le microbiote jouent un rôle fondamental dans la formation de l'axe

corticotrope chez les rongeurs [65].

La modulation de l'inflammation locale et périphérique. Le microbiote

intestinal module le développement des structures lymphoïdes et la

différenciation des cellules immunitaires. Étant donné les effets anti-

inflammatoires du butyrate, la diminution des espèces produisant du butyrate

pourrait possiblement contribuer à l'inflammation du tube digestif. La

contribution de l'inflammation chronique au déclenchement et/ou à l'entretien de

maladies psychiatriques a fait l'objet de nombreuses études dans la décennie

passée : des anomalies inflammatoires et immunologiques ont été détectées chez

une proportion importante de patients souffrant de troubles de l'humeur ou

psychotiques.

La diminution de l'absorption de nutriments bénéfiques ou essentiels

(comprenant les acides aminés, les vitamines, les acides gras polyinsaturés) et

l'augmentation de la synthèse de composés délétères (l'ammoniaque, les phénols,

les indoles, les sulphides).

L'activation/désactivation du système nerveux autonome qui est

directement connecté au noyau du tractus solitaire. Chez la souris comme chez

l'humain, ce noyau envoie à son tour des projections noradrénergiques des aires

59

impliquées dans la régulation de l'anxiété : l'amygdale, le système cholinergique

et le cortex

6.2. La dysbiose et autisme

L‘autisme est un trouble neurodéveloppemental qui se développe à la petite

enfance, et persiste à l‘âge adulte. Il se caractérise par une altération des

capacités à établir des interactions sociales, à communiquer, et par des

comportements stéréotypés et répétitifs.

Les dysbioses dans les troubles du spectre autistique ont été largement

étudiées ces dernières années. En effet, des troubles gastro-intestinaux tels que

diarrhée, constipation et douleurs abdominales ont été répertoriés comme

comorbidités fréquentes des troubles du spectre de l‘autisme [67].Comparés aux

sujets sains, les enfants souffrant d'autisme auraient 10 fois plus de bactéries de

type Clostridium, une augmentation des Bacteroidetes et Desulfovibrio, et une

diminution des Firmicutes et Bifidobacterium. Une augmentation de la

perméabilité intestinale a également été décrite dans l'autisme ainsi qu'une

élévation des taux sanguins de LPS et d'interleukine 6 (IL-6). Certaines études

ont retrouvé également une perméabilité intestinale chez les apparentés de

premier degré des enfants autistes, suggérant que ces changements seraient

impliqués dans la genèse du trouble.

L'histologie, l'immunohistochimie et la cytométrie de flux ont montré une

infiltration panentérique subtile de cellules immunitaires (de type lymphocytes,

monocytes, cellules « natural killer » et éosinophiles) chez des enfants souffrant

d'autisme en comparaison d'enfants présentant des symptômes gastro-

intestinaux. Des taux élevés d'acide propionique, un acide gras à chaînes courtes

produit par certaines espèces bactériennes entériques (notamment de type

60

Clostridia, Desulfovibrio et Bacteroidetes) ont été retrouvés dans les fèces des

enfants souffrant d'autisme. L'acide propionique pourrait avoir de multiples

actions potentiellement délétères sur le système nerveux central, notamment la

synthèse et le relargage de neurotransmetteurs, le maintien du pH intracellulaire,

la régulation des flux de calcium, le fonctionnement mitochondrial, l'activation

immunitaire liée à une neuro-inflammation et la régulation de l'expression de

certains gènes. Les modèles animaux ont révélé qu'une administration d'acide

propionique chez le rat créait des stéréotypies, des déficits cognitifs, des

modifications électro-encéphalographiques et une diminution des interactions

sociales [67].

6.3. Le microbiote dans les troubles de l’humeur et les troubles

psychotiques

Chez la souris, le microbiote intestinal joue un rôle majeur dans la

régulation du stress, de l'anxiété et de l'humeur. Il existe toutefois des arguments

indirects chez l'humain : l'administration expérimentale de LPS chez des sujets

sains provoque des niveaux augmentés d'anxiété et de dépression, une

augmentation du cortisol salivaire, de l'adrénaline plasmatique et de cytokines

pro-inflammatoires. Le LPS module également la mémoire émotionnelle dans

cette même étude avec une relation dose-effet. Une faible sécrétion d'acide

gastrique a été rapportée chez les patients souffrant de troubles dépressifs

majeurs.

La diminution de l'acidité gastrique a été associée à la croissance réversible

du microbiote au niveau de l'intestin grêle (small intestinal bacterial over growth

SIBO) ainsi qu'à une augmentation de la perméabilité intestinale, de la

malabsorption, des épisodes de diarrhée ou des constipations. Un autre argument

61

pour le rôle du microbiote intestinal dans la régulation ou le déclenchement des

troubles anxio-dépressifs est la sécrétion d'acide gamma-aminobutyrique

(GABA) par certaines souches de Lactobacillus, de Bifidobacterium. Les genres

Escherichia, Bacillus, et Saccharomyces produisent de la noradrénaline.

Candida, Streptococcus, Escherichia, et Enterococcus produisent de la

sérotonine, alors que Bacillus et Serratia peuvent produire de la dopamine. Tous

ces neurotransmetteurs jouent un rôle majeur dans la dépression et le mécanisme

d'action des agents antidépresseurs.

L'un des champs majeurs de recherche concernant le rôle du microbiote en

psychiatrie pourrait être la prédiction de la prise de poids sous psychotropes. Un

modèle chez le rat a révélé que l'administration d'olanzapine (l'un des

antipsychotiques qui induit le plus de prise de poids) altérait le microbiote

intestinal des rats traités. Toutefois, l'implication du microbiote intestinal dans la

prise de poids sous antipsychotiques n'a pas été établie à ce jour chez l'homme.

D'autres études sont nécessaires pour déterminer le rôle exact du microbiote

dans la réponse aux antipsychotiques [68].

Nous venons de présenter différentes pathologies dans lesquelles

l‘altération du microbiote intestinal semble liée au développement de la maladie.

Dans la prochaine partie, nous traiterons de la capacité de la flore intestinale à

être une cible thérapeutique dans les cas où les traitements conventionnels ne

sont pas efficaces. Actuellement, les possibilités pour restaurer le microbiote

sont représentées par les probiotiques. Il est donc important de se pencher dans

un premier temps plus en détail sur ce que sont les probiotiques, ainsi que leurs

usages actuels. Puis, nous parlerons de leurs usages de demain. Nous

aborderons aussi une autre technique qui vise à restaurer l‘équilibre de la flore

intestinale : la transplantation de microbiote intestinal.

62

CHAPITRE 3 : Approches thérapeutiques

63

I. Les probiotiques

1. Historique

Le principe décrivant que les bactéries lactiques offraient des bénéfices

pour la santé a été défini par le Russe Elie Metchnikoff, prix Nobel de médecine

en 1908 [69]. Il disait à l‘époque que "la dépendance des microbes intestinaux

vis-à-vis des aliments rend possible l‘adoption de mesures pour modifier la flore

dans nos corps et remplacer les microbes dangereux par des microbes utiles".

Il a développé un régime alimentaire à base de lait fermenté par une bactérie

qu‘il appela le bacille bulgare.

La première bifidobactérie a été isolée par un membre de l‘institut Pasteur :

Henry Tissier chez un enfant en bonne santé nourri au sein. Il la nomma Bacillus

bifidus communis (maintenant nommée Bifidobacterium bifidum) et

recommanda de l‘administrer aux nourrissons souffrant de diarrhées. En 1917,

une souche non pathogène d‘Escherichia coli a été isolée par le professeur

allemand Alfred Nissle à partir de selles d‘un soldat qui n‘avait pas développé

d‘entérocolite lors d‘une épidémie sévère de shigellose.

Le terme ―probiotique‖ a vu le jour en 1965 par opposition aux

antibiotiques. Il a été défini par Lilly et Stillwell comme des facteurs dérivés des

micro-organismes et stimulant la croissance des autres micro-organismes.

Le préfixe « pro » signifie pour et le suffixe «-biotique » signifie la vie.

Probiotique signifie donc en faveur de la vie.

64

2. Définition

L‘Organisation Mondiale de la Santé décrit les probiotiques comme des

microorganismes (bactéries ou levures) vivants produisant des effets bénéfiques

pour la santé de l‘hôte lorsqu‘ils sont consommés en quantité suffisante.

Les probiotiques sont constitués de bactéries ou de levures (tableau 1) et

naturellement présents chez l‘homme, notamment au niveau de la flore

digestive. Quatre grands groupes de micro-organismes probiotiques peuvent être

distingués :

Les bactéries lactiques (lactobacilles et coques), les plus représentées, qui

fermentent les glucides pour induire la production d‘acide lactique ;

Les bifidobactéries, qui dégradent le glucose en acide lactique et

acétique ;

Les levures, qui proviennent de la souche Saccharomyces cerevisiae var

boulardii et d‘autres souches [70].

Les probiotiques peuvent se trouver naturellement dans certains aliments

tels que les produits laitiers ou être rajoutés (par exemple les préparations

destinées à l‘alimentation des nourrissons), on les trouve aussi sous forme de

comprimés, gélules, ou sachet contenant des bactéries lyophilisées. Les

probiotiques les plus connus sont les bactéries lactiques (Lactobacillus,

Streptococcus et Lactococcus) et les Bifidobactéries. On trouve également

quelques espèces de Bacillus et E.coli ainsi que la levure Saccharomyces

cerevisiae.

65

3. Les mécanismes d’action des probiotiques

Les mécanismes d‘action des probiotiques sont complexes, souvent

multiples et dépendent de la souche bactérienne considérée.Les principes actifs

des probiotiques et les détails moléculaires des interactions hôte-flore sont

encore mal connus [69].

Les effets des probiotiques résultent essentiellement de leurs interactions

avec, d‘une part, le contenu digestif, c‘est-à-dire les nutriments présents dans la

lumière intestinale et les composants de la flore endogène, et, d‘autre part, le

contenant, principalement les cellules épithéliales et les cellules

immunocompétentes de la lamina propia. Ils exercent ainsi un rôle à la fois

préventif et curatif dans des pathologies digestives, mais parfois aussi extra-

digestives. Il n‘existe pas de probiotique universel, mais certaines souches

données qui s‘avèrent efficaces au niveau d‘un site spécifique et pour une

indication précise. Ce sont surtout les lactobacilles et les bifidobactéries qui sont

responsables des bénéfices sur la santé.[70].

L‘action des probiotiques ne reposent pas sur un mécanisme unique mais

sur de multiples modes :

Action au niveau du tube digestif :

Les probiotiques améliorent la digestion du lactose par l‘apport

enzymatique de lactase, ce qui les rend intéressants pour la diminution des

troubles liés à une intolérance au lactose (douleurs et ballonnements

abdominaux, diarrhées).

Ils sont également capables de moduler la réponse immunitaire intestinale

et systémique. Au niveau du tissu lymphoïde de la muqueuse intestinale se crée

66

une interaction avec les cellules immunitaires y résidant ou y circulant. En

résulte une augmentation du nombre de monocytes macrophages et de cytokines

pro- ou anti-inflammatoires.

Ils agissent également sur les lymphocytes B et T, ce qui module la

sécrétion d‘IgA sécrétoires, et sur d‘autres cellules immunitaires. Certaines

études in vitro ont montré que les probiotiques peuvent susciter une diminution

de la production des IgE qui pourrait expliquer leur rôle dans la prévention de

l‘allergie.

Ils exercent aussi un rôle trophique sur la muqueuse intestinale, c‘est-à-

dire qu‘ils stimulent la motricité colique, la production d‘acides gras à chaînes

courtes à effet trophique ainsi que la production de mucus. Enfin, ils neutralisent

un certain nombre de substances toxiques ou carcinogènes.

Protection vis-à-vis des micro-organismes pathogènes :

Les probiotiques renforcent l‘effet barrière antipathogènes. Ils s‘opposent à

l‘implantation des micro-organismes pathogènes par compétition sur les sites

d‘adhésion microvillositaires grâce à

Leur potentiel d‘adhésion à la muqueuse intestinale. De plus, ils exercent

une action antibactérienne :

directe, par la production de substances antimicrobiennes comme les

bactériocines et défensines, certains acides organiques, le peroxyde

d‘hydrogène ;

indirecte, par la création d‘un environnement défavorable à l‘implantation

et à la prolifération des bactéries pathogènes spécifiques par modification du pH

intestinal. Les probiotiques conduisent à la formation d‘acide gras à chaînes

67

courtes qui acidifient le milieu intestinal.

Cette acidification entraîne la solubilisation des minéraux, en particulier du

calcium, qui améliore leur absorption digestive. Au contraire, le pH acide

insolubilise les sels biliaires, réduisant leur assimilation et augmentant leur

excrétion fécale [70].

Figure 16: Résumé schématique des mécanismes d’action des probiotiques [71].

68

4. Effets secondaires et contre-indication

Même si les probiotiques présentent une bonne sécurité d‘emploi, des effets

indésirables existent. Certaines situations contre-indiquent leur emploi.

4.1. Effets indésirables

Les probiotiques peuvent être responsables d‘effets indésirables potentiels

[72].

les troubles gastro-intestinaux :

Des troubles gastro-intestinaux mineurs ont été reportés chez les personnes

consommant des probiotiques tels que des crampes abdominales, nausées,

diarrhées, flatulence, perturbation du gout. Ce sont des effets transitoires et

majoritairement auto-résolutifs.

Le risque infectieux :

L‘évènement le plus souvent rapporté est une fongémie, avec 33 rapports

qui décrivent la présence de S. boulardii dans des cultures de sang de patients

ayant consommé le probiotique S. boulardii. 8 cas de bactériémies associées à

des lactobacilles ont été rapportés, avec les souches L. acidophilus, L. casei et L.

GG. De plus, des cas de sepsis, endocardite, abcès ont chacun été rapportés

plusieurs fois.

Des études d‘usage de probiotiques chez des patients ayant reçu une greffe

d‘organe et chez des personnes immunodéprimées ont été réalisées et ont montré

l‘absence de développement d‘infection systémique.

Comme certains cas de bactériémies par lactobacilles se sont produits dans

des milieux de soins intensifs avec des patients porteurs de cathéter veineux

69

central, il convient que le personnel manipulant des probiotiques recoure à des

mesures d‘hygiènes très importantes lors de la manipulation des produits.

Les cas d‘infections plus ou moins graves restent anecdotiques par rapport

à l‘usage actuellement courant des probiotiques et il serait nécessaire d‘effectuer

d‘autres études pour établir le lien entre la prise de probiotique, l‘état du patient

et le développement de l‘infection

Transfert de gènes :

Les bactéries lactiques possèdent des plasmides contenant des gènes qui

confèrent des résistances à des antibiotiques tels que les tétracyclines ou les

macrolides.

Malgré la possible théorie de transfert latéral de gènes entre un organisme

probiotiques et un autre organisme dans l‘intestin, une preuve clinique de

transfert de résistance antimicrobienne n‘a jamais été observée. Il s‘agit quand

même d‘un élément particulièrement important à noter étant donné l'utilisation

concomitamment des probiotiques avec des antibiotiques.

Dans la plupart des essais cliniques réalisés sur les souches de probiotiques,

les conclusions ne font aucune référence à d‘éventuels effets indésirables. De

plus, l‘utilisation courante sans effets néfastes depuis de nombreuses années et

aussi bien dans les essais cliniques, chez les animaux et dans les études in vitro

semble confirmer la sécurité de l‘usage des probiotiques.

On estime quand même que certaines populations sont plus à risques de

développer une infection lors de l‘usage de probiotiques, comme les personnes

immunodéprimées, les personnes porteuses de valves mécaniques ou ayant des

altérations des valves cardiaques, les patients hospitalisés et notamment dans des

70

services de soins intensifs, et les patients porteurs d‘un cathéter veineux central.

Chez ces populations particulières, il convient de prendre des précautions

d‘emploi lors d‘un usage éventuel de probiotiques.

4.2. Contres indications aux probiotiques

Dans certaines situations physiopathologiques, un avis médical s‘avère

nécessaire en cas de :

- Déficit immunitaire (virus de l‘immunodéficience humaine, lymphome) ;

-Immunodépression iatrogène (corticothérapie, chimiothérapie,

radiothérapie) -Fièvre,

-Nausées, vomissements,

- Diarrhées sanglantes ou douleurs abdominales importantes dont les

causes sont inconnues.

- Pancréatites aiguës (risque infectieux).

-Si des souches de bactéries ou de levures faisant parties du produit

probiotique présentent une résistance atypique inexpliquée à un ou plusieurs

antibiotiques, le(s) nom(s) de(s) l‘antibiotique ou des antibiotiques doit/doivent

être indiqué(s) sur l‘étiquette en tant que contre-indication [73].

5. L’intérêt clinique des probiotiques

5.1. Les probiotiques dans les maladies intestinales

De nombreux probiotiques sont actuellement vendus en pharmacie, et

conseillés pour différentes problématiques. La majorité des indications et

allégations actuelles concernent des maladies en rapport avec le tube digestif et

71

notamment les diarrhées associées aux antibiotiques les antibiotiques, les

diarrhées infectieuses à Clostridium difficile ou à rotavirus et le syndrome de

l‘intestin irritable et les maladies inflammatoires de l‘intestin .Les probiotiques

peuvent être utilisés en prévention, en tant qu‘adjuvent aux traitements

allopathiques, ou en curatif.

L‘utilisation de probiotiques dans la prévention des diarrhées associées aux

antibiotiques a été étudiée dans de nombreux travaux. Une étude récente a

montré que les souches probiotiques Lactobacillus rhamnosus GG,

Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus casei et la levure Saccharomyces

boulardii préviennent la diarrhée sous antibiotiques avec une réduction du risque

supérieure à 50 % par rapport au placebo alors que seul Saccharomyces

boulardii réduit le risque de rechute chez des sujets porteurs d‘une infection à

Clostridium difficile [5]. Ainsi, il a été démontré que l‘administration chez des

nourrissons souffrant de diarrhée à rotavirus des probiotiques : Lactobacillus

rhamnosus GG, Bifidobacterium lactis BB-12, Bifidobacterium bifidum,

Lactobacillus casei DN-114001 et Streptococcus thermophilus a raccourci la

durée de la diarrhée et, a augmenté le nombre des cellules sécrétant les IgM

spécifiques du rotavirus et IgA [74]. Par ailleurs, Une modification des

habitudes alimentaires lors d‘un voyage, surtout si celui-ci a eu lieu dans des

conditions sanitaires précaires, est une cause de déséquilibre de microbiote

intestinal. L‘efficacité de l‘administration d‘un mélange de probiotiques :

Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus bulgaricus, Saccharomyces

thermophilus et de bifidobactéries a été prouvée dans la réduction de

l‘apparition des diarrhées du voyageur en passant de 43% contre 71% sans

supplémentation [75]. De même, l‘utilisation de Lactobacillus Rahmnosus GG

72

ou Saccharomyces boulardii a été préconisée pour les diarrhées du voyageur et

post-antibiotiques. Enfin, la souche Lactobacillus rhamnosus Lcr35 s‘est avérée

efficace en adjuvance du traitement des diarrhées induites par les radiations chez

des patients ayant subi une radiothérapie, principalement pour des cancers de la

sphère urogénitale [76].

Un essai randomisé contrôlé a indiqué que Les probiotiques peuvent être

utiles aussi en cas de constipation. Il a été montré que les Lactobacilles et les

bifidobactéries peuvent avoir des effets positifs sur la constipation en produisant

des acides diminuant le pH intraluminal et stimulant la motilité intestinale,

entrainant ainsi une amélioration de la consistance des selles et de la fréquence

de défécation [76]. Cela permettrait de réduire l‘utilisation de laxatifs qui ont

l‘inconvénient majeur d‘éliminer, en plus du bol fécal, différentes substances

essentielles à l‘organisme comme les acides aminés ou les minéraux. Les

bactéries lactiques modifient l‘équilibre du microbiote intestinal provoquant de

ce fait une excitation de la muqueuse et des muscles, ce qui entraine un

ramollissement des selles.

La consommation d‘un mélange probiotique comprenant 2 souches de L

rhamnosus, une souche de Bifidobacterium breve et une souche de

Propionibacterium freudenreichii a permis de diminuer globalement les

symptômes du syndrome du côlon irritable, Concernant les essais effectués avec

une seule souche bactérienne probiotique, certains lactobacilles se sont avérés

efficaces, en particulier des Lactobacillus plantarum, ainsi que des

bifidobactéries appartenant aux espèces Bifidobacterium infantis et

Bifidobacterium animalis.

73

Les probiotiques peuvent apporter des améliorations dans la prévention des

rechutes et le traitement de la maladie de Crohn, de la rectocolite hémorragique

et de la pochite. Escherichia coli Nissle 1917, Saccharomyces boulardii et

Lactobacillus rhamnosus GG ont montré une activité équivalente à la

mésalazine (un dérivé salicylé anti-inflammatoire) dans le maintien de la

rémission des RCH. Dans une autre étude, un mélange de bactéries nommé

VSL#3, contenant 5.1011 cellules/g de trois bifidobactéries (B. longum, B.

infantis et B. breve), quatre lactobacilles (L. acidophilus, L. casei, L. delbrueckii

subsp bulgaricus et L. plantarum) et un Streptocoque (Stretptococcus salivarius

subsp thermophilus), a montré son innocuité et son efficacité sur le traitement

des formes modérées de RCH. De plus, chez les patients non répondeurs aux

traitements conventionnels, VSL#3 a montré un taux d‘induction/maintenance

de la rémission de 77%. Par contre, les résultats des études sur l‘utilisation des

probiotiques dans l‘induction et la maintenance de la maladie de Crohn sont

moins pertinents [76].

5.2. Les probiotiques dans les maladies atopiques

L‘idée de l‘utilisation de probiotiques dans le traitement de désordres

allergiques est fondée sur le fait que cette pathologie est associée à une

dérégulation des réponses lymphocytaires Th1/Th2 et T régulatrices vis-à-vis

d‘antigènes exogènes.

L‘étude publiée en 2001 par Kalliomaki a montré l‘effet préventif de

l‘administration de probiotiques sur l‘apparition de l‘eczéma atopique chez le

nouveau-né et le nourrisson. Cette étude a consisté à administrer à la maman un

supplément contenant 1010

UFC de Lactobacillus rhamnosus GG pendant 2 à 4

semaines avant l‘accouchement. La supplémentation a été poursuivie chez la

74

mère allaitante ou chez le nouveau-né, pendant 6 mois à la même dose.

L‘incidence des manifestations allergiques a été réduite de moitié et les

concentrations de CD14 solubles dans le colostrum de ces mères étaient

significativement corrélées aux taux d‘IgA et d‘IgM à 12 mois dans le sang de

l‘enfant [77].

Quelques études ont montré un effet des probiotiques dans le traitement

de la dermatite atopique. Un traitement de 6 semaines par un mélange de 2

lactobacilles (Lactobacillus rhamnosus et Lactobacillus reuteri) a réduit

significativement l‘étendue de l‘eczéma d‘enfants âgés de 1 à 13 ans, et ce,

d‘autant plus que les sujets présentaient par ailleurs un fond allergique [78].

5.3. Les probiotiques dans les maladies psychiatriques

La relation microbiote intestinal-système nerveux suggère que certaines

bactéries pourraient avoir un effet bénéfique dans les maladies psychiatriques.

Certains auteurs n‘hésitent pas à parler de « psychobiotiques ». En effet, des

bactéries, et parmi elles des bifidobactéries et lactobacilles produisent des

substances neuro-actives tels que l‘acide gamma-aminobutyrique(GABA) ou la

sérotonine et dont les taux anormalement bas sont impliqués dans les troubles de

l‘humeur : anxiété et dépression. À titre d‘exemple, chez le rat axénique,

l‘ingestion d‘une souche de Bifidobacterium infantis produisant du tryptophane

précurseur de la sérotonine a élevé le taux de sérotonine suggérant ainsi un

potentiel effet antidépresseur [79].

Plusieurs éléments de la littérature attestent l‘effet bénéfique de ces

psychobiotiques dans les maladies psychiatriques, à savoir la dépression,

l‘anxiété, l‘autisme, les troubles bipolaires de l‘humeur, la schizophrénie et la

dépendance alcoolique. Il a été montré que l'administration de la souche

75

Lactobacillus rhamnosus JB-1 diminue le comportement de type dépressif des

souris BALB/c. De même, la combinaison de Lactobacillus helveticus R0052 et

Bifidobacterium longum R0175 améliore les niveaux d‘anxiété et d‘humeur chez

les individus sains. Ainsi, l'administration de la souche Bifidobacterium infantis

35624 améliore les performances de rats Sprague-Dawley rendus dépressifs par

une séparation maternelle. Par ailleurs, un traitement par Lactobacillus casei

pendant deux mois a montré une amélioration significative de l'anxiété et des

symptômes dépressifs chez 39 patients souffrant d'un syndrome de fatigue

chronique. Un traitement probiotique a également montré une efficacité dans

l'amélioration des symptômes du syndrome SIBO associé avec les troubles

antidépressifs. Pourtant, ces différentes études nécessitent d‘être complétées par

d‘autres recherches pour mieux évaluer et caractériser l‘intérêt des probiotiques

dans les situations de stress ou de dépression [80].

76

II. Transplantation de microbiote fécal

1. Historique et définition

Le concept de transfert de flore digestive n‘est pas nouveau. Il est décrit

dans le «Handbook of Emergency Medicine », il y a plus de 1700 ans, par le

chinois Ge Hong pour traiter des patients ayant une diarrhée sévère. Au XVIIe

siècle, le transfert de flore digestive a été utilisé par voie orale ou rectale en

médecine vétérinaire sous le terme de « transfaunation». Plus proche de nous, la

consommation de selles fraîches de chameaux a été une pratique des bédouins

pour guérir la dysenterie bacillaire et son efficacité a été documentée chez les

soldats allemands en poste en Afrique du Nord pendant la Seconde Guerre

mondiale. La première description scientifique de transfert de flore digestive a

été publiée par Eiseman en 1958 chez 4 patients souffrant de colite pseudo-

membraneuse et traités par des lavements de selles d‘un donneur sain. Le

transfert de flore par lavement dans le cadre de l‘infection à C difficile a été

rapporté pour la première fois par Schwan et al. en 1983. Et C‘est en 2013 que le

traitement a à nouveau été remis sur la table, après la parution dans le New

England Journal of Medicine d‘une étude intitulée «Duodenal Infusion of Donor

Feces for Recurrent Clostridium difficile». Alors que les premiers essais

utilisaient encore un lavement rétrograde dans le gros intestin, l‘étude de 2013 a

introduit des matières fécales d‘un donneur sain dans l‘intestin grêle par voie

antérograde via une sonde nasale. De plus, des méta-analyses récentes ont

rapporté une efficacité de plus de 90% de la TMF dans le traitement de

l‘infection à Clostridium difficile, cette technique pourrait donc représenter un

traitement de troisième intention en cas d‘échec de thérapie par probiotiques ou

antibiotiques [81]. A l‘heure actuelle, il y a un intérêt croissant pour la

77

manipulation du microbiote à visée thérapeutique d‘une manière générale et

pour la TMF en particulier, y compris en dehors du traitement des infections

récidivantes à Clostridium difficile, par exemple, en cas de maladies cardio-

métaboliques, de maladies auto-immunes et d‘autres affections extra-

intestinales.

Aujourd‘hui, l‘administration thérapeutique de selles est appelée

transplantation de microbiote fécal [83].

La transplantation fécale désigne l‘infusion d‘une suspension fécale d‘un

sujet sain vers le tube digestif d‘un autre individu, Son efficacité et sa tolérance

ont été rapportées dans plus de 40 études dans différentes affections digestives

mais aussi extra-digestives, Les termes « transplantation fécale » sont

aujourd‘hui associés à plus de 1000 citations dans Pubmed [82].

2. Réglementation

A l‘échelle internationale, le microbiote fécal n‘a pas le même statut dans

les différents pays. Les Etats-Unis considèrent qu‘il s‘agit d‘un médicament

alors que certains Etats membres (Royaume-Uni, Danemark et Pays-Bas) ne le

qualifient pas comme tel (certains comme un tissu) et la Belgique comme MCH

« Métière du corps humain ».

En France, la TMF répond à la définition d‘un médicament conformément

à l‘article L.5111-1 du Code de santé publique (CSP) : « toute substance ou

composition présentée comme possédant des propriétés curatives ou préventives

à l‘égard des maladies humaines ou animales, ainsi que toute substance ou

composition pouvant être utilisée chez l‘homme ou chez l‘animal ou pouvant

leur être administrée, en vue d‘établir un diagnostic médical ou de restaurer,

78

corriger ou modifier leurs fonctions physiologiques en exerçant une action

pharmacologique, immunologique ou métabolique… ».

En France, A ce jour, le Code de la Santé publique ne prévoit pas de statut

particulier pour le microbiote fécal. Toutefois, dans la mesure où le microbiote

fécal est utilisé à visée curative à l‘égard de maladies humaines, il doit être

considéré comme un médicament conformément à l‘article L. 5111-1 du Code

de la Santé publique, qui définit un médicament comme « toute substance ou

composition présentée comme possédant des propriétés curatives ou préventives

à l‘égard des maladies humaines ou animales, ainsi que toute substance ou

composition pouvant être utilisée chez l‘homme ou chez l‘animal ou pouvant

leur être administrée, en vue d‘établir un diagnostic médical ou de restaurer,

corriger ou modifier leurs fonctions physiologiques en exerçant une action

pharmacologique, immunologique ou métabolique.[…] ». A ce stade précoce de

développement de ce produit et en l‘absence d‘autorisation de mise sur le

marché, celui-ci peut être utilisé dans le cadre législatif et réglementaire

applicable aux préparations magistrales et hospitalières (article L. 5121-1 du

Code de la Santé publique), ou aux médicaments expérimentaux destinés à un

essai clinique (article L. 5121-1-1 du même code).

Pour mieux évaluer la balance bénéfice/risque, l‘Agence Nationale de

Sécurité du Médicament (ANSM), encourage la mise en place d‘essais cliniques

contrôlés. Cela permettra d‘évaluer les effets escomptés mais également les

risques immédiats (infectieux, allergique...) ou des risques à long terme plus

méconnus, liés au remplacement d‘une communauté complexe de micro-

organismes par une autre.

79

Le microbiote fécal répond à la définition d‘un médicament et sa

préparation sera sous la responsabilité d‘une Pharmacie à Usage Intérieur (PUI).

3. La transplantation

La première étape essentielle à la transplantation est le choix du donneur.

Celui–ci peut être une personne familière ou un anonyme.

Le donneur potentiel doit répondre à un questionnaire de présélection,

retrouvé dans les recommandations rédigées par l‘ANSM, associé à un entretien

médical, ayant pour but de diminuer le risque de transmission d‘un agent

pathogène. Cet entretien est du même principe que ceux réalisés dans le cadre

d‘un don de sang. Le même questionnaire est utilisé mais il est complété par des

critères additionnels pour l‘adapter au don de selles et au contexte de

transplantation fécale. Ces critères, ils sont présentés sur la figure ci-dessous :

80

Tableau 5: Questionnaire de présélection (ANSM)

INFORMATIONS

CRITERES DE NON

INCLUSION ABSOLUE

CRITERES DE NON INCLUSION

<<RELATIVE>>

(A JUSTIFIER)

Co-morbidités

Donneur avec une pathologie

chronique connue

Antécédent de fiévre typhoide

Troubles digestifs (diarrhée

aigué ou chronique) dans les

3 mois précédant le don

Donneurs avec antécedents familiaux :

- MICI (lien de parenté)

- maladies auto-immunes (lien de

parenté)

- cancer colique (lien de parenté et

âge d’apparition

Traitement

médicamenteux

Donneur suivant un traitement

curatif au long cours

Donneur traité par anti-infectieux au

cours des 3 mois précédant le don

Voyages

Séjour en zone intértropicale

au cours de 3 mois précedant

le don

Résidence de plusieurs

années en zone

intertropicales

Hospitalisations à l’étranger

de plus de 24 h dans les 12

derniers mois (y compris

membres de l’entourage du

donneur)

Âge

Donneur mineur

Donneur âgé (> 65 ans )

Statu pondéral

Non limitant mais

Donneur avec IMC>30

81

Si le candidat est retenu, l‘équipe médicale devra l‘informer des mesures à

prendre pour limiter le risque de contamination par tout comportement à risque,

voyage et risques liés à l‘alimentation, jusqu‘au don.

A la suite du premier questionnaire, un prélèvement de selles est réalisé

pour effectuer de tests de dépistage de maladie transmissibles.

Tableau 6 : Liste des agents infectieux à dépister chez les donneurs (ANSM)

SANG SELLES

Treponema pallidum

Coproculture standard et orientée :

Clostridium difficile

Listerie monocytogenes

Vibrio chlorae/Vibrio parahemolyticus

Salmonelle

Shigella

Bactéries multirésistantes aux

antibiotiques

Virus de l’immunodéficience

humaine (HIV)

Virus T-lymphtropique

humain (HTLV)

Virus des hépatites B et C

(HVB HVC)

Cytomégalovirus

(CMV)/virus Epstein-

Barr(EBV)

Adénovirus

Astrovirus

Calcivirus (norovirus, sapovirus)

Picornavirus (entrérovirus,Virus Aichi)

Rotavirus

Virus des hépatites A et E

Strongloides stercoralis

Toxoplasma gondii

Trichinella spiralis

Strongyloides stercoralis

Cryptospordium sp.

Cyclospora sp.

Entamoeba histolytica

Giardie intestinalis

Isospora sp.

Microsporidies

Bac

téri

es

Vir

us

Par

asit

es

82

Cette liste est exhaustive et permet d‘éviter toute contamination du

receveur. Lorsque le questionnaire de présélection et les tests de dépistage ont

permis d‘écarter tout risque, le don peut être réalisé.

Le jour du don, un nouvel entretien avec un questionnaire simplifié aura

lieu pour analyser le risque de contamination depuis le dernier rendez-vous.

Avec une nouvelle recherche bactérienne sur un prélèvement de selles émises

dans la semaine précédant le don. C‘est à l‘issue de cet entretien que le donneur

sera définitivement sélectionné ou non.

Tableau 7 : Questionnaire de sélection (ANSM)

CRITERES DE NON INCLUSION

INCLUSION SUR LA BASE D’UNE

APPRECIATION INDIVIDUELLE

Episode de diarrhée (>3 selles molles à

liquide/j) chez le donneur ou les membres de

son entourages

Situations à risque de contamination :

- Voyage à l’étranger

- Contact avec du sang humain

(piercing, tatouage, piqûre, plaie,

projection, soins dentaires ….)

- Comportement sexuel à risque

- Présence de lésions anales

(afin de limiter le risque de

transmission du virus du papillome

humain et des virus de l’herpés)

Recherche des événements suivants :

Consultation médicales

(motif)

Maladie contractée

(laquelle,date et durée)

Prise de médicaments

(mesquels,date de la dérniére

prise )

83

Ces critères doivent exclure le donneur potentiel car ils traduisent soit un

risque d‘infection ou de microbiote altéré (diarrhées) ou des risques d‘avoir été

exposé à une contamination.

Un recueil des événements survenus chez le donneur dans les semaines qui

suivent le don est conseillé, comme la survenue d‘une maladie infectieuse.

Figure 17: Chronologie (versant"donneur") de la transplantation fécale (en l'absence de

congélation) (84)

L‘administration au receveur se fait sous contrôle médical, après signature

d‘un consentement éclairé dans le cadre d‘une hospitalisation.

Le don doit être caractérisé par un aspect normal des selles c‘est-à-dire des

selles moulées et un examen macroscopique normal (absence d‘urine, de sang,

ou de pus). De plus, le don destiné à la transplantation doit être administré, une

fois préparé, dans le délai le plus court possible et le jour de l‘émission de selles.

La préparation en elle-même ne pose pas de difficulté, il s‘agit de mettre en

suspension les selles fraiches dans une solution saline, d‘homogénéiser et filtrer.

Cette préparation relève de la responsabilité de la Pharmacie hospitalière

« PUI ».

84

Plusieurs voies d‘administration sont utilisées selon les services. Dans la

majorité des cas, l‘administration est réalisée par l‘utilisation d‘une sonde

nasogastrique ou naso-duodénale, mais peut aussi être réalisée lors d‘une

coloscopie ou par lavement.

Des études sont en cours pour étudier l‘efficacité d‘une administration par

voie orale, sous la forme de gélules gastro-résistantes. Des préparations de

capsules orales de transplants fécaux congelés ont été étudiées (84). Il a été

rapporté une guérison prolongée après une administration orale unique de 30

capsules chez 147/180 patients avec un ICD récidivant ou réfractaire. Une

deuxième administration réalisée chez 26 personnes qui ont rechuté a été

couronnée de succès chez 17, ce qui a entraîné une résolution globale chez 91%

des patients. L'ICD a disparu chez 82% des patients après un seul traitement,

atteignant un taux de guérison de 91% avec deux traitements. Ces résultats sont

comparables avec ceux rapportés pour l'administration par coloscopie.

Le patient transplanté fera l‘objet d‘une surveillance étroite à la suite de la

procédure. De plus, une coprothèque doit être réalisée sur les selles du donneur.

85

Figure 18: Une transplantation en pratique (85)

4. Indication et résultats actuels

Un nombre croissant de travaux scientifiques rapportent l‘intérêt

thérapeutique du transfert de flore digestive ou transplantation de microbiote

fécal (TMF) dans certaines pathologies. En particulier, la TMF a émergé au

cours de ces dernières années comme le traitement le plus efficace des récidives

d‘infections à Clostridium difficile (IRCD). Des observations préliminaires

suggèrent aussi que la TMF pourrait aussi jouer un rôle dans le traitement

d‘autres maladies telles que les maladies inflammatoires chroniques de

l‘intestin, l‘obésité et les maladies métaboliques ou bien encore les troubles du

spectre de l‘autisme.

86

4.1. L’infection à Clostridium difficile

À ce jour, la littérature scientifique concernant l‘utilisation de la TMF

dans le cadre des IRCD comprend des séries de cas, une méta-analyse, 3 revues

de la littérature et un essai clinique randomisé récent. Au total, plus de 500

patients environ ont été traités par cette procédure avec un succès thérapeutique

allant de 81 % à 100 %.

Dans une revue de la littérature (couvrant une période allant jusqu‘au 15

avril 2011), Gough et al. Ont recensé 317 patients ayant eu une TMF à partir de

27 publications de 8 pays différents. Le taux global de guérison clinique était de

92 % dont 89 % après l‘administration d‘une seule TMF.Le taux de succès

thérapeutique était plus important lorsque l‘administration avait été réalisée par

coloscopie (88,9 %) ou par lavements (95,4 %) (Par rapport à la gastroscopie ou

à la sonde naso-duodénale = 76,4 %) et lorsque le donneur appartenait à

l‘entourage du receveur (93,3 % versus 84,0 % pour un donneur anonyme). Il est

cependant difficile d‘interpréter ces différences car les groupes ne sont pas

homogènes et varient sur de nombreux autres paramètres (poids de selles

utilisées, volume de la suspension administrée, mode de préparation,

prétraitement ou non des patients, etc.). Par ailleurs, une étude récente a indiqué

un taux de succès thérapeutique de 90-92 % après TMF réalisée à partir des

selles congelées d‘un donneur « universel ».

Mattila et al. (Finlande) ont rétrospectivement analysé 70 dossiers de

patients souffrant d‘IRCD et ayant reçu une TMF par voie coloscopique après

lavement au PEG. Sur les 36 patients infectés par la souche épidémique

hypervirulente BI/NAP1/027, 32 (89 %) ont été considérés guéris tandis que 4

patients, présentant des comorbidités lourdes et un terrain affaibli, n‘ont pas

87

répondu et sont décédés par la suite. Tous les patients infectés par une autre

souche de C. difficile ont été considérés comme guéris, avec un suivi de 12

semaines après la TMF. Dans l‘année qui a suivi, 4 patients seulement ont

présenté une nouvelle récidive qui a été traitée avec succès soit par une nouvelle

TMF soit par antibiotique.

En 2013, Rubin et al. (États-Unis) ont rapporté une série de 89 TMF

administrées par voie naso-gastrique chez 87 patients sur une période de 9 ans

dans le même établissement. Le taux de guérison clinique dans les deux mois

qui ont suivi était de 79 % après l‘administration d‘une seule TMF.

Patel et al., à la Mayo Clinique en Arizona (États-Unis),ont réalisé 30 TMF

en deux ans chez des patients ayant des IRCD avec un taux de succès

thérapeutique (amélioration de la diarrhée) de 97 % obtenu en moyenne en 3

jours. Récemment, le premier essai randomisé a comparé, chez des patients

souffrant d‘IRCD, un traitement par TMF (précédée d‘un prétraitement par 4

jours de vancomycine per os et d‘un lavement) administrée par voie naso-

duodénale à un traitement de 15 jours par vancomycine à fortes doses

(500 mg 4 × /j) précédé ou pas d‘un lavement. Cet essai a été interrompu

précocement suite à une analyse intermédiaire montrant une supériorité

significative de la TMF par rapport aux 2 autres bras de l‘étude. Il a été

considéré alors comme non éthique de poursuivre cet essai du fait de la perte de

chance pour les patients des bras traités par vancomycine. Sur les 16 patients

ayant reçu la TMF, 15 (94 %) ont guéri de leur infection à C. difficile après

l‘administration d‘une ou deux TMF alors que le taux de guérison chez les

patients recevant de la vancomycine seule ou en association avec un lavement

était respectivement de 31 % et 23 % à p < 0,001. Il convient néanmoins de

88

souligner que l‘étude a été réalisée chez des patients adultes, immunocompétents

ne recevant pas d‘antibiothérapie concomitante au moment de l‘inclusion. Par

ailleurs, le délai de suivi des patients était de 10 semaines. D‘autres études

randomisées sont actuellement en cours (83).

4.2. Les maladies métaboliques : obésité et diabète type 2

Un essai clinique (Vrieze et al. 2012) de transplantation fécale chez des

sujets souffrant d‘un syndrome métabolique a été conduit par une équipe

hollandaise. Cet essai a consisté à évaluer les effets du transfert du microbiote

intestinal de donneurs maigres (IMC < 23 kg/m²) à des receveurs masculins

atteints de syndrome métabolique (IMC > 30 kg/m² et glycémie à jeun > 5,6

mmol/L) sur la composition du microbiote du receveur et le métabolisme du

glucose.

Les patients ont été randomisés en 2 groupes recevant chacun une

transplantation fécale. Une biopsie intestinale suivie d‘un lavage intestinal ont

été réalisés sur tous les patients. Ils ont ensuite reçu l‘échantillon par sonde

duodénale, soit à partir d‘un donneur allogénique soit de leur propre microbiote

intestinal.

La mesure de la sensibilité à l‘insuline, ainsi que l‘étude de la biopsie

intestinale et des échantillons fécaux a été réalisée juste avant la transplantation

et 6 semaines après.

L‘étude des selles des personnes obèses avant le transfert a montré, en

comparaison aux sujets maigres, une diminution de la diversité globale, avec

une augmentation des Bacteroidetes et une diminution des Firmicutes. Après le

transfert, l‘étude des selles des patients des 2 groupes n‘a pas montré de

89

différence quantitative dans la population bactérienne, mais la diversité

microbienne a été largement augmentée dans le groupe ayant eu une greffe

allogénique, alors qu‘elle était inchangée dans le groupe autologue. Les

variations marquantes sont une augmentation de 2,5 fois du nombre de bactéries

productrices de butyrate : Roseburia intestinalis, avec une diminution de la

présence d‘AGCC dans les fèces (acétate de 49,5 à 37,6 mmol/kg fèces ;

butyrate, de 14,1 à 8,9 mmol/kg fèces).

Après 6 semaines, une amélioration de la sensibilité à l'insuline

périphérique a été observée dans le groupe ayant eu la transplantation de

microbiote intestinal allogénique.

L‘étude des biopsies intestinales n‘a pas montré de différences

quantitatives entre les 2 groupes après la greffe. Mais les bactéries Eubacterium

hallii également productrices de butyrate ont été augmentées dans la muqueuse

de l'intestin grêle après le transfert allogénique du microbiote intestinal. Alors

que leur quantité a été diminuée par 2 dans le groupe traité par autogreffe.

Les AGCC, et notamment le butyrate semble donc jouer un rôle dans

l‘amélioration de la sensibilité à l‘insuline, notamment par sa capacité à prévenir

la translocation de composés bactériens responsable de l‘endoxémie

métabolique. Ces AGCC semblent être des acteurs clés dans la régulation de

diverses cascades de signalisation associées au métabolisme du glucose et des

lipides humains (86).

Ces résultats de transplantation de microbiote fécal chez des sujets atteints

de syndrome métabolique semblent prometteurs. D‘autres études sont

nécessaires, notamment chez des sujets avec un stade avancé de diabète de type

2.

90

5. Autre indication potentielles

5.1. les maladies inflammatoires intestinales

La TMF a été utilisée expérimentalement mais l‘expérience clinique est

encore limitée et la preuve de son efficacité est très inférieur e à celle que l‘on a

pour les infections récidivantes à C difficile. Le microbiote intestinal des patients

atteints de MICI est caractérisé par une moindre diversité bactérienne comparé à

celui des sujets sains (25 % de gènes microbiens en moins) comme nous l‘avons

montré précédemment. En particulier, la proportion des Firmicutes et

Bacteroidetes est diminuée au profit de celle des Actinobacteria et

Proteobacteria [87].

Dix enfants souffrant de RCH ont été traités par TMF : une réponse

clinique a été observée dans 78 % des cas dans la semaine qui a suivi la TMF et

une rémission clinique dans 33 % des cas. Chez les patients ayant conjointement

une MICI et une infection à C difficile, la TMF a permis une rémission totale des

symptômes dans 100 % des cas sur une période d‘observation allant de 3 mois à

13 ans [88].

Une dizaine d‘essais cliniques randomisés sont actuellement en cours ou

prévus dans le cadre des MICI et de la TMF

5.2. Symptômes psychiques associés au syndrome de l’intestin

irritable

La greffe fécale, une approche thérapeutique qui permet de rééquilibrer le

microbiote, a déjà été testée avec succès dans des travaux menés chez des

patients atteints de troubles digestifs résultant d‘une dysbiose. Elle pourrait donc

s‘avérer tout aussi efficace pour traiter les troubles psychiques associés.

91

Pour tester cette hypothèse, des chercheurs japonais ont réalisé une greffe

fécale chez 17 patients atteints d‘un syndrome de l‘intestin irritable avec

prédominance de diarrhée ou de constipation ; 12 participants souffraient de

dépression, associée à une anxiété pour 5 d‘entre eux. L‘analyse de leur

microbiote intestinal montrait une moindre diversité en cas de dépression. La

greffe fécale a entraîné l‘enrichissement du microbiote de l‘ensemble des

malades. Au bout de quatre semaines, 9 participants ont retrouvé un transit

normal, tant ceux atteints de diarrhée que de constipation ; la moitié des patients

dépressifs et la majorité des patients anxieux ne présentaient plus de signes

psychiques. Quant aux 8 patients dont les symptômes gastro-intestinaux ont

perduré après la greffe, leurs symptômes psychiques se sont nettement améliorés

[89].

Ces résultats suggèrent qu‘une greffe fécale, en augmentant la diversité de

l‘écosystème bactérien du tube digestif, peut améliorer les symptômes

psychiques associés à un syndrome de l‘intestin irritable, même en l‘absence

d‘une amélioration des symptômes intestinaux.

92

CONCLUSION

93

Une ère nouvelle s‘est ouverte avec le développement d‘outils extrêmement

puissants pour estimer la diversité du microbiote à l‘échelon des espèces et pour

rechercher les fonctions réellement exprimées dans le tube digestif. Un grand

nombre d‘organismes publics de financement contribuent désormais à un effort

international d‘une ampleur considérable, dont l‘aboutissement sera l‘obtention

de la séquence des métagénomes de l‘ensemble des micro-organismes hébergés

par l‘homme, des niches muqueuses au revêtement cutané.

Le côlon humain héberge une communauté microbienne extrêmement

dense, composée essentiellement d‘espèces anaérobies strictes. Ce microbiote

intestinal exerce de nombreuses fonctions physiologiques ayant des

répercussions importantes sur la nutrition et la santé de l‘hôte.

La relation hôte-microbiote initiée à la naissance et maintenue toute la vie

est un facteur causal important de la bonne santé et de l‘induction des maladies

en cas de dysbiose, C‘est notamment le cas dans les maladies métaboliques,

mais également dans les maladies inflammatoires chroniques de l‘intestin, et les

troubles psychiatriques

La richesse de ce nouveau monde génétique est à l‘origine de nouvelles

connaissances fondamentales, mais également de stratégies thérapeutiques.

Nous avons présenté deux approches thérapeutiques : la supplémentation avec

des probiotiques et la transplantation fécale.

L‘utilisation des probiotiques a montré globalement son innocuité, même si

quelques risques infectieux chez des personnes sensibles ont parfois été

observées. Le champ d‘utilisation des probiotiques est de plus en plus vaste. Les

pathologies les couramment ciblées sont les diarrhées, maladies inflammatoires

94

chroniques intestinales et allergies. D‘autres pathologies commencent à

s‘intéresser à l‘approche probiotique comme l‘obésité, les maladies

métaboliques, ainsi que les maladies psychiatriques. La modulation du

microbiote intestinal par les probiotiques est une approche extrêmement

séduisante et prometteuse, plutôt dans une approche préventive dans le champ

en pleine expansion des pathologies reliées à une dysbiose du microbiote

intestinal.

Le transfert de flore fécale, employée uniquement à ce jour pour des

infections à Clostridium difficile réfractaires, est une technique très prometteuse

pour les autres pathologies pour lesquelles le microbiote intestinal est impliqué.

Toutefois à ce jour, il n‘y a pas assez de données cliniques pour statuer sur son

efficacité. Les années à venir seront riches en résultats d‘études cliniques et

peut être sommes-nous à l‘aube d‘une toute nouvelle approche thérapeutique :

intervenir sur les facteurs déterminants du microbiote a fin d‘en prévenir sa

dérégulation et le corriger si besoin, on parlear à ce moment de « Coprophagie

Médicalement Assistée ».

95

RESUMES

96

RESUME

Titre : Le microbiote intestinal et modulation thérapeutique

Auteur : khaoula laaboub

Directeur de thèse : Pr. Badre Eddine LMIMOUNI

Mots clés : Dysbiose - Microbiote intestinal – probiotique-transplantation

fécale

Le microbiote intestinal est un ensemble de 1041

micro-organismes qui

tapissent notre tube digestif. Certaines pathologies sont associées à une dysbiose

intestinale, dans lesquelles on observe une diminution de la diversité bactérienne

et des modifications de la proportion de certaines espèces de bactéries. C‘est

notamment le cas dans les maladies métaboliques, mais également dans les

maladies inflammatoires chroniques de l‘intestin, et les troubles psychiatriques

Les probiotiques sont actuellement conseillés en pharmacie dans

différentes indications. Des études sont en cours pour évaluer leur capacité à

rétablir la dysbiose retrouvées dans ces différentes pathologies. De plus, une

autre technique de restauration de l‘équilibre du microbiote pourrait être utilisée,

il s‘agit de la transplantation de microbiote intestinal. Elle a déjà fait ses preuves

dans le traitement des infections récidivantes à C. difficile, et est maintenant

étudiée dans d‘autres situations avec altération du microbiote intestinal.

97

ABSTRACT

Title: the gut microbiota and therapeutic modulation

Author: khaoula laaboub

Director of the thesis: Professor Badre Eddine LMIMOUNI

Key words: - Dysbiosis – Fecal transplantation - gut microbiota – Probiotics

The gut microbiota is a collection of 1014

microorganisms that colonise our

digestive tract. Some pathology are associated with an intestinal dysbiosis, in

which we notice a global decrease in the biodiversity of the microbiota and

changes in the proportion of certain bacteria species.This is particularly the case

in metabolic diseases, but also in inflammatory bowel disease, and psychiatric

disorders.

Probiotics are currently advised in pharmacies for different indications.

Studies are in progress to evaluate their ability to restore the dysbiosis found in

these different pathologies. Furthermore, an other technique for restoring the

balance of the microbiota could be used, the fecal microbiota transplantation. It

has already been shown to be effective in treating refractory or relapsing C.

difficile infections, and is now being considered in other situations with

alteration of the gut microbiota.

98

ملخص

:انكشباث انعت انتعذالث انعالجت انلعنوا

: خنت نعبب لمؤلفةا

ن بذس انذالستاز : ا حةورطالامدیر

.صسع انكشباث انعت - ءيعاألاثى اجشاص خهم ف ت -ء يعاألاثى اجش - بشبتل :الساسیةت الكلماا

41انجشاثى انعت يجعت ي 41

اث انحت انذققت انت تبط انجاص انع نذا. ي انكائ

تشتبط بعط األيشاض بخهم ف انبكتشا انعت ، حث جذ اخفاض ف انتع انبكتش انتغشاث

ف سبت أاع يعت ي انبكتشا. زا انحال بشكم خاص ف أيشاض انتثم انغزائ ، نك أعا

االظطشاباث انفست. ف يشض انتاب األيعاء

صح حانا ف انصذنت بانبشبتل ف حاالث يتعذدة. اك دساساث جاست تحال تقى قذساتا

عه تصحح انخهم انجد ف ز األيشاض انتعذدة. باإلظافت إن رنل ، ك استخذاو تقت أخش

نحت انذققت انعت. نقذ تى إثبات بانفعم ف الستعادة تاص األحاء انجشت ، صسع انكائاث ا

عالج انعذ انطثت انعسشة انتكشسة ، جش ا دساساث ف حاالث أخش تعا ي ظشس ف

.انكشباث انعت

99

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EBOGRAPHIQUE

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قسم أبقراط

بسى اهلل انزمحا انزحى

أقسى باهلل انعظى

يف ىذه انهحظت انيت تى فيا قبيل عضا يف ادلينت انطبت أتعيد عالت:يف ىذه انهحظت انيت تى فيا قبيل عضا يف ادلينت انطبت أتعيد عالت:

.بأ أكزص حات خلديت اإلسات.بأ أكزص حات خلديت اإلسات

.أ أحرتو أساتذت أعرتف ذلى باجلم انذي ستحقو.أ أحرتو أساتذت أعرتف ذلى باجلم انذي ستحقو

جاعال صحت يزض ىديف األل. جاعال صحت يزض ىديف األل. أ أيارص يينيت باسع ي ضريي شزيفأ أيارص يينيت باسع ي ضريي شزيف

.أال أفش األسزار ادلعيدة إيل.أال أفش األسزار ادلعيدة إيل

.أ أحافظ بكم يا ندي ي سائم عهى انشزف انتقاند اننبهت دلينت انطب.أ أحافظ بكم يا ندي ي سائم عهى انشزف انتقاند اننبهت دلينت انطب

.أ أعترب سائز األطباء إخة يل.أ أعترب سائز األطباء إخة يل

.أ أقو باجيب حن يزضاي بد أي اعتبار دين أ طين أ عزق أ ساس اجتاع.أ أقو باجيب حن يزضاي بد أي اعتبار دين أ طين أ عزق أ ساس اجتاع

كم حشو عهى احرتاو احلاة اإلسات ينذ شأهتا.كم حشو عهى احرتاو احلاة اإلسات ينذ شأهتا.أ أحافظ بأ أحافظ ب

.أال أستعم يعهيات انطبت بطزق ضز حبقق اإلسا ييا القت ي هتدد.أال أستعم يعهيات انطبت بطزق ضز حبقق اإلسا ييا القت ي هتدد

.بكم ىذا أتعيد ع كايم اختار يقسا بشزيف.بكم ىذا أتعيد ع كايم اختار يقسا بشزيف

..اهلل عهى يا أقل شيداهلل عهى يا أقل شيد

AAuu mmoommeenntt dd''êêttrree aaddmmiiss àà ddeevveenniirr mmeemmbbrree ddee llaa pprrooffeessssiioonn mmééddiiccaallee,, jjee

mm''eennggaaggee ssoolleennnneelllleemmeenntt àà ccoonnssaaccrreerr mmaa vviiee aauu sseerrvviiccee ddee ll''hhuummaanniittéé..

JJee ttrraaiitteerraaii mmeess mmaaîîttrreess aavveecc llee rreessppeecctt eett llaa rreeccoonnnnaaiissssaannccee qquuii lleeuurr ssoonntt

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Serment d'Hippocrate